吳曉月, 王 歡, 劉雪靜, 廖家葳, 張 玲, 劉國(guó)慶, 黃 薇
(北京大學(xué)醫(yī)學(xué)部基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院心血管研究所, 北京 100191)
Seipin基因缺陷或者突變可導(dǎo)致先天性脂肪營(yíng)養(yǎng)不良(congenital generalized lipodystrophy,CGL)[1]。它是一種常染色體隱性遺傳性疾病,患者主要表現(xiàn)為全身脂肪組織的缺失,伴有肌肉增生、脂肪肝、胰島素抵抗、心肌肥大等癥狀[2-3]。2004年Javor等[4]的研究發(fā)現(xiàn),在25例CGL病人中,88%的病人出現(xiàn)尿蛋白排泄率升高,92%的病人出現(xiàn)肌酐清除率增高。這些病人腎臟病變主要為1型或者2型膜增生性腎小球腎病,也有部分患者表現(xiàn)為硬化性腎小球腎病或糖尿病性腎病。Seipin基因缺陷作為導(dǎo)致CGL疾病家族的一員,研究發(fā)現(xiàn),45例患者中有7名在14~35歲時(shí)死亡,其中2例死于腎功能衰竭[5]。為了研究seipin基因缺陷是否能引起腎臟損害及可能機(jī)制,本實(shí)驗(yàn)利用我們研究組首次構(gòu)建的seipin基因敲除(seipin-/-)小鼠,通過(guò)對(duì)尿白蛋白含量、腎臟功能及腎臟病理改變的研究,明確seipin基因缺陷能否引起腎損害,同時(shí)對(duì)可能機(jī)制進(jìn)行初步探討。
1.1動(dòng)物 6月齡體重22~25 g的雄性seipin-/-小鼠及C57BL/6野生型(wild-type, WT)小鼠(北京大學(xué)醫(yī)學(xué)部實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心),隨機(jī)分為2組,每組8只。
1.2試劑和儀器 血糖測(cè)定試劑盒(中生北控);小鼠adiponectin和leptinELISA試劑盒(Millipore);小鼠insulinELISA試劑盒(上海依科賽生物);RNA反轉(zhuǎn)及實(shí)時(shí)定量PCR試劑盒(Promega);小鼠尿白蛋白(urinaryalbumin,UAlb)ELISA試劑盒(Bethyl);實(shí)時(shí)定量PCR儀(MIResearch);小鼠代謝籠(Tecniplast);圖像分析軟件(LeicaQWIN)。
2.1Seipin-/-小鼠基因型鑒定 小鼠離乳后剪尾消化,進(jìn)行DNA抽提,然后PCR基因型鑒定,引物序列為:loxP上游引物5’-CTTGTCTCAAAGGGGTCT-3’,下游引物5’-CAACAGAACAGACGCT-3’;PNRI上游引物5’-TCTATGGCTCCTTCTACTACTC-3’,下游引物5’-CGAATGATATGACGACGACT -3’。具體方法參照參考文獻(xiàn)[6]。
2.2實(shí)時(shí)熒光定量PCR 取C57BL/6小鼠各組織(見(jiàn)圖2),其中腎臟分離腎皮質(zhì)、腎髓質(zhì)提取腎小球[7]。提取各組織總RNA,將其逆轉(zhuǎn)錄為cDNA后,以GAPDH為內(nèi)參照,進(jìn)行實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)基因表達(dá)水平[8]。Seipin上游引物5’-GGCTCCTTCTACTACTCCTACA-3’,下游引物5’-CCGATCACGTCCACTCTT-3’。
2.3腎臟相關(guān)指標(biāo)檢測(cè) 代謝籠留取24h尿,測(cè)24h尿肌酐和尿白蛋白;動(dòng)物處死前稱重及檢測(cè)脛骨長(zhǎng),取右腎去包膜稱重。腎臟于4% 多聚甲醛中固定,石蠟包埋,3μm切片。每個(gè)腎臟連續(xù)切片5張,過(guò)碘酸雪夫氏(PAS)染色后,隨機(jī)選取100個(gè)腎小球,采用定量圖像分析軟件,計(jì)算腎小球表面積和腎基質(zhì)表面積[9]。同時(shí)過(guò)碘酸六胺銀染色(PASM)觀察腎基質(zhì)沉積,Masson染色觀察腎纖維化情況。
2.4血漿生化指標(biāo)檢測(cè) 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物禁食4 h取血,離心后取血漿-20 ℃保存。血漿葡萄糖、胰島素、脂聯(lián)素及瘦素測(cè)定方法均按試劑盒說(shuō)明書操作。葡萄糖耐量實(shí)驗(yàn)時(shí),小鼠禁食4 h,腹腔注射20% 葡萄糖2 g/kg。分別在注射后0、15、30、60和120 min采血進(jìn)行血糖測(cè)定。
采用SPSS 17.0軟件處理。數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤(mean±SEM)表示,數(shù)據(jù)采用t檢驗(yàn)統(tǒng)計(jì)分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
將卵細(xì)胞特異性的Cre轉(zhuǎn)基因動(dòng)物與seipin基因第3外顯子兩側(cè)帶有l(wèi)oxP位點(diǎn)的動(dòng)物進(jìn)行雜交,得到seipin雜合子(seipin+/-)小鼠,純合子是由雜合子互相交配獲得[6]。野生型僅可擴(kuò)增出1條300 bp 的帶有l(wèi)oxP基因序列的條帶,seipin-/-小鼠則僅能擴(kuò)增出1條帶有卵細(xì)胞Cre啟動(dòng)子PNRI位點(diǎn)的1 100 bp的條帶,見(jiàn)圖1。
Figure 1. Representation of genotyping results in seipin-/- mice; +/+: wild-type mice;+/-: seipin knockout heterozygote mice; -/-: seipin knockout homozygote mice.
Seipin mRNA在6個(gè)月C57BL/6小鼠中主要表達(dá)在睪丸及脂肪,腎臟中也有表達(dá),但是水平較低,僅為睪丸及脂肪的10%~20%,見(jiàn)圖2A。在腎臟中 seipin mRNA主要表達(dá)在腎皮質(zhì),表達(dá)量約為髓質(zhì)的4倍,皮質(zhì)中又主要在腎小球中表達(dá)量最高,見(jiàn)圖2B。
Figure 2. Analysis of seipin mRNA expression levels in different tissues (A) and each part of the kidney (B) by qRT-PCR in C57BL/6 mice.WAT: white adipose tissue;BAT: brown adipose tissue; cortical: cortical substance of kidney; medulla: medulla of kidney.Mean±SEM.n=8.
與WT小鼠相比,seipin-/-小鼠腎臟重量顯著增加,但是腎重/體重比沒(méi)有明顯差異,這可能和小鼠seipin缺陷后肌肉增生,嚴(yán)重脂肪肝導(dǎo)致體重增加有關(guān)。因此我們使用腎重/脛骨長(zhǎng)來(lái)修正動(dòng)物間的個(gè)體差異,發(fā)現(xiàn)seipin-/-小鼠腎重/脛骨長(zhǎng)明顯高于對(duì)照組小鼠(P<0.01)。Seipin-/-小鼠24 h尿微量白蛋白(P<0.01)及肌酐清除率(P<0.01)均較WT小鼠明顯增高,見(jiàn)表1。
表1 Seipin-/-和WT雄性小鼠6個(gè)月時(shí)體重、腎重、尿白蛋白及肌酐清除率的比較
*P<0.05,**P<0.01 vsWT.
PASM將富含IV型膠原的腎系膜基質(zhì)、腎小球基底膜染成黑色。和WT小鼠相比,seipin-/-可見(jiàn)明顯的腎小球系膜區(qū)增寬,系膜細(xì)胞和系膜基質(zhì)增生,見(jiàn)圖3A;D。PAS染色將基質(zhì)染成紅色,定量結(jié)果顯示seipin-/-小鼠腎小球表面積明顯增大(P<0.05),見(jiàn)圖3G;腎小球基質(zhì)沉積增多(P<0.05),見(jiàn)圖3H。Masson染色沒(méi)有發(fā)現(xiàn)seipin-/-小鼠出現(xiàn)明顯的腎纖維化,見(jiàn)圖3C、F。
Seipin-/-小鼠和WT小鼠相比,空腹血糖增高,糖耐量實(shí)驗(yàn)異常,血漿胰島素含量顯著增加(P<0.01),提示seipin-/-小鼠有胰島素抵抗。由于脂肪組織的缺失,和對(duì)照組小鼠相比,seipin-/-小鼠血漿瘦素(P<0.01)及脂聯(lián)素(P<0.05)水平明顯降低,見(jiàn)圖4。
Seipin是通過(guò)定位克隆的方法于2001年由Magre等[1]從 9個(gè)先天性全身脂肪營(yíng)養(yǎng)不良的家系中篩選出來(lái)的,是一個(gè)2次跨膜蛋白,定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)[10]。目前seipin的研究主要集中在脂肪細(xì)胞的分化、脂解及脂滴形成上[11-12],關(guān)于它對(duì)腎臟的影響尚不明確。
我們首次發(fā)現(xiàn)將小鼠seipin基因敲除后,小鼠出現(xiàn)了明顯的早期腎臟損傷,主要表現(xiàn)為24h尿白蛋白含量及肌酐清除率增高,腎小球肥大及腎小球基質(zhì)沉積增多。通過(guò)檢測(cè)seipinmRNA在全身各組織表達(dá),我們發(fā)現(xiàn)其在睪丸及脂肪中表達(dá)量最高,在腎臟中可檢測(cè)到較低水平的seipin表達(dá),主要位于腎小球部位。
Figure 3. Renal morphology and quantitative analysis of glomerular surface area and mesangial surface area in seipin-/- mice (×400). A,D: renal PASM staining;B,E: PAS staining; C,F: Masson staining. A,B,C: WT mice; D,E,F: seipin-/- mice; G: quantification of glomerular surface area; H: mesangial surface area.Mean±SEM.n=8.*P<0.05 vs WT group.
Figure 4. Glucose tolerance (A), plasma insulin (B), leptin (C) and adiponectin (D) levels in seipin-/- and WT mice.Mean±SEM.n=8.*P<0.05,**P<0.01 vs WT group.
Seipin缺失后表現(xiàn)為以脂肪缺失為主的全身代謝障礙[6],我們?cè)趕eipin-/-小鼠中發(fā)現(xiàn)由脂肪組織分泌的瘦素和脂聯(lián)素在血漿中的含量降低,同時(shí)存在明顯的胰島素抵抗(圖4)。
瘦素主要由血漿游離型發(fā)揮生理功能,參與機(jī)體能量代謝,抑制攝食,增加胰島素敏感性。瘦素分泌不足、受體缺陷或瘦素抵抗導(dǎo)致的高瘦素血癥可通過(guò)促進(jìn)胰島素抵抗、激活RAS系統(tǒng)、誘發(fā)氧化應(yīng)激及免疫功能紊亂從而促進(jìn)腎臟的損傷[13-14]。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)seipin-/-小鼠有明顯的腎損傷,可能與瘦素水平下降相關(guān)。另有研究表明,CGL病人用瘦素治療后,可明顯改善胰島素抵抗及蛋白尿[15],進(jìn)一步證實(shí)了上述觀點(diǎn)。
脂聯(lián)素是脂肪組織分泌最多的因子。它可以通過(guò)NF-κB及TNF-α途徑抑制炎癥及保護(hù)內(nèi)皮細(xì)胞,起到抗動(dòng)脈粥樣硬化和增加胰島素敏感性等作用。脂聯(lián)素的缺失,可導(dǎo)致小鼠出現(xiàn)尿白蛋白增高和腎臟纖維化等病變,與炎癥及氧化增高相關(guān)[16]。本實(shí)驗(yàn)seipin-/-小鼠的腎損害與脂聯(lián)素水平下降可能也有一定關(guān)系,但目前還沒(méi)有用脂聯(lián)素治療改善CGL病人腎損傷的報(bào)道。
臨床研究發(fā)現(xiàn)88%的CGL患者均有早期腎損害的表現(xiàn)[4],也提示seipin基因缺陷導(dǎo)致的腎損害至少部分可能是由于脂肪組織缺失后,全身代謝障礙引起。
雖然seipin在腎臟中表達(dá)水平不高, 但seipin-/-小鼠的腎損傷除了與全身代謝障礙相關(guān)外,是否與腎局部seipin表達(dá)的缺失相關(guān)將是我們下一步要研究的內(nèi)容。Seipin腎臟特異敲除小鼠將為我們解決這一問(wèn)題。
綜上所述,本研究首次發(fā)現(xiàn)seipin-/-小鼠出現(xiàn)明顯的腎損傷,可能與全身脂肪缺失導(dǎo)致的瘦素和脂聯(lián)素水平下降相關(guān)。
[參 考 文 獻(xiàn)]
[1]MagreJ,DelepineM,KhalloufE,etal.IdentificationofthegenealteredinBerardinelli-Seipcongenitallipodystrophyonchromosome11q13[J].NatureGenetics, 2001,28(4):365-370.
[2] Simha V, Agarwal AK, Oral EA, et al. Genetic and phenotypic heterogeneity in patients with mandibuloacral dysplasia-associated lipodystrophy[J]. J Clin Endocrinol Metab, 2003,88(6):2821-2824.
[3]AgarwalAK,GargA.Congenitalgeneralizedlipodystrophy:significanceoftriglyceridebiosyntheticpathways[J].TrendsEndocrinolMetab, 2003,14(5):214-221.
[4] Javor ED, Moran SA, Young JR, et al. Proteinuric nephropathy in acquired and congenital generalized lipodystrophy: baseline characteristics and course during recombinant leptin therapy[J]. J Clin Endocrinol Metab, 2004,89(7):3199-3207.
[5]VanMaldergemL,MagreJ,KhalloufTE,etal.Genotype-phenotyperelationshipsinBerardinelli-Seipcongenitallipodystrophy[J].JMedGenet,2002, 39(10):722-733.
[6] Cui X, Wang Y, Tang Y, et al. Seipin ablation in mice results in severe generalized lipodystrophy[J]. Human Mol Genetics, 2011,20(15):3022-3030.
[7]MinoruTakemotoNA,HolgerGerhardtAL.Anewmethodforlargescaleisolationofkidneyglomerulifrommice[J].AmJPathol, 2002,161(3):799-805.
[8] Fink L, Seeger W, Ermert L, et al. Real-time quantitative RT-PCR after laser-assisted cell picking[J]. Nature Med, 1998,4(11):1329-1333.
[9]HuangW,GalloisY,BoubyN,etal.GeneticallyincreasedangiotensinI-convertingenzymelevelandrenalcomplicationsinthediabeticmouse[J].ProcNatlAcadSciUSA,2001,98(23):13330-13334.
[10] Lundin C, Nordstrom R, Wagner K, et al. Membrane topology of the human seipin protein[J]. FEBS Lett, 2006,580(9):2281-2284.
[11]PayneVA,GrimseyN,TuthillA,etal.ThehumanlipodystrophygeneBSCL2/seipinmaybeessentialfornormaladipocytedifferentiation[J].Diabetes,2008,57(8):2055-2060.
[12] Liu L, Jiang Q, Wang X, et al. Adipose-specific knockout of Seipin/Bscl2 results in progressive lipodystrophy[J]. Diabetes, 2014,63(7):2320-2331.
[13]NasrallahMP,ZiyadehFN.Overviewofthephysiologyandpathophysiologyofleptinwithspecialemphasisonitsroleinthekidney[J].SeminarsNephrol,2013,33(1):54-65.
[14] Procaccini C, Jirillo E, Matarese G. Leptin as an immunomodulator[J]. Mol Aspects Med, 2012,33(1):35-45.
[15]ChongAY,LupsaBC,CochranEK,etal.Efficacyofleptintherapyinthedifferentformsofhumanlipodystrophy[J].Diabetologia, 2010,53(1):27-35.
[16] Rüster C, Wolf G. Adipokines promote chronic kidney disease[J]. Nephrol Dial Transplant, 2013, 28(4): 8-14.