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        應(yīng)用real—timePCR定量檢測(cè)土壤中小麥紋枯病菌方法的建立

        2014-08-20 20:02:57徐娜娜李鵬昌于金鳳
        山東農(nóng)業(yè)科學(xué) 2014年3期

        徐娜娜 李鵬昌 于金鳳

        摘要:根據(jù)小麥紋枯病菌Rhizoctonia cerealis AG-D融合群ITS區(qū)的DNA序列設(shè)計(jì)特異性引物對(duì)WKF-8/WKR-8, 對(duì)引物的特異性和靈敏性進(jìn)行檢測(cè),建立并優(yōu)化基于SYBR GreenⅠ熒光染料法的real-time PCR 反應(yīng)體系,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。檢測(cè)范圍在1.0×10-3~10 ng/μl之間有良好的線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)R2為0.995,擴(kuò)增效率為99.7%,靈敏度比常規(guī)PCR 方法高100倍。結(jié)果表明,該方法具有快速、特異性強(qiáng)、敏感度高等特點(diǎn)。

        關(guān)鍵詞:小麥紋枯病菌;SYBR GreenⅠ熒光染色法;real-time PCR

        中圖分類號(hào):S435.12:Q785 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)號(hào):A 文章編號(hào):1001-4942(2014)03-0106-04

        AbstractA pair of specific primers, WKF-8/WKR-8, were designed according to the DNA sequence of the internal transcribed spacers (ITS) region of Rhizoctonia cerealis AG-D fusion group. Their specificity and sensitivity were detected. A real-time polymerase chain reaction system was developed and optimized based on SYBR GreenⅠfluorescent staining method. And the standard curve was drawn. A good linear relationship between the template DNA amount and cycle threshold (Ct) value was observed in the range of 1.0×10-3~10 ng/μl. The correlation coefficient was 0.995, and the amplification efficiency was 99.7%. The sensitivity was 100 times higher than that of conventional PCR. The results showed that this method had characteristics of speediness, high sensitivity and specificity.

        Key wordsRhizoctonia cerealis; SYBR Green Ⅰ fluorescent staining method; Real-time PCR

        小麥在國家糧食安全和農(nóng)業(yè)現(xiàn)代化發(fā)展中占有重要地位[1]。小麥紋枯病是世界范圍內(nèi)嚴(yán)重發(fā)生的小麥病害之一。我國于1973年發(fā)現(xiàn)小麥紋枯病,近年來,隨著小麥品種、栽培制度、肥水條件等的改變,紋枯病發(fā)生危害逐漸加重,已成為影響小麥高產(chǎn)、穩(wěn)產(chǎn)的重大障礙[2]。陳瑩、賈廷祥等的研究表明我國小麥紋枯病的優(yōu)勢(shì)致病群為AG-D融合群[3,4]。綜合考慮和分析災(zāi)害對(duì)小麥產(chǎn)量的影響是小麥生產(chǎn)災(zāi)害診斷與預(yù)防的關(guān)鍵[5]。

        目前對(duì)土壤中小麥紋枯病菌定量檢測(cè)的方法主要是傳統(tǒng)的活體分離、培養(yǎng)獲得菌株或者使用土壤浸出液涂板,促使土壤中的病原菌形成肉眼可見的單菌落,從而估計(jì)出土壤中禾谷絲核菌的量。傳統(tǒng)檢測(cè)方法受人為影響大,可重復(fù)性低,難以實(shí)現(xiàn)標(biāo)準(zhǔn)化檢測(cè)。近年來分子生物學(xué)的快速發(fā)展使得對(duì)病害的早期快速檢測(cè)成為可能,并開始應(yīng)用于紋枯病菌的早期診斷。張廷婷[6]于2012年采用熒光定量PCR 技術(shù)檢測(cè)了花生種皮抗黃曲霉基因表達(dá)強(qiáng)度。Lees等[7]采用real-time PCR的方法,利用特異性引物對(duì)土壤中馬鈴薯黑痣病菌AG-3融合群進(jìn)行了定量檢測(cè)。Sayler和Yang[8]也從感病水稻植株上,定量檢測(cè)了水稻紋枯病菌AG1-IA融合群。方正[9]用兩對(duì)特異性引物從感染小麥紋枯病菌的植株莖基部DNA中擴(kuò)增到了約480 bp的特異性分子片段,可用于對(duì)小麥紋枯病的早期快速診斷和對(duì)病害的監(jiān)測(cè)和預(yù)測(cè)預(yù)報(bào)。

        本研究通過比較普通PCR和real-time PCR方法在檢測(cè)小麥紋枯病方面的優(yōu)缺點(diǎn),試圖建立土壤中小麥紋枯病菌的real-time PCR方法,以定量測(cè)定土壤中小麥紋枯病菌自然潛育狀態(tài)下的侵染量,為該病害的早期預(yù)測(cè)和防治措施的制定提供依據(jù)。

        1材料與方法

        1.1供試材料

        小麥紋枯病菌相關(guān)菌株分離于山東農(nóng)業(yè)大學(xué)小麥試驗(yàn)基地罹病組織,玉米紋枯病菌、棉花立枯病菌、馬鈴薯黑痣病菌、鐮刀菌、蠕孢菌菌株由本實(shí)驗(yàn)室提供。

        1.2菌株DNA的提取與標(biāo)準(zhǔn)品制備

        挑取目的菌株菌絲塊于附有滅菌玻璃紙的PDA培養(yǎng)基培養(yǎng)7 d,刮取菌絲,采用CTAB法[10]提取小麥紋枯病菌、玉米紋枯病菌、棉花立枯病菌、馬鈴薯黑痣病菌以及引起小麥莖基腐病的鐮刀菌和蠕孢菌的DNA。以小麥紋枯病菌WK-206菌株的DNA為標(biāo)準(zhǔn)樣品進(jìn)行梯度稀釋(1.0×10-6~1.0×102 ng/μl)。

        1.3引物設(shè)計(jì)合成

        小麥紋枯病菌DNA經(jīng)克隆測(cè)序,獲得ITS區(qū)序列?;贗TS區(qū)序列,利用引物設(shè)計(jì)軟件DNAman和Primer 5設(shè)計(jì)小麥紋枯病菌的特異性引物對(duì)WKF-8/WKR-8,由上海生工生物工程有限公司合成,并通過常規(guī)PCR和real-time PCR對(duì)引物的特異性進(jìn)行檢測(cè)。

        目前,對(duì)于土壤中小麥紋枯病菌的研究方法主要是微生物純培養(yǎng)法,獲得病原菌群落豐富的多樣性。然而隨著人們對(duì)土壤中微生物的原位生存狀態(tài)研究,發(fā)現(xiàn)常規(guī)分離培養(yǎng)方法難以實(shí)現(xiàn)病原菌的動(dòng)態(tài)監(jiān)測(cè)[13]。新興的實(shí)時(shí)熒光定量PCR 技術(shù)可以同時(shí)對(duì)多個(gè)樣品進(jìn)行分析檢測(cè),具有操作簡(jiǎn)便、快速高效,且高度敏感性等特點(diǎn)[14],因此適合于檢測(cè)環(huán)境中微生物在時(shí)間和空間上的動(dòng)態(tài)變化。endprint

        本研究根據(jù)real-time PCR的特點(diǎn),基于ITS區(qū)設(shè)計(jì)了一對(duì)針對(duì)小麥紋枯病菌的特異性引物,特異性檢測(cè)結(jié)果良好,使用最優(yōu)化的real-time PCR體系建立標(biāo)準(zhǔn)曲線,檢測(cè)待測(cè)樣品。標(biāo)準(zhǔn)曲線的決定系數(shù)R2為0.995,完全適用于對(duì)該菌的定量檢測(cè),最低檢測(cè)下限是1.0×10-5 ng/μl,比常規(guī)PCR高出100倍,結(jié)果穩(wěn)定可靠。該方法特異性強(qiáng)、靈敏度高、檢測(cè)迅速,能很好地用于土壤中小麥紋枯病菌的定量檢測(cè),對(duì)掌握病害發(fā)生發(fā)展及流行以及指導(dǎo)病害預(yù)測(cè)預(yù)報(bào)具有重要意義。

        參考文獻(xiàn):

        [1]王東, 鞠正春. 山東小麥生產(chǎn)發(fā)展?jié)摿Ψ治?[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué), 2013,45(12):99-102.

        [2]檀尊社, 游福欣, 陳潤(rùn)玲. 我國小麥紋枯病的研究進(jìn)展[J]. 河南科技大學(xué)學(xué)報(bào), 2003, 23(1): 46-50.

        [3]陳瑩. 小麥紋枯病和莖基腐病病原菌組成及致病力分析[D]. 南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué), 2009.

        [4]賈廷祥, 吳桂本, 劉傳德,等. 小麥紋枯病病原、發(fā)生規(guī)律及防治研究[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué), 1995(5):36-39.

        [5]劉淑云, 張洪啟, 秦磊磊,等. 山東小麥生產(chǎn)風(fēng)險(xiǎn)預(yù)警模型[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué), 2013, 45(5): 24-29.

        [6]張廷婷, 李春娟, 閆彩霞,等. 熒光定量PCR技術(shù)檢測(cè)花生種皮抗黃曲霉基因表達(dá)強(qiáng)度 [J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué), 2012, 44(5): 9-13.

        [7]Lees A K, Cullen D W, Sullivan L,et al. Development of conventional and quantitative real-time PCR assays for the detection and identification of Rhizoctonia solani AG-3 in potato and soil[J]. Plant Pathology,2002,51(3):293-302.

        [8]Ronald J S,Yang Y N. Detection and quantification of Rhizoctonia solani AG1- IA, the rice sheath blight pathogen, in rice using real-time PCR[J]. Plant Disease, 2007,91:1663-1668.

        [9]方正. 小麥紋枯病菌的多樣性和分子檢測(cè)[D]. 揚(yáng)州:揚(yáng)州大學(xué), 2003.

        [10]盧圣棟. 現(xiàn)代分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)[M]. 北京:中國協(xié)和醫(yī)科大學(xué)出版社, 1999.

        [11]肖蕊, 余真真, Elsharawy A A,等. 土壤中棉花黃萎病菌SYBR Green I 熒光RT-PCR 定量檢測(cè)技術(shù)研究[J]. 菌物學(xué)報(bào), 2011, 30(4): 598-603.

        [12]劉朝暉, 張旭, 陸維忠. 小麥紋枯病的研究進(jìn)展和對(duì)策[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2000, 16(3):185-190.

        [13]蔡燕飛, 廖宗文. 土壤微生物生態(tài)學(xué)研究方法進(jìn)展[J]. 土壤與環(huán)境 , 2002, 11(2):167-171.

        [14]陳旭, 齊鳳坤, 康立功,等. 實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)研究進(jìn)展及其應(yīng)用[J]. 東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2010, 41(8):148-155.endprint

        本研究根據(jù)real-time PCR的特點(diǎn),基于ITS區(qū)設(shè)計(jì)了一對(duì)針對(duì)小麥紋枯病菌的特異性引物,特異性檢測(cè)結(jié)果良好,使用最優(yōu)化的real-time PCR體系建立標(biāo)準(zhǔn)曲線,檢測(cè)待測(cè)樣品。標(biāo)準(zhǔn)曲線的決定系數(shù)R2為0.995,完全適用于對(duì)該菌的定量檢測(cè),最低檢測(cè)下限是1.0×10-5 ng/μl,比常規(guī)PCR高出100倍,結(jié)果穩(wěn)定可靠。該方法特異性強(qiáng)、靈敏度高、檢測(cè)迅速,能很好地用于土壤中小麥紋枯病菌的定量檢測(cè),對(duì)掌握病害發(fā)生發(fā)展及流行以及指導(dǎo)病害預(yù)測(cè)預(yù)報(bào)具有重要意義。

        參考文獻(xiàn):

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        [2]檀尊社, 游福欣, 陳潤(rùn)玲. 我國小麥紋枯病的研究進(jìn)展[J]. 河南科技大學(xué)學(xué)報(bào), 2003, 23(1): 46-50.

        [3]陳瑩. 小麥紋枯病和莖基腐病病原菌組成及致病力分析[D]. 南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué), 2009.

        [4]賈廷祥, 吳桂本, 劉傳德,等. 小麥紋枯病病原、發(fā)生規(guī)律及防治研究[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué), 1995(5):36-39.

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        [6]張廷婷, 李春娟, 閆彩霞,等. 熒光定量PCR技術(shù)檢測(cè)花生種皮抗黃曲霉基因表達(dá)強(qiáng)度 [J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué), 2012, 44(5): 9-13.

        [7]Lees A K, Cullen D W, Sullivan L,et al. Development of conventional and quantitative real-time PCR assays for the detection and identification of Rhizoctonia solani AG-3 in potato and soil[J]. Plant Pathology,2002,51(3):293-302.

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        [9]方正. 小麥紋枯病菌的多樣性和分子檢測(cè)[D]. 揚(yáng)州:揚(yáng)州大學(xué), 2003.

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        [11]肖蕊, 余真真, Elsharawy A A,等. 土壤中棉花黃萎病菌SYBR Green I 熒光RT-PCR 定量檢測(cè)技術(shù)研究[J]. 菌物學(xué)報(bào), 2011, 30(4): 598-603.

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        [13]蔡燕飛, 廖宗文. 土壤微生物生態(tài)學(xué)研究方法進(jìn)展[J]. 土壤與環(huán)境 , 2002, 11(2):167-171.

        [14]陳旭, 齊鳳坤, 康立功,等. 實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)研究進(jìn)展及其應(yīng)用[J]. 東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2010, 41(8):148-155.endprint

        本研究根據(jù)real-time PCR的特點(diǎn),基于ITS區(qū)設(shè)計(jì)了一對(duì)針對(duì)小麥紋枯病菌的特異性引物,特異性檢測(cè)結(jié)果良好,使用最優(yōu)化的real-time PCR體系建立標(biāo)準(zhǔn)曲線,檢測(cè)待測(cè)樣品。標(biāo)準(zhǔn)曲線的決定系數(shù)R2為0.995,完全適用于對(duì)該菌的定量檢測(cè),最低檢測(cè)下限是1.0×10-5 ng/μl,比常規(guī)PCR高出100倍,結(jié)果穩(wěn)定可靠。該方法特異性強(qiáng)、靈敏度高、檢測(cè)迅速,能很好地用于土壤中小麥紋枯病菌的定量檢測(cè),對(duì)掌握病害發(fā)生發(fā)展及流行以及指導(dǎo)病害預(yù)測(cè)預(yù)報(bào)具有重要意義。

        參考文獻(xiàn):

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        [6]張廷婷, 李春娟, 閆彩霞,等. 熒光定量PCR技術(shù)檢測(cè)花生種皮抗黃曲霉基因表達(dá)強(qiáng)度 [J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué), 2012, 44(5): 9-13.

        [7]Lees A K, Cullen D W, Sullivan L,et al. Development of conventional and quantitative real-time PCR assays for the detection and identification of Rhizoctonia solani AG-3 in potato and soil[J]. Plant Pathology,2002,51(3):293-302.

        [8]Ronald J S,Yang Y N. Detection and quantification of Rhizoctonia solani AG1- IA, the rice sheath blight pathogen, in rice using real-time PCR[J]. Plant Disease, 2007,91:1663-1668.

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        [10]盧圣棟. 現(xiàn)代分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)[M]. 北京:中國協(xié)和醫(yī)科大學(xué)出版社, 1999.

        [11]肖蕊, 余真真, Elsharawy A A,等. 土壤中棉花黃萎病菌SYBR Green I 熒光RT-PCR 定量檢測(cè)技術(shù)研究[J]. 菌物學(xué)報(bào), 2011, 30(4): 598-603.

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        [14]陳旭, 齊鳳坤, 康立功,等. 實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)研究進(jìn)展及其應(yīng)用[J]. 東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2010, 41(8):148-155.endprint

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