胡若愚,承燕,李好,張雷,景華,吳海衛(wèi)
(南京大學(xué)臨床學(xué)院,南京軍區(qū)南京總醫(yī)院 心胸外科,江蘇 南京 210002)
急性肺損傷(acute lung injury, ALI)與急性呼吸窘迫綜合征(acute respiratory distress syndrome, ARDS)廣泛存在于各種嚴(yán)重臨床疾病的發(fā)生發(fā)展過(guò)程中[1]。目前認(rèn)為,在ALI的發(fā)病初期,肺組織損傷的主要病理表現(xiàn)是肺血管內(nèi)皮細(xì)胞破壞以及炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)。由于肺泡-毛細(xì)血管所構(gòu)成的氣血屏障受破壞,導(dǎo)致肺血管通透性的增加,使得大量組織液攜帶各種炎癥細(xì)胞及炎癥因子進(jìn)入肺間質(zhì)及肺泡中,并隨之引發(fā)肺水腫;肺水腫又進(jìn)一步加重了氧氣彌散障礙并增加死腔通氣量,從而導(dǎo)致了組織缺氧,并引起機(jī)體進(jìn)一步的損傷[2- 3]。自1967年Ashbaugh等首次提出ARDS的概念后,醫(yī)學(xué)工作者嘗試使用了各種藥物治療該疾病,然而治療效果仍不盡如人意[4]。
自Asahara等[5]首次報(bào)道發(fā)現(xiàn)外源性內(nèi)皮祖細(xì)胞(EPC)以來(lái),不斷有研究揭示了EPC作為內(nèi)皮細(xì)胞的前體細(xì)胞在血管新生及內(nèi)皮修復(fù)中所發(fā)揮的重要作用。EPC多存在于骨髓中,并可被多種細(xì)胞因子、藥物、缺血及損傷信號(hào)動(dòng)員進(jìn)入血液循環(huán),參與受損組織的內(nèi)皮修復(fù)及血管新生[6]。研究表明:EPC在治療肢體缺血、心肌缺血、腎臟疾病及移植血管成活等方面均有重要而獨(dú)到的作用[7- 11]。研究顯示:EPC作為一種機(jī)體自身修復(fù)途徑,通過(guò)遷移、黏附于血管受損部位,替代受損內(nèi)皮細(xì)胞或通過(guò)其旁分泌作用產(chǎn)生新的細(xì)胞因子而促進(jìn)內(nèi)皮再生,在維持機(jī)體血管內(nèi)皮修復(fù)及更新過(guò)程中發(fā)揮重要作用。不僅如此,EPC在ALI的治療中也顯示其獨(dú)特的作用。Burnham等研究了ALI患者預(yù)后與循環(huán)血中EPC數(shù)量之間的關(guān)系,發(fā)現(xiàn)ALI/ARDS患者循環(huán)中的EPC數(shù)量增加,EPC數(shù)量高的患者預(yù)后好;同時(shí),外周血EPC的數(shù)量可以反映炎癥相關(guān)性肺損傷血管損傷的程度,并可作為評(píng)價(jià)疾病預(yù)后的指標(biāo)之一[12]。根據(jù)上述研究結(jié)果,我們推測(cè):外周血循環(huán)中的EPC數(shù)量決定了肺血管損傷后肺血管內(nèi)皮的修復(fù)的速度及水平,并直接影響疾病的進(jìn)展和預(yù)后。然而,由于生理狀態(tài)下,外周血循環(huán)中EPC含量極低,僅占外周血單核細(xì)胞總量的0.002%[13],因此,進(jìn)行EPC移植治療是迅速提高外周血循環(huán)中EPC水平直接而有效的途徑。
本研究中,我們以轉(zhuǎn)基因EGFP- BALB/c小鼠作為細(xì)胞供體,自骨髓單核細(xì)胞分離、培養(yǎng)獲得EGFP- EPC,并在體外大量擴(kuò)增后,回輸至由內(nèi)毒素(lipopolysaccharide,LPS)誘導(dǎo)的野生型BALB/c小鼠ALI模型體內(nèi)。試圖通過(guò)外源性EPC移植治療加速ALI小鼠肺血管損傷修復(fù)進(jìn)程,改善其預(yù)后。同時(shí)應(yīng)用熒光顯微鏡觀察輸入的外源性EGFP- EPCs在受體鼠體內(nèi)遷移及歸巢情況,并通過(guò)組織病理學(xué)檢查、肺組織濕干重比、肺組織微血管再生情況等檢測(cè)手段,綜合評(píng)價(jià)外源性EPC移植對(duì)ALI的治療效果,為臨床使用EPC治療ALI提供實(shí)驗(yàn)及理論依據(jù)。
野生型BALB/c小鼠18只,雄性, 5~7周齡,體重21~25 g,由南京軍區(qū)南京總醫(yī)院比較醫(yī)學(xué)科提供,恒溫、清潔環(huán)境飼養(yǎng),不限食水。轉(zhuǎn)基因EGFP- BALB/c小鼠30只,雄性,5~7周齡,體重18~23 g,與所用的野生型BALB/c小鼠屬同一祖系,平行傳代,由南京軍區(qū)南京總醫(yī)院比較醫(yī)學(xué)科提供,恒溫、清潔環(huán)境飼養(yǎng),不限食水。LPS(Escherichia coli O55:B5,美國(guó)Sigma- Aldrich公司),人纖維連接蛋白(美國(guó)R&D公司),小鼠淋巴細(xì)胞分離液(美國(guó)Sigma- Aldrich公司),大鼠抗小鼠CD34單克隆抗體(ab815,英國(guó)Abcam公司),羊抗大鼠IgG- FITC抗體(sc- 2011,美國(guó)Santa Cruz公司),超凈工作臺(tái)(蘇凈集團(tuán)),細(xì)胞培養(yǎng)箱(美國(guó)Thermo公司),熒光倒置顯微鏡(日本Olympus IX71型)。
每次取雄性BALB/c小鼠6只,麻醉并處死后于75%酒精中浸泡30 min。于超凈工作臺(tái)上將小鼠雙下肢股骨、脛骨分離并取出,以1 ml注射器吸取PBS沖洗小鼠脛、股骨骨髓腔,密度梯度離心法獲得骨髓單個(gè)核細(xì)胞,細(xì)胞計(jì)數(shù)后,以5×106·孔-1細(xì)胞量將細(xì)胞接種于人纖維連接蛋白包被的6孔培養(yǎng)板中,每孔內(nèi)加EGM- 2 Single Qutos培養(yǎng)液2 ml。將細(xì)胞置于37 ℃、5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng),細(xì)胞接種后第4天首次更換細(xì)胞培養(yǎng)液,棄去未貼壁細(xì)胞,將貼壁細(xì)胞繼續(xù)培養(yǎng)。此后每2 d更換培養(yǎng)液1次。細(xì)胞培養(yǎng)3周,每日觀察細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài),并拍照留存。
野生型BALB/c小鼠行戊巴比妥腹腔注射麻醉,頸部脫毛并以75%酒精消毒術(shù)野。于小鼠頸部正中行長(zhǎng)約0.5 cm切口。鈍性分離小鼠頸部肌肉,暴露氣管。以1 ml注射器吸取預(yù)先配制好的LPS溶液50 μl,經(jīng)小鼠氣管內(nèi)滴注。滴注時(shí),抬高操作臺(tái)成45°角,使LPS溶液順氣管流入小鼠肺部。滴注后,將小鼠直立并旋轉(zhuǎn),使LPS在肺內(nèi)盡量均勻分布。其后以絲線縫合小鼠頸部切口。受體BALB/c雄性小鼠共18只,隨機(jī)分為3組,每組6只。分別為:假手術(shù)組 (經(jīng)氣管內(nèi)滴注50 μl PBS,其后30 min經(jīng)尾靜脈注射100 μl PBS)、ALI組(經(jīng)氣管內(nèi)滴注5 mg·kg-1LPS,體積為50μl,30 min后經(jīng)尾靜脈注射100 μl PBS)、EPC治療組(經(jīng)氣管內(nèi)滴注5 mg·kg-1LPS,體積為50 μl,30 min后根據(jù)受體小鼠體重經(jīng)尾靜脈注射EGFP- EPCs細(xì)胞懸液,注射細(xì)胞量為5×104·g-1)。各組小鼠均飼養(yǎng)至術(shù)后3 d處死,留取肺組織標(biāo)本。
迅速打開處死后BALB/c小鼠的胸腔,摘取左上肺,以O(shè)CT包埋小鼠肺組織,置于冰凍切片機(jī)中-18 ℃速凍后行5 μm切片,并迅速于熒光顯微鏡下觀察并拍照。
1.5.1 肺組織病理切片觀察及肺損傷評(píng)分 BALB/c小鼠處死后,迅速摘取其左下肺組織,中性福爾馬林固定,石蠟包埋、脫水后切片,行蘇木素- 伊紅染色,中性樹脂封片后于顯微鏡下觀察并拍攝照片。將各組小鼠肺組織HE切片與光學(xué)顯微鏡下觀察并行雙盲評(píng)分。評(píng)分指標(biāo)包括肺泡組織結(jié)構(gòu)、肺間質(zhì)及肺泡內(nèi)出血情況、肺間質(zhì)及肺泡內(nèi)炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)情況、肺泡內(nèi)透明膜形成程度。4項(xiàng)指標(biāo)以0~4分進(jìn)行半定量分析,累積評(píng)分為該切片肺損傷指數(shù)評(píng)分。
1.5.2 肺組織濕干重終比測(cè)定 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物分組及動(dòng)物模型制作方法同前。預(yù)先留取的小鼠右側(cè)肺組織,以微量天平稱量小鼠右肺質(zhì)量。此后將肺組織放入烘箱內(nèi)50 ℃烘焙24 h取出。再次稱量小鼠肺干重。小鼠肺部濕干重比計(jì)算方法為:濕干重比=(肺濕重-肺干重)/肺干重×100%。
1.5.3 移植受體小鼠肺組織新生微血管密度(MVD)測(cè)定 以CD34為新生血管標(biāo)記物。將移植受體小鼠肺組織行石蠟切片后進(jìn)行CD34免疫組化染色,細(xì)胞棕褐色染色為CD34表達(dá)陽(yáng)性。各組BALB/c小鼠中,每組隨機(jī)選取4個(gè)樣本,每只小鼠對(duì)應(yīng)免疫組化染色切片選取2張。先于低倍鏡下選取CD34表達(dá)陽(yáng)性率最高部位作為檢測(cè)部位,然后光鏡400倍選取該區(qū)域5個(gè)視野拍攝。統(tǒng)計(jì)每張照片1 mm2區(qū)域中CD34陽(yáng)性染色的微血管數(shù)量,其平均值為該組小鼠肺組織切片所對(duì)應(yīng)的MVD值。
EGFP- EPCs分離、培養(yǎng)方法與自野生型BALB/c小鼠骨髓單核細(xì)胞分離、培養(yǎng)EPCs方法完全相同。在培養(yǎng)過(guò)程中我們發(fā)現(xiàn),所培養(yǎng)的EGFP- EPCs生長(zhǎng)、增殖能力與普通EPCs相同,細(xì)胞早期呈集落樣生長(zhǎng)狀態(tài)(圖1A),細(xì)胞培養(yǎng)至3周后,細(xì)胞生長(zhǎng)呈現(xiàn)鋪路石樣狀態(tài)(圖1B)。
圖1EGFP-EPCs熒光顯微鏡下照片A.早期EGFP- EPC呈集落樣生長(zhǎng)狀態(tài);B.晚期EGFP- EPCs于熒光顯微鏡下呈現(xiàn)“鋪路石”樣生長(zhǎng)
Fig1EGFP-EPCsobservedunderfluorescentmicros-copeA.Early EGFP- EPCs exhibited a colony- forming appearance;B.Late EGFP- EPCs exhibited a cobblestone- like appearance
熒光顯微鏡下觀察各組受體小鼠肺組織冰凍切片中輸入的EGFP- EPCs熒光表達(dá)情況。發(fā)現(xiàn)接受外源性EGFP- EPCs治療的熒光小鼠組肺組織冰凍切片內(nèi)肺血管內(nèi)壁上附著有明顯的綠色熒光層(圖2A)。而假手術(shù)組(圖2B)及ALI組(圖2C)中則無(wú)法觀測(cè)到明顯的綠色熒光表達(dá)。該結(jié)果提示:外源性輸入的EGFP- EPCs可隨血液循環(huán)定向遷移至受損肺血管內(nèi)皮部位,與之黏附從而發(fā)揮內(nèi)皮治療作用。
HE切片顯示:假手術(shù)組肺泡結(jié)構(gòu)完整,肺泡腔及肺間質(zhì)內(nèi)未見(jiàn)明顯炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)、出血及透明膜形成征象(圖3A)。LPS可致嚴(yán)重的肺組織損傷,表現(xiàn)為肺泡結(jié)構(gòu)的破壞、肺泡腔減小、肺泡腔及肺間質(zhì)內(nèi)出血、炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)、肺泡透明膜形成等(圖3B)。EPC治療組的肺組織病理切片較之ALI對(duì)照組損傷程度明顯減輕,肺泡結(jié)構(gòu)基本維持,炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)及肺組織充血程度也有明顯降低(圖3C)。肺損傷指數(shù)評(píng)分顯示:LPS誘導(dǎo)的ALI明顯增加了肺組織損傷指數(shù)評(píng)分,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(10.83±1.17vs1.17±0.98,P<0.001),EPC治療組肺損傷程度顯著降低(7.67±1.21vs10.83±1.17,P=0.003),但較假手術(shù)組仍明顯增高(7.67±1.21vs1.17±0.98,P<0.001)(圖4)。
圖2EPC治療組(A)、假手術(shù)組(B)、ALI組(C)肺組織冰凍切片于熒光顯微鏡下照片箭頭所指為肺血管內(nèi)膜上明顯的綠色熒光信號(hào),提示移植的EGFP- EPC細(xì)胞可定向黏附于受損的肺血管內(nèi)膜表面
Fig2LungtissuefrozensectionsfromEPCgroup(A),shamgroup(B),ALIgroup(C)
圖3各組小鼠肺組織HE染色切片A.假手術(shù)組;B.ALI組;C.EPC組
Fig3HEstainingoflungtissuesA.Sham group;B.ALI group;C.EPC treatment group
圖4肺損傷指數(shù)評(píng)分與假手術(shù)組比較,aP<0.01;與ALI組比較,bP<0.01
Fig4DeterminationoflunginjuryscoresCompared with the sham group, aP<0.01; compared with ALI group,bP<0.01
肺濕干重比ALI組較假手術(shù)組明顯增高 [(72.17±5.98)%vs(23.00±3.74)%,P<0.001]。而EPC治療組較ALI組明顯降低(61.67±6.25%vs72.17±5.98%,P<0.05),但仍明顯高于假手術(shù)組 (61.67±6.25%vs23.00±3.74%,P<0.001)(圖5)。
圖5肺組織濕干重比測(cè)定與假手術(shù)組比較,aP<0.01;與ALI組比較,bP<0.01
Fig5DeterminationoflungwettodryratioCompared with the sham group,aP<0.01;compared with ALI group,bP<0.01
假手術(shù)組與ALI組比較,新生血管的MVD值極低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),而EPC治療組新生血管密度明顯增加,與其他兩組比較差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.001)(圖6)。
圖6CD34免疫組化染色肺MVD測(cè)定與假手術(shù)組比較, aP<0.01;與ALI組比較,bP<0.01
Fig6DeterminationofCD34immunostainingMVDCompared with the sham group,aP<0.01;compared with ALI group,bP<0.01
肺血管內(nèi)皮損傷是ALI/ARDS發(fā)病的始動(dòng)因素[14],如能在ALI發(fā)病早期對(duì)受損的肺血管內(nèi)皮進(jìn)行快速而有效的修復(fù),則可以從源頭上阻止疾病的進(jìn)一步發(fā)展,從而提高治愈率。隨著對(duì)ALI/ARDS研究的不斷深入以及干細(xì)胞治療技術(shù)的興起,人們逐漸發(fā)現(xiàn),EPC細(xì)胞治療作為一種全新的治療方法,可能是ALI/ARDS治療的新思路[15- 16]。EPC主要存在于人體骨髓中,在損傷、缺氧、細(xì)胞因子以及藥物等作用因素的動(dòng)員下進(jìn)入血液循環(huán),并有著向受損器官及組織定向遷移的特性。研究表明,EPC不僅能夠以“嵌合”的方式直接參加受損血管部位內(nèi)皮損傷修復(fù),替代壞死或凋亡的內(nèi)皮細(xì)胞,還能夠發(fā)揮旁分泌作用,促進(jìn)內(nèi)皮損傷的修復(fù)和血管的新生[17- 19]。而更有研究表明,體內(nèi)EPC的水平與ALI/ARDS的病程進(jìn)展及預(yù)后密切相關(guān)。Burnham與Yamada均研究了外周血中EPC水平及集落形成能力與患者ALI/ARDS預(yù)后的相關(guān)性,并得出了一致的結(jié)論。他們的研究認(rèn)為:ARDS發(fā)生時(shí),如果內(nèi)體內(nèi)EPC水平過(guò)低或活力低下,往往預(yù)后不佳。因此,EPC 已成為反映ALI血管損傷程度的指標(biāo)之一,同時(shí)也是對(duì)炎癥預(yù)后判斷的重要預(yù)警指標(biāo)[20- 22]。對(duì)于上述現(xiàn)象,Denburg等[23]提出,炎癥反應(yīng)時(shí)釋放的炎癥介質(zhì)及多種未知因素動(dòng)員骨髓的EPC 進(jìn)入外周循環(huán)感知損傷,并通過(guò)動(dòng)員和遷移到達(dá)受損部位,修復(fù)血管內(nèi)皮,形成新生血管,恢復(fù)局部血流,促進(jìn)組織結(jié)構(gòu)和功能的修復(fù)。然而,在生理狀態(tài)下EPC的水平極低,一旦機(jī)體遭受重大打擊,體內(nèi)的EPC往往不能及時(shí)滿足機(jī)體血管損傷修復(fù)的需要。因此,EPC移植作為利用EPC治療疾病的有效手段,被人們逐漸認(rèn)識(shí)和重視。
近幾年,已有學(xué)者開始嘗試通過(guò)自體EPC體外擴(kuò)增后回輸至ALI動(dòng)物模型體內(nèi)進(jìn)行ALI/ARDS治療,并已取得明顯的治療效果[24- 25]。但從臨床實(shí)用角度考慮,自體細(xì)胞回輸往往不符合臨床實(shí)際工作需要:由于ALI/ARDS發(fā)病的突然性,患者很少有機(jī)會(huì)預(yù)留干細(xì)胞以備臨床治療之需。而EPC抗原性相對(duì)較弱,機(jī)體排斥反應(yīng)較輕,因此,同種異體EPC移植可能是更為有效并切合臨床實(shí)際工作需要的治療方法。與此同時(shí),人們發(fā)現(xiàn)EPC至少存在2種細(xì)胞亞型:早期EPC和晚期EPC。在細(xì)胞的生長(zhǎng)、增殖、成血管能力等方面,晚期EPC均明顯優(yōu)于早期EPC。因此,晚期EPC被認(rèn)為具有更加廣泛和美好的治療前景[26]。然而,由于對(duì)晚期EPC的研究和報(bào)道相對(duì)較晚,目前尚未見(jiàn)有明確使用晚期EPC治療ALI/ARDS的研究報(bào)道。本研究使用培養(yǎng)超過(guò)3周的晚期EPC作為移植細(xì)胞治療ALI/ARDS,在細(xì)胞體外擴(kuò)增、培養(yǎng)的過(guò)程中,細(xì)胞生長(zhǎng)方式呈現(xiàn)典型的“鋪路石”樣生長(zhǎng)排列,且細(xì)胞增殖速度較早期EPC明顯加快,符合晚期EPC的生長(zhǎng)特點(diǎn)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:使用這種晚期EPC進(jìn)行細(xì)胞移植治療,能夠明顯改善LPS所誘導(dǎo)的肺組織損傷,維持肺血管內(nèi)皮的完整性,減少肺泡結(jié)構(gòu)的破壞以及炎癥因子向肺間質(zhì)和肺泡內(nèi)的聚集。
為了有效地對(duì)輸入體內(nèi)的外源性內(nèi)皮祖細(xì)胞進(jìn)行細(xì)胞示蹤,我們選用了轉(zhuǎn)基因EGFP- BALB/c小鼠作為細(xì)胞供體。該種型小鼠基因中含有EGFP基因,其有核細(xì)胞均表達(dá)EGFP蛋白,于熒光顯微鏡下發(fā)出耀眼的綠色熒光,信號(hào)強(qiáng)度高且穩(wěn)定,并可完全避免細(xì)胞標(biāo)記過(guò)程中對(duì)細(xì)胞活性的損傷。此外,由于EGFP基因在EGFP- EPC中穩(wěn)定表達(dá),不受細(xì)胞增殖及分化的影響,因此,能夠更全面、客觀地反映出外源性細(xì)胞在體內(nèi)的增殖及分化情況。我們的研究表明:外源性輸入的EGFP- EPCs能夠在肺血管內(nèi)大量定植,并黏附于血管壁內(nèi)膜上,反映出輸入體內(nèi)的外源性EPC向受損組織及器官趨化的特性。CD34免疫組化染色多用于反映組織內(nèi)新生血管的情況。在本研究中,通過(guò)使用CD34抗體標(biāo)記的肺組織切片觀察,并統(tǒng)計(jì)單位面積內(nèi)陽(yáng)性標(biāo)記的微血管數(shù)量,我們發(fā)現(xiàn):無(wú)論是假手術(shù)組還是ALI組,其肺組織上CD34的表達(dá)均極低,而進(jìn)行細(xì)胞移植的受體鼠肺組織切片上,可看到明顯的陽(yáng)性標(biāo)記,差異顯著。該現(xiàn)象從側(cè)面提示我們:在機(jī)體遭受重大打擊時(shí),自身骨髓的EPC動(dòng)員是非常有限的,往往不能夠滿足急性打擊下機(jī)體自身修復(fù)的需要,因此更凸顯出外源性EPC移植在ALI/ARDS這種突發(fā)打擊下迅速提高血循環(huán)內(nèi)EPC水平、滿足機(jī)體修復(fù)需要的重要而獨(dú)特的優(yōu)勢(shì)。
綜上所述,使用外源性EPC移植治療ALI/ARDS,能夠有效地修復(fù)受損肺血管內(nèi)皮細(xì)胞,維持肺泡- 毛細(xì)血管氣血屏障的完整性,減少炎癥細(xì)胞及炎癥因子向肺間質(zhì)及肺泡內(nèi)浸潤(rùn),從而加速受損肺組織內(nèi)的內(nèi)皮修復(fù)及血管新生,并最終減輕肺損傷。
[1] BERNARD GR,ARTIGAS A,BRIGHAM KL,et al.The American- European Consensus Conference on ARDS.Definitions,mechanisms,relevant outcomes,and clinical trial coordination[J].Am J Respir Crit Care Med,1994,149(3 Pt 1):818- 824.
[2] MUTUNGA M,FULTON B,BULLOCK R,et al.Circulating endothelial cells in patients with septic shock[J].Am J Respir Crit Care Med,2001,163(1):195- 200.
[3] ORFANOS S E,MAVROMMATI I,KOROVESI I,et al.Pulmonary endothelium in acute lung injury:from basic science to the critically ill[J].Intensive Care Med,2004,30(9):1702- 1714.
[4] WARE L B,MATTHAY M A.The acute respiratory distress syndrome[J].N Engl J Med,2000,342(18):1334- 1349.
[5] ASAHARA T,MUROHARA T,SULLIVAN A,et al.Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogenesis[J].Science,1997,275(5302):964- 967.
[6] ASAHARA T,KAWAMOTO A.Endothelial progenitor cells for postnatal vasculogenesis[J].Am J Physiol Cell Physiol,2004,287(3):C572- 579.
[7] HE T,SMITH L A,HARRINGTON S,et al.Transplantation of circulating endothelial progenitor cells restores endothelial function of denuded rabbit carotid arteries[J].Stroke,2004,35(10):2378- 2384.
[8] AICHER A,HEESCHEN C,MILDNER- RIHM C,et al.Essential role of endothelial nitric oxide synthase for mobilization of stem and progenitor cells[J].Nat Med,2003,9(11):1370- 1376.
[9] KAUSHAL S,AMIEL G E,GULESERIAN K J,et al.Functional small- diameter neovessels created using endothelial progenitor cells expandedexvivo[J].Nat Med,2001,7(9):1035- 1040.
[10] KOCHER A A,SCHUSTER M D,SZABOLCS M J,et al.Neovascularization of ischemic myocardium by human bone- marrow- derived angioblasts prevents cardiomyocyte apoptosis,reduces remodeling and improves cardiac function[J].Nat Med,2001,7(4):430- 436.
[11] 張鐵須,周建中.內(nèi)皮祖細(xì)胞與高血壓病[J].現(xiàn)代醫(yī)學(xué),2008,36(2):141- 144.
[12] BURNHAM E L,MEALER M,GAYDOS J,et al.Acute lung injury but not sepsis is associated with increased colony formation by peripheral blood mononuclear cells[J].Am J Respir Cell Mol Biol,2010,43(3):326- 333.
[13] PEICHEV M,NAIYER A J,PEREIRA D,et al.Expression of VEGFR- 2 and AC133 by circulating human CD34(+) cells identifies a population of functional endothelial precursors[J].Blood,2000,95(3):952- 958.
[14] MANIATIS N A,ORFANOS S E.The endothelium in acute lung injury/acute respiratory distress syndrome[J].Curr Opin Crit Care,2008,14(1):22- 30.
[15] HAYES M,CURLEY G,LAFFEY J G.Mesenchymal stem cells- a promising therapy for Acute Respiratory Distress Syndrome[J].F1000 Medicine Reports,2012,4:2.
[16] ZHU Y G,QU J M,ZHANG J,et al.Novel interventional approaches for ALI/ARDS:cell- based gene therapy[J].Mediators Inflamm,2011,560194.
[17] MIROTSOU M,JAYAWARDENA T M,SCHMECKPEPER J,et al.Paracrine mechanisms of stem cell reparative and regenerative actions in the heart[J].J Mol Cell Cardiol,2011,50(2):280- 289.
[18] TSE H F,SIU C W,ZHU S G,et al.Paracrine effects of direct intramyocardial implantation of bone marrow derived cells to enhance neovascularization in chronic ischaemic myocardium[J].Eur J Heart Fail,2007,9(8):747- 753.
[19] YANG Z,von BALLMOOS M W,FAESSLER D,et al.Paracrine factors secreted by endothelial progenitor cells prevent oxidative stress- induced apoptosis of mature endothelial cells[J].Atherosclerosis,2010,211(1):103- 109.
[20] BURNHAM E L,TAYLOR W R,QUYYUMI A A,et al.Increased circulating endothelial progenitor cells are associated with survival in acute lung injury[J].Am J Respir Crit Care Med,2005,172(7):854- 860.
[21] YAMADA M,KUBO H,ISHIZAWA K,et al.Increased circulating endothelial progenitor cells in patients with bacterial pneumonia:evidence that bone marrow derived cells contribute to lung repair[J].Thorax,2005,60(5):410- 413.
[22] YAMADA M,KUBO H,KOBAYASHI S,et al.Bone marrow- derived progenitor cells are important for lung repair after lipopolysaccharide- induced lung injury[J].J Immunol,2004,172(2):1266- 1272.
[23] DENBURG J A,van EEDEN S F.Bone marrow progenitors in inflammation and repair:new vistas in respiratory biology and pathophysiology[J].Eur Respir J,2006,27(3):441- 445.
[24] GAO X,CHEN W,LIANG Z,et al.Autotransplantation of circulating endothelial progenitor cells protects against lipopolysaccharide- induced acute lung injury in rabbit[J].Int Immunopharmacol,2011,11(10):1584- 1590.
[25] LAM C F,LIU Y C,HSU J K,et al.Autologous transplantation of endothelial progenitor cells attenuates acute lung injury in rabbits[J].Anesthesiology,2008,108(3):392- 401.
[26] HUR J,YOON C H,KIM H S,et al.Characterization of two types of endothelial progenitor cells and their different contributions to neovasculogenesis[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2004,24(2):288- 293.