鄧明達(dá)
(3M中國有限公司,上海 200336)
基于培養(yǎng)環(huán)境的混合狀態(tài)進(jìn)行增光處理的新型光發(fā)酵制氫工藝
鄧明達(dá)
(3M中國有限公司,上海 200336)
實(shí)驗(yàn)研究了不同培養(yǎng)環(huán)境的混合狀態(tài)下光照強(qiáng)度對(duì)光合細(xì)菌生長和光發(fā)酵產(chǎn)氫的影響,提出靜態(tài)培養(yǎng)和動(dòng)態(tài)培養(yǎng)狀態(tài)下的光飽和點(diǎn)分別為4000lux和6000lux。分析了Rhodobacter sphaeroides ZX-5培養(yǎng)環(huán)境中,光照強(qiáng)度隨菌體細(xì)胞濃度及光傳播距離增加而衰減的變化規(guī)律,得到了光在菌液傳遞過程中衰減的數(shù)學(xué)模型,即I=I0exp[-(0.4 814+0.2 991 OD660nm)·L]。首次提出了基于培養(yǎng)環(huán)境的混合狀態(tài)進(jìn)行增光處理的新型光發(fā)酵制氫策略,使得最大產(chǎn)氫速率達(dá)到161.7mlH2/lh。
生物制氫;球形紅假單胞菌;光照強(qiáng)度;產(chǎn)氫速率
隨著社會(huì)文明的不斷進(jìn)步和工業(yè)化程度的不斷提高,人類對(duì)能源的需求日益增加,有限的化石能源已經(jīng)不能滿足世界各國對(duì)能源的需求。能源短缺,環(huán)境污染是人類未來面臨的難題,尋找可再生的清潔能源已成為世界范圍內(nèi)能源界及其相關(guān)領(lǐng)域關(guān)注的焦點(diǎn)問題?;剂先紵龝r(shí)生成CHx、COx、NOx、SOx、灰塵、煙霧、焦油等有機(jī)污染物,造成了嚴(yán)重的環(huán)境污染并使全球氣候發(fā)生變化[1]。
生物制氫所用的原料是城市污水、生活垃圾、動(dòng)物糞便等有機(jī)廢物,通過發(fā)酵細(xì)菌或光合細(xì)菌的生物降解處理可以獲得氫氣,同時(shí)凈化水質(zhì),達(dá)到保護(hù)環(huán)境的作用。因此,無論從環(huán)境保護(hù),還是從新能源開發(fā)的角度來看,生物質(zhì)制氫都具有很大的發(fā)展前途,它不僅能給人們提供清潔的能源,又能處理有機(jī)廢物,保護(hù)環(huán)境,獲得可觀的經(jīng)濟(jì)效益,是一條可持續(xù)發(fā)展的道路[2-4]。生物制氫作為一種符合可持續(xù)發(fā)展戰(zhàn)略的方向,已在世界上引起廣泛重視,迄今為止,國際上已有的生物制氫方法有藍(lán)細(xì)菌和綠藻光分解制氫[5]、體外酶合成制氫[6]、厭氧發(fā)酵產(chǎn)氫[7-11]、光發(fā)酵產(chǎn)氫[12-14]以及厭氧-光合細(xì)菌耦合發(fā)酵產(chǎn)氫[15-17]等多種。
光合細(xì)菌簡稱PSB(Photosynthetic Bacteria),是一群能在厭氧或好氧條件下,以光源作為能源分解有機(jī)物進(jìn)行光合作用的細(xì)菌[18]。光合細(xì)菌制氫過程中,影響光合產(chǎn)氫的因素很多,主要有菌株特性、溫度、光照條件、pH值、種齡、C源、N源以及與氫代謝相關(guān)的三種酶的酶活等因素,其中最大的問題就是光的轉(zhuǎn)化效率。光在光生物反應(yīng)器(Photobioreactor,PBR)內(nèi)隨著光程的增加光強(qiáng)急劇下降,光強(qiáng)在反應(yīng)器內(nèi)部的分布很不均勻;同時(shí),有些底物在代謝過程中,往往會(huì)產(chǎn)生顏色變化,更進(jìn)一步阻礙光的傳遞。另一方面,隨著細(xì)胞的代謝生長,PBR內(nèi)透光率隨之下降,因此賴以光能的產(chǎn)氫效率會(huì)顯著下降。這已成為PBR光合菌制氫研究中亟待解決的技術(shù)難題[19-21]。
本實(shí)驗(yàn)研究了光強(qiáng)對(duì)光合生物產(chǎn)氫的影響,模擬光在生物反應(yīng)器中的傳遞,并通過靜態(tài)培養(yǎng)和動(dòng)態(tài)培養(yǎng)的比較,指出光合細(xì)菌光飽和點(diǎn)并非固定不變的,而是隨著培養(yǎng)環(huán)境的混合狀態(tài)和菌體生理?xiàng)l件的變化而改變的,同時(shí)確立了基于培養(yǎng)環(huán)境的混合狀態(tài)進(jìn)行增光處理的新型光發(fā)酵制氫策略,大大提高光合細(xì)菌的產(chǎn)氫速率。
1.1 菌種和培養(yǎng)條件
菌種:Rhodobacter sphaeroidesZX-5。
種子培養(yǎng):將1ml種子甘油管倒入裝有100mlRCVBN種子培養(yǎng)基[22]的250ml三角瓶中,pH=7±0.1,180rpm,30±1℃,遮光好氧培養(yǎng),約20h接種于產(chǎn)氫培養(yǎng)基。
產(chǎn)氫培養(yǎng):將1ml種子液加入裝有34mlRCVBN產(chǎn)氫培養(yǎng)基的38ml光合反應(yīng)器中,pH=7±0.1,30±1℃,光照厭氧培養(yǎng),并采用60ml無菌注射器計(jì)量氫氣產(chǎn)量。
1.2 光衰減動(dòng)力學(xué)的測(cè)定
取一系列菌體濃度不同的培養(yǎng)液,注入比色皿中,并通過改變比色皿的個(gè)數(shù)模擬反應(yīng)器中光程的增加,用光照度計(jì)測(cè)量光通過不同濃度的菌液時(shí)光強(qiáng)的衰減程度;入射光的初始光強(qiáng)為7 000lux。
1.3 實(shí)驗(yàn)器材與檢測(cè)方法
光源為60W白熾燈;pH值測(cè)量采用FE20型實(shí)驗(yàn)室pH計(jì)(Mettler-Toledo儀器有限公司);生物量的測(cè)量以O(shè)D660nm表示,采用Spectrumlab22pc型分光光度計(jì)(上海棱光技術(shù)有限公司);光照度的測(cè)量采用ZDS-10自動(dòng)量程照度計(jì)(上海市嘉定學(xué)聯(lián)儀表廠);氣體成分及氫氣含量的測(cè)定采用尾氣質(zhì)譜分析儀(Extrel CMS Max 300-LG,USA);動(dòng)態(tài)培養(yǎng)采用TS-1型脫色搖床(江蘇海門市其林貝爾儀器制造有限公司)。
2.1 光照強(qiáng)度對(duì)光合細(xì)菌生長和產(chǎn)氫性能的影響
表1 -光照強(qiáng)度對(duì)光合細(xì)菌生長和產(chǎn)氫性能的影響
實(shí)驗(yàn)研究了不同光照強(qiáng)度(分別為2 000、3 000、4 000、5 000、6 000、7 000、8 000、9 000lux)對(duì)光合細(xì)菌產(chǎn)氫能力的影響。從表1可知,隨著光照強(qiáng)度的增加,最大產(chǎn)氫速率逐漸增加,并且發(fā)酵周期由90h減少至73h,但pH幾乎不隨光強(qiáng)的變化而變化。另外,光強(qiáng)從2 000lux提高到4 000lux時(shí),氫氣的產(chǎn)量隨之增加,當(dāng)光強(qiáng)為4 000lux時(shí)產(chǎn)量最大,達(dá)到121mlH2/34ml culture medium;繼續(xù)提高光強(qiáng)至9 000lux,氫氣產(chǎn)量反而略有下降。
通過本實(shí)驗(yàn)說明Rhodobacter sphaeroidesZX-5的最適光強(qiáng)為4 000lux,此時(shí)已達(dá)到了“光飽和”現(xiàn)象。
2.2 光衰減動(dòng)力學(xué)模型的建立
在光合細(xì)菌Rhodobacter sphaeroidesZX-5的光發(fā)酵體系中,以6 800lux為初始入射光光強(qiáng),測(cè)量菌體濃度(以O(shè)D660nm表示)和光程距離的變化對(duì)光強(qiáng)在反應(yīng)器內(nèi)部分布的影響,結(jié)果見圖1。從圖1可以看出,在Rhodobacter sphaeroidesZX-5的光發(fā)酵體系中,隨著菌體濃度和光程距離的增加,反應(yīng)器內(nèi)部的光照強(qiáng)度迅速衰減。這說明:在反應(yīng)器內(nèi)部的同一位置,光強(qiáng)是隨著菌體濃度的增加而變化的。在光發(fā)酵初期,菌體細(xì)胞濃度較小,光衰減程度低,而到了光發(fā)酵后期,隨著菌體細(xì)胞濃度的增加,菌體細(xì)胞的遮光作用增強(qiáng),導(dǎo)致光衰減嚴(yán)重。
圖1 光程距離和菌體濃度對(duì)光強(qiáng)衰減的影響
通過回歸分析,可得到光照強(qiáng)度在Rhodobacter sphaeroides ZX-5光發(fā)酵體系中衰減的數(shù)學(xué)模型:
其中,I為某一光程距離上的實(shí)際光強(qiáng)(lux),I0為初始入射光強(qiáng)度(lux),L為光程距離(cm),OD660nm代表菌體細(xì)胞濃度。
光發(fā)酵體系中光衰減數(shù)學(xué)模型的建立,有助于我們模擬光強(qiáng)在反應(yīng)器內(nèi)部的分布,并據(jù)此對(duì)培養(yǎng)過程中對(duì)光照不足的位置進(jìn)行增加光照處理。
2.3 培養(yǎng)環(huán)境的不同混合狀態(tài)對(duì)光發(fā)酵產(chǎn)氫的影響
實(shí)驗(yàn)2.1采用動(dòng)態(tài)培養(yǎng)的方式,在實(shí)驗(yàn)過程中,我們發(fā)現(xiàn)反應(yīng)器底部有大量菌體沉淀的現(xiàn)象。因此,我們擬采用動(dòng)態(tài)培養(yǎng)的方式將菌體細(xì)胞懸浮于培養(yǎng)體系中,從而使菌液混合更加均勻,同時(shí)通過動(dòng)態(tài)培養(yǎng)使氫氣析出迅速,盡量減少底物抑制,觀察能否提高產(chǎn)氫速率。
根據(jù)實(shí)驗(yàn)2.1的結(jié)果,動(dòng)態(tài)培養(yǎng)選在4000lux光強(qiáng)下進(jìn)行,實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表2。
表2 -不同培養(yǎng)模式對(duì)光發(fā)酵產(chǎn)氫的影響
從表2可知,動(dòng)態(tài)培養(yǎng)與靜態(tài)培養(yǎng)相比,縮短了光發(fā)酵周期,但是底物轉(zhuǎn)化率較低,僅為靜態(tài)培養(yǎng)時(shí)的78.46%。因此,能否提高動(dòng)態(tài)培養(yǎng)的底物轉(zhuǎn)化率,則直接影響是否可以大幅度提高光發(fā)酵的產(chǎn)氫速率。
由圖2可知:在光發(fā)酵過程中,動(dòng)態(tài)培養(yǎng)從第8小時(shí)開始,菌體濃度(OD660nm)始終大于靜態(tài)培養(yǎng)的菌體濃度(OD660nm),并且從第18小時(shí)開始,兩個(gè)體系的菌體濃度(OD660nm)均趨于穩(wěn)定,進(jìn)入菌體生長的穩(wěn)定期;另外,通過與圖3比較,不管是動(dòng)態(tài)培養(yǎng)還是靜態(tài)培養(yǎng),光發(fā)酵產(chǎn)氫過程均發(fā)生在菌體細(xì)胞生長的穩(wěn)定期內(nèi)。
圖2 靜態(tài)培養(yǎng)與動(dòng)態(tài)培養(yǎng)過程中OD660nm和pH的變化曲線
圖3 靜態(tài)培養(yǎng)與動(dòng)態(tài)培養(yǎng)的光發(fā)酵產(chǎn)氫過程曲線
根據(jù)2.2得到的光衰減數(shù)學(xué)模型可知,OD660nm值大,意味著光在菌液傳遞的過程中衰減現(xiàn)象加劇。從而推斷:可能是因?yàn)榫褐泄鈴?qiáng)的不足,導(dǎo)致動(dòng)態(tài)光發(fā)酵的底物轉(zhuǎn)化率偏低。
擬設(shè)計(jì)增光實(shí)驗(yàn),通過提高初始入射光光強(qiáng),觀察是否可以提高動(dòng)態(tài)光發(fā)酵的底物轉(zhuǎn)化率低,從而達(dá)到提高光發(fā)酵產(chǎn)氫速率的目的。
2.4 基于混合狀態(tài)進(jìn)行增光光發(fā)酵制氫工藝策略的確定
2.4.1 實(shí)驗(yàn)原理
根據(jù)2.2得到的光衰減數(shù)學(xué)模型進(jìn)行估算:
假設(shè)初始入射光為4 000lux時(shí),靜態(tài)培養(yǎng)結(jié)束時(shí)OD660nm為1.73,動(dòng)態(tài)培養(yǎng)結(jié)束時(shí)OD660nm為2.35,見表2。又因?yàn)閺?8小時(shí)開始,兩個(gè)體系的ODv值均趨于穩(wěn)定,見圖2,所以假定發(fā)酵結(jié)束時(shí)的OD660nm等于產(chǎn)氫過程中的OD660nm。那么,相同光強(qiáng)在動(dòng)態(tài)培養(yǎng)和靜態(tài)培養(yǎng)時(shí)菌液中的分布,見表3。通過提高初始入射光的強(qiáng)度,使得光強(qiáng)在動(dòng)態(tài)培養(yǎng)時(shí)菌液中的分布與靜態(tài)培養(yǎng)時(shí)的相當(dāng)或者優(yōu)于靜態(tài)培養(yǎng)的光照條件,觀察能否提高振蕩光發(fā)酵的底物轉(zhuǎn)化率。
表3 不同混合狀態(tài)及初始入射光強(qiáng)度對(duì)發(fā)酵液中光強(qiáng)分布的影響
與靜態(tài)培養(yǎng)相比,初始入射光光強(qiáng)同樣為4 000lux時(shí),在動(dòng)態(tài)培養(yǎng)條件下的衰減要嚴(yán)重的多;當(dāng)把動(dòng)態(tài)培養(yǎng)條件下的初始入射光光強(qiáng)提高至6 000lux時(shí),在光程2cm處,光強(qiáng)度幾乎與靜置發(fā)酵時(shí)一致,而在反應(yīng)器內(nèi)部則優(yōu)于靜態(tài)培養(yǎng)內(nèi)部的光強(qiáng)分布;繼續(xù)將光強(qiáng)提高到7 000lux~8 000lux時(shí),其在反應(yīng)器內(nèi)部的光強(qiáng)分布則遠(yuǎn)遠(yuǎn)優(yōu)于入射光為4 000lux時(shí)的靜態(tài)培養(yǎng)內(nèi)部的光強(qiáng)分布(表3)。
2.4.2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果
由實(shí)驗(yàn)結(jié)果表4可知,通過增加入射光光強(qiáng),動(dòng)態(tài)培養(yǎng)的氫氣產(chǎn)量上升,OD660nm下降,說明反應(yīng)器內(nèi)部光照強(qiáng)度不足是導(dǎo)致動(dòng)態(tài)培養(yǎng)發(fā)酵底物轉(zhuǎn)化率低的原因之一。
表4 不同培養(yǎng)模式及不同初始入射光強(qiáng)度對(duì)光發(fā)酵產(chǎn)氫的影響
圖4 動(dòng)態(tài)培養(yǎng)模式下,不同初始入射光強(qiáng)度對(duì)底物轉(zhuǎn)化率和菌體生長(以O(shè)D660nm表示)的影響
圖5 動(dòng)態(tài)培養(yǎng)模式下,不同初始入射光強(qiáng)度對(duì)最大產(chǎn)氫速率和平均產(chǎn)氫速率的影響
由圖4知,光強(qiáng)從4 000lux增加到8 000lux過程中,OD660nm卻從2.35下降到1.86,與靜態(tài)培養(yǎng)的OD非常接近,而光強(qiáng)的增加則對(duì)pH影響不大,基本維持穩(wěn)定在pH:7.18±0.03。另外,隨著光強(qiáng)的增加,氫氣的產(chǎn)量逐漸增加。但是當(dāng)光強(qiáng)達(dá)到6 000lux時(shí),再增加光強(qiáng),動(dòng)態(tài)培養(yǎng)的氫氣產(chǎn)量不再增加,幾乎維持恒定,說明光強(qiáng)6 000lux為動(dòng)態(tài)光發(fā)酵條件下的光飽和點(diǎn),這與靜態(tài)培養(yǎng)時(shí)400lux為光飽和點(diǎn)是不一致的。通過該實(shí)驗(yàn)可以得出:光合細(xì)菌的光飽和點(diǎn)是隨著外部環(huán)境條件的變化而發(fā)生變化的,并非固定不變的。
由圖5知:通過光強(qiáng)的增加,動(dòng)態(tài)培養(yǎng)的發(fā)酵周期縮短,氫氣得率提高,進(jìn)而使得平均產(chǎn)氫反應(yīng)速率和最大產(chǎn)氫速率均得到大幅度的提高。
3.1 實(shí)驗(yàn)結(jié)論
本文研究了不同光照強(qiáng)度對(duì)光合細(xì)菌產(chǎn)氫的影響,確定了3 000lux為靜態(tài)培養(yǎng)條件下的最佳光照強(qiáng)度;同時(shí)模擬了光在菌液中的衰減情況,建立了光衰減動(dòng)力學(xué)數(shù)學(xué)模型;實(shí)驗(yàn)提出了基于培養(yǎng)環(huán)境的混合狀態(tài)進(jìn)行增光處理的新型光發(fā)酵制氫工藝,提高了光發(fā)酵的最大產(chǎn)氫速率。
3.2 研究趨勢(shì)
為了提高產(chǎn)氫速率和產(chǎn)氫量,光合細(xì)菌制氫系統(tǒng)目前還存在以下3個(gè)制約因素:(1)生物培養(yǎng)設(shè)備的太陽能轉(zhuǎn)化效率;(2) H2合成過程;(3)生物反應(yīng)器的設(shè)計(jì)和成本。
由于光合微生物制氫過程存在的厭養(yǎng)、光轉(zhuǎn)化率低、連續(xù)高效率產(chǎn)氫時(shí)間短等問題,因此,在深入進(jìn)行產(chǎn)氫生化機(jī)制研究,高產(chǎn)菌株選育的同時(shí),應(yīng)著重以下幾個(gè)方面的研究:
(1)充分利用光合微生物及其它微生物的多樣性和互助性,采用共培養(yǎng)或分步培養(yǎng)技術(shù),利用微生物菌群制氫,解決酶抑制,利用基質(zhì)種類單一,有機(jī)物轉(zhuǎn)化利用率低等問題。
(2)深入進(jìn)行光能吸收、轉(zhuǎn)化和利用方面的研究,用光譜耦合,光有效導(dǎo)入和控制等技術(shù)提高光轉(zhuǎn)化效率。
(3)開展多種原料利用研究,進(jìn)行不同原料下高產(chǎn)菌株的選育,及其影響因素研究,最佳工藝研究,注重利用污染源為原料的產(chǎn)氫技術(shù)研究。
(4)光合生物反應(yīng)器的研究。由于光合微生物產(chǎn)氫效率的高低與太陽光利用轉(zhuǎn)化率有直接的聯(lián)系,因此反應(yīng)器結(jié)構(gòu)研究、光照控制系統(tǒng)的研究也是制氫技術(shù)的重要課題。
[1]Bockris JO’M.The origin of ideas on hydrogen economy and its solution to the decay of the environment[J].Int J Hydrogen Energy, 2002,27:73l-740.
[2]DunnS.Hydrogenfutures:towardasustainableenergy system[J].Int J Hydrogen Energy,2002,27:235-264.
[3]傅秀梅,王亞楠,王長云,鹿守本,管華詩.生物制氫——能源、資源、環(huán)境與經(jīng)濟(jì)可持續(xù)發(fā)展策略[J].中國生物工程雜志, 2007,2007(2):119-125.
[4]肖建民.論氫能源與氫能源系統(tǒng)[J].世界科技研究與進(jìn)展,1997,19(1):82-86.
[5]MelisA.Greenalgahydrogenproduction:progress, challenges and prospects[J].Int J Hydrogen Energy,2002,27:1217-1228.
[6]李永峰,任南琪,胡立杰,史英.生物制氫系統(tǒng)及其產(chǎn)氫機(jī)制[J].能源環(huán)境保護(hù),2005,19(2):5-7.
[7]Lin CY,Lay CH.A nutrient formulation for fermentative hydrogen production using anaerobic sewage sludge microflora[J].Int J Hydrogen Energy,2005,30:285-292.
[8]Zhang YF,Shen JQ.Effect of temperature and iron concentration on the growth and hydrogen production of mixed bacteria[J].Int J Hydrogen Energy,2006,31:441-446.
[9]Hawkes FR,Dinsdale R,Hawkes DL,Huss I.Sustainable fermentativehydrogenproduction:challengesforprocess optimization[J].Int J Hydrogen Energy,2002,27:1339-1347.
[10]Li XZ,Wu JS,Sun DL.Hydrogen sulphide and volatile fatty acid removal from foul air in a fibrous bed bioreactor[J].Water Sci Technol,1998,38:323-329.
[11]N.Q.Ren,H.Chua,S.Y.Chan,etc.Assessingoptimal fermentation type for bio-hydrogen production in continuous-flow acidogenic reactors[J].Bioresource Technol,2007,98,1774-1780.
[12]Toshihiko Kondo,Tatsuki Wakayamab,Jun Miyakeb. Efficient hydrogen production using a multi-layered photobioreactor and a photosynthetic bacterium mutant with reduced pigment[J].Int J Hydrogen Energy,2006,31:1522-1526.
[13]E.Nakada,S.Nishikata,Y.Asada,J.Miyake. Photosynthetic bacterial hydrogen production combined with a fuel cell[J].Int J Hydrogen Energy,1999,24:1053-1057.
[14]YongzhenTao,YanlingHe,YongqiangWu,etal. Characteristics of a new photosynthetic bacterial strain for hydrogen production and its application in wastewater treatment[J].Int J Hydrogen Energy,2008,33:963-973.
[15]李冬敏,陳洪章,李佐虎.生物制氫技術(shù)的研究進(jìn)展[J].生物技術(shù)通報(bào),2003,4:1-5.
[16]Yongzhen Tao,Yang Chen,Yongqiang Wu,etc.High hydrogen yield from a two-step process of dark-and photofermentation of sucrose[J].Int J Hydrogen Energy,2007,32:200-206.
[17]Mark D.Redwood,Lynne E.Macaskie.A two-stage,twoorganism process for biohydrogen from glucose[J].Int J Hydrogen Energy,2006,31:1514-1521.
[18]Asada Y,Ikenaka K.Photobiological hydrogen production [J].J Biosci Bioeng,1999,88:1-6.
[19]王昶,賈士儒,賈慶竹,馬少娜.光合生物制氫技術(shù)[J].生物加工過程,2005,3(4):9-13.
[20]Eiju Nakada,Yasuo Asada,Takaaki Arai,Jun Miyake. Light Penetration into Cell Suspensions of Photosynthetic Bacteria and Relation to Hydrogen Production[J].J Ferment Bioeng,1995,80 (1):53-57.
X505
A
1003-5168(2014)04-0167-04