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        Et-DHA通過激活線粒體途徑和T細(xì)胞granzyme B誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞凋亡*

        2014-05-16 02:17:26陳永順王雪君陳韻帆劉軻莉陳鳳佳魯建軍
        中國病理生理雜志 2014年3期
        關(guān)鍵詞:共培養(yǎng)線粒體活化

        陳 鯤, 陳永順, 王雪君, 陳韻帆, 劉軻莉, 陳鳳佳, 魯建軍△

        (1廣州大學(xué)基因干擾研究所,廣東廣州 510006;2中山大學(xué)附屬第一醫(yī)院胸外科,廣東廣州 510080)

        ·論 著·

        Et-DHA通過激活線粒體途徑和T細(xì)胞granzyme B誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞凋亡*

        陳 鯤1, 陳永順1, 王雪君1, 陳韻帆1, 劉軻莉1, 陳鳳佳2, 魯建軍2△

        (1廣州大學(xué)基因干擾研究所,廣東廣州 510006;2中山大學(xué)附屬第一醫(yī)院胸外科,廣東廣州 510080)

        目的:本研究探討了二十二碳六烯酸乙酯(Et-DHA)對人肝癌HepG2細(xì)胞凋亡的影響。方法:HepG2細(xì)胞用于檢測Et-DHA的抑癌活性,MTT法檢測Et-DHA對HepG2細(xì)胞的直接抑制作用,Hoechst 33258熒光染色觀察細(xì)胞的形態(tài)特征,ELISA法檢測Et-DHA處理后HepG2細(xì)胞的活性氧簇(ROS)釋放量、總超氧化物歧化酶(SOD)和caspase-9活性,Western blotting法檢測胞質(zhì)和線粒體中Bax、Bak、Bid、Bcl-2、Smac和細(xì)胞色素C(Cyt C),以及胞質(zhì)中cleaved caspase-8、cleaved caspase-9和cleaved caspase-3的水平;T細(xì)胞與HepG2細(xì)胞共培養(yǎng),進(jìn)一步觀察Et-DHA處理后T細(xì)胞的增殖對HepG2細(xì)胞活性的影響,并檢測了顆粒酶(granzyme)B的水平。結(jié)果:Et-DHA顯著抑制HepG2細(xì)胞的生長(P<0.05),這種抑制作用具濃度效應(yīng)和時(shí)程效應(yīng);Et-DHA處理后HepG2細(xì)胞的ROS釋放量增加,但總SOD活性無明顯變化,caspase-9活性顯著上升(P<0.05);線粒體上的促凋亡蛋白Bax、Bak和Bid水平增加,而抑凋亡蛋白Bcl-2以及線粒體中Cyt C和Smac的水平降低,胞質(zhì)中的Cyt C、Smac、cleaved caspase-8、cleaved caspase-9、cleaved caspase-3以及cleaved Bid水平呈劑量性升高。另外T細(xì)胞和HepG2細(xì)胞共培養(yǎng)組在Et-DHA的誘導(dǎo)下,HepG2細(xì)胞的凋亡程度與Et-DHA單獨(dú)作用時(shí)相比進(jìn)一步增加。在Et-DHA刺激下,T細(xì)胞內(nèi)granzyme B上調(diào),釋放到HepG2細(xì)胞內(nèi)的granzyme B明顯增多。結(jié)論:Et-DHA可能主要通過線粒體內(nèi)源性途徑以及caspase-8途徑,激活caspase-3,誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞凋亡,以及通過間接活化T細(xì)胞,促使 granzyme B增多,從而增強(qiáng)對HepG2細(xì)胞的毒性作用。

        二十二碳六烯酸;HepG2細(xì)胞;半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶9;顆粒酶B;細(xì)胞色素C;Smac蛋白

        二十二碳六烯酸(docosahexaenoic acid,DHA,22:6 n-3)是一種n-3多不飽和脂肪酸(polyunsaturated fatty acids,PUFAs),在海洋動(dòng)物體內(nèi)含量豐富。近年來作為一種保健食品,具有較好的預(yù)防和治療癌癥、降低腫瘤的發(fā)生及抗炎等功效,備受廣泛關(guān)注[1]。n-3多不飽和脂肪酸[二十碳五烯酸(eicosapentaenoic acid,EPA)和DHA]可通過調(diào)節(jié)肺癌、結(jié)腸癌、乳腺癌等腫瘤細(xì)胞的凋亡蛋白如Bax的活性和表達(dá),誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡,對腫瘤細(xì)胞的異常增殖具有一定的抑制作用[2-6]。n-3多不飽和脂肪酸還可提高腫瘤化療藥物的療效。離體實(shí)驗(yàn)表明,EPA和DHA可提高許多常用抑癌藥物(阿霉素、三氧化二砷、絲裂霉素、紫杉醇、表阿霉素、5-氟尿嘧啶和阿糖胞苷)對結(jié)腸癌、神經(jīng)母細(xì)胞瘤、乳腺癌、膀胱癌和膠質(zhì)母細(xì)胞瘤等細(xì)胞株的抑制作用[2,7-9]。在體實(shí)驗(yàn)表明,飼料中添加DHA并聯(lián)合應(yīng)用5-氟尿嘧啶可減少荷瘤動(dòng)物腫瘤塊的大?。?0]。臨床實(shí)驗(yàn)表明,EPA和DHA可增加結(jié)腸癌對依立替康的敏感性[1],給非小細(xì)胞肺癌患者每天添加2.5 g EPA和DHA,化療效果可提高約2倍,平均延長3周的化療時(shí)程,從而增加患者的存活率[11]。

        人類肝細(xì)胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)是最常見的五大癌癥之一,目前對于肝癌還沒有有效的二級預(yù)防或系統(tǒng)性治療,肝癌患者的整體存活率較低。相對于DHA對其它惡性腫瘤抑制作用的報(bào)道,目前DHA對原發(fā)性肝癌作用的報(bào)道較少[2-3]。一項(xiàng)超過9萬多人的統(tǒng)計(jì)表明多食魚類和含量高的n-3 PUFAs的食物可以顯著降低肝癌的發(fā)生率[1]。有研究揭示不飽和脂肪酸可調(diào)節(jié)肝細(xì)胞(HepG2細(xì)胞)纖溶酶原激活劑抑制物1的基因轉(zhuǎn)錄。雖然已有實(shí)驗(yàn)證據(jù)表明n-3 PUFA可預(yù)防癌變,DHA可通過影響轉(zhuǎn)錄因子和基因表達(dá)、增強(qiáng)脂質(zhì)過氧化作用、抑制類花生酸的生物合成等方面誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡[1,12],但是對n-3 PUFAs的抑癌分子機(jī)制仍然沒有完全闡明,特別是關(guān)于DHA對人肝癌HepG2細(xì)胞抑制作用的分子機(jī)制仍不十分清楚。本研究觀察二十二碳六烯酸乙酯(ethyl DHA,Et-DHA)對HepG2細(xì)胞增殖和凋亡的影響,并探討Et-DHA對T細(xì)胞和HepG2細(xì)胞共培養(yǎng)的作用的分子機(jī)制,為肝癌病防治提供新的靶點(diǎn)和策略。

        材料和方法

        1 材料

        1.1 動(dòng)物 健康成年SPF清潔級BALB/c小鼠,18~22 g,8周齡,購自中山大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。所有實(shí)驗(yàn)操作以及動(dòng)物使用都嚴(yán)格遵守《關(guān)于善待實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的指導(dǎo)意見》(中國科技部2006)以及廣州大學(xué)及中山大學(xué)動(dòng)物倫理法規(guī)。

        1.2 材料 人肝癌HepG2細(xì)胞由南京大學(xué)劉暢教授惠贈(zèng);Et-DHA(22:6Δ4,7,10,13,16,19)購自東京化成工業(yè)株式會(huì)社(Tokyo),純度高于98%,-20℃保存;胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)和DMEM(Dulbecco’s modified Eagle medium)購自Gibco;總超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)活力測定試劑盒和活性氧簇(reactire oxygen species,ROS)檢測試劑盒購自南京建成生物工程研究所;caspase-9活性檢測試劑盒購自上海貝博;所有其它的試劑盒均購自Sigma。

        2 細(xì)胞培養(yǎng)和處理

        2.1 脾淋巴細(xì)胞的制備和培養(yǎng) 頸椎脫臼處死小鼠,75%乙醇浸泡2 min,無菌條件下切取小鼠脾臟。機(jī)械分離脾細(xì)胞,用200目濾網(wǎng)過濾,離心后用紅細(xì)胞裂解液去除紅細(xì)胞,再用 PBS清洗2次,4℃、3 000×g離心1×10 min,離心后加入培養(yǎng)液,制成細(xì)胞懸液,先用培養(yǎng)瓶培養(yǎng)12 h,然后吸取細(xì)胞懸液,純化T細(xì)胞,分到6孔板上,并調(diào)整細(xì)胞濃度為1×108/L。進(jìn)行藥物處理2 d后觀察并拍照。

        2.2 HepG2細(xì)胞培養(yǎng) 使用包含10%胎牛血清、1×105U/L青霉素和100 mg/L鏈霉素的DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng)HepG2細(xì)胞。將培養(yǎng)瓶置于培養(yǎng)條件5% CO2、37℃飽和濕度的培養(yǎng)箱,細(xì)胞貼壁生長。細(xì)胞分到培養(yǎng)皿時(shí)密度大約為 1×108/L。實(shí)驗(yàn)組在DMEM培養(yǎng)液內(nèi)加入Et-DHA(終濃度為0 μmol/L、10 μmol/L、30 μmol/L、100 μmol/L和300 μmol/L)培養(yǎng)24 h,對照組加等體積的DMEM。通過預(yù)實(shí)驗(yàn)確定本實(shí)驗(yàn)的Et-DHA濃度。每個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

        2.3 T細(xì)胞和HepG2細(xì)胞共培養(yǎng) 在已經(jīng)貼壁的HepG2細(xì)胞中按T細(xì)胞與刺激細(xì)胞10∶1的比例加入T細(xì)胞懸液培養(yǎng)24 h和48 h作為實(shí)驗(yàn)組,對照組加入相同體積的10 μmol/L Et-DHA。

        3 主要方法

        3.1 MTT比色法測定細(xì)胞活性 將HepG2細(xì)胞以1×108/L的密度接種于96孔板,培養(yǎng)24 h,向培養(yǎng)液中各加入不同濃度的Et-DHA(終濃度為0 μmol/L、10 μmol/L、30 μmol/L、100 μmol/L和300 μmol/L),培養(yǎng)24 h和48 h后,用MTT比色法測定細(xì)胞活性。

        按照1×108/L細(xì)胞接種密度對HepG2細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng),依據(jù)之前設(shè)計(jì)的試劑濃度加入Et-DHA連續(xù)培養(yǎng)48 h,獲得實(shí)驗(yàn)所需的細(xì)胞。用裂解液裂解HepG2細(xì)胞,按說明書內(nèi)的規(guī)定操作程序來測定SOD,采用酶標(biāo)儀(Spectra MAX 340)在波長為550 nm處檢測SOD吸收值。

        3.2 細(xì)胞形態(tài)分析 為了觀察HepG2細(xì)胞在凋亡過程中發(fā)生的形態(tài)變化,用 Hoechst 33258處理HepG2細(xì)胞。在室溫下將HepG2細(xì)胞用4%多聚甲醛固定20 min后,用0.02 mol/L PBS洗滌3次,避光條件下添加10 g/L Hoechst 33258染色10 min,在熒光顯微鏡下(Nikon)用×100和×200的放大倍數(shù)觀察細(xì)胞。在倒置相差顯微鏡(×100和×400)下觀察T細(xì)胞。

        3.3 ROS含量的測定 按照1×108/L細(xì)胞接種密度對HepG2細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng),依據(jù)之前設(shè)計(jì)的試劑濃度加入Et-DHA連續(xù)培養(yǎng)48 h,獲得實(shí)驗(yàn)所需的細(xì)胞。使用DCFH-DA熒光染色法測定細(xì)胞內(nèi)的活性氧簇的含量。DCFH-DA本身沒有熒光,可自由穿過細(xì)胞膜,進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)后,細(xì)胞內(nèi)的H2O2等小分子量的過氧化物,即在有ROS的情況下DCFH-DA能夠被氧化為生成熒光的二氯熒光素(dichlorofluorescein,DCF),其熒光強(qiáng)度與細(xì)胞內(nèi)的ROS的水平成正比。Et-DHA處理過的HepG2細(xì)胞用10 mmol/L的DCFH-DA孵育30 min,PBS清洗2遍,最后DCF的生成量通過酶標(biāo)儀讀數(shù)得到,其激發(fā)波長為500 nm,發(fā)射波長為530 nm。

        3.4 總SOD活性測定 按照1×108/L接種密度對HepG2細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng),依據(jù)之前設(shè)計(jì)的試劑濃度加入Et-DHA連續(xù)培養(yǎng)48 h,獲得實(shí)驗(yàn)所需的細(xì)胞。用裂解液裂解HepG2細(xì)胞。按說明書內(nèi)的規(guī)定操作程序來測定SOD,采用酶標(biāo)儀在波長為550 nm處來檢測SOD吸收值。重復(fù)3次,計(jì)算出平均值。總SOD活性(103U/L)=(對照管吸光度-測定管吸光度) ÷50% ×(反應(yīng)液總量÷所取樣品量)。

        3.5 Caspase-9活性的測定 以1×108/L細(xì)胞接種密度培養(yǎng)HepG2細(xì)胞,按照設(shè)計(jì)的濃度添加Et-DHA繼續(xù)培養(yǎng)48 h后收集細(xì)胞,用裂解液裂解HepG2細(xì)胞。用考馬氏亮藍(lán)法測定蛋白濃度,然后按試劑盒說明書操作測定caspase-9活性,使用酶標(biāo)儀在405 nm波長處測定caspase-9的吸收值。計(jì)算各Et-DHA實(shí)驗(yàn)組caspase-9與對照組細(xì)胞caspase-9的相對活性。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,取平均值。

        3.6 Western blotting檢測蛋白的表達(dá) 細(xì)胞接種于6孔板,進(jìn)行藥物處理,終止培養(yǎng)后細(xì)胞溶解于lysis buffer[10 mmol/L HEPES(pH 7.9),1.5 mmol/L MgCl2,10 mmol/L KCl,和0.5%NP-40]中,而后收集細(xì)胞至離心管中13 200 r/min離心10 min。選用Folin-酚法測定蛋白酶濃度,以每泳道40 μg蛋白等量上樣,聚丙烯酰胺凝膠電泳,電泳后將蛋白轉(zhuǎn)膜至硝酸纖維膜上。用5%脫脂牛奶封閉1 h,Ⅰ抗(1∶1 000)孵育;Ⅱ抗使用羊抗兔IgG(1∶5 000)孵育后,進(jìn)行ECL檢測顯影、定影、洗印膠片。Caspase-3 antibody(rabbit,1∶1 000)、caspase-9 antibody(human specific,1∶1 000)、caspase-8 (1C12) antibody (mouse,1∶1 000)、Smac/Diablo antibody(mouse,1∶1 000)、Bid antibody(human specific,1∶1 000)、Bcl-2 antibody(rabbit,1 ∶1 000)、Bax antibody(rabbit,1∶1 000)、細(xì)胞色素C(cytochrome C,Cyt C)antibody(rabbit;1∶1 000)、Bak antibody(rabbit,1∶1 000)和顆粒酶(granzyme)B antibody(rabbit,1∶1 000)均購自 Cell Signaling Technologies,其它抗體購自Santa Cruz Biotechnology。電泳條帶的強(qiáng)度用 Lab-Works Image Analysis software進(jìn)行定量分析。

        3.7 線粒體和胞漿蛋白分離提取 根據(jù)線粒體分離試劑盒(Pierce)使用說明手冊操作。細(xì)胞接種于6孔板,DHA處理,終止培養(yǎng)后收集細(xì)胞至1.5 mL離心管中,在冰浴預(yù)冷的Mito-Cyto緩沖液中吹打重懸,移入Wheaten Dounce玻璃勻漿器冰浴中勻漿5 min。勻漿液于4℃、800×g離心10 min,取上清液進(jìn)一步于4℃、10 000×g離心30 min,收集上清液即得到的胞漿成分(不含細(xì)胞核和線粒體)。下面部分即為線粒體部分,用 Mito-Cyto緩沖液 (0.2 mL)重懸,600×g離心5 min,以去除一些顆粒物,再12 000×g離心15 min,懸浮在Mito-Cyto Buffer中的即為線粒體蛋白[13]。測定蛋白含量后進(jìn)行Western blotting分析。

        4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

        數(shù)據(jù)用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示。差異顯著性用單因素方差分析(ANOVA)與進(jìn)行多組樣本間差異顯著性分析或用Origin 7.0來進(jìn)行Fisher確切概率檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        結(jié)果

        1 Et-DHA對HepG2細(xì)胞數(shù)量的影響

        HepG2細(xì)胞(1.0×108/L)在 10 μmol/L、30 μmol/L、100 μmol/L和300 μmol/L的Et-DHA培養(yǎng)液中培養(yǎng)24 h后,隨著Et-DHA濃度上升,HepG2細(xì)胞的密度和數(shù)量顯著下降,與對照組相比分別為98%、90%、80%和70%,見圖1。

        Figure 1. EffectofEt-DHA on numberofHepG2 cells (×100).A:control group;B:10 μmol/L Et-DHA;C:30 μmol/L Et-DHA;D:100 μmol/L Et-DHA;E:300 μmol/L Et-DHA.圖1 不同濃度Et-DHA處理對HepG2細(xì)胞數(shù)量的影響

        2 Et-DHA對HepG2細(xì)胞活性的抑制作用

        用MTT比色法檢測Et-DHA是否對HepG2細(xì)胞的活性具有抑制作用。Et-DHA作用24 h和48 h后,HepG2細(xì)胞的活性顯著降低。抑制作用隨著Et-DHA濃度(10、30、100和300 μmol/L)的增加以及時(shí)間的延長而增強(qiáng),與對照組(0 μmol/L Et-DHA)相比,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見圖2。

        Figure 2.MTT assay was performed at 24 h and 48 h after the cells were exposed to Et-DHA.*P<0.05 vs 0 μmol/L.圖2 不同濃度Et-DHA處理HepG2細(xì)胞24 h和48 h后的細(xì)胞生長抑制曲線

        3 Et-DHA對HepG2細(xì)胞核形態(tài)的影響

        如圖3所示,對照組細(xì)胞核發(fā)淡藍(lán)色,較大較圓,色澤均一,形態(tài)規(guī)則,表面光滑。100 μmol/L Et-DHA處理后,HepG2細(xì)胞核呈高染色密度,核濃縮,細(xì)胞膜出泡,核仁裂解,染色體在核膜周邊凝聚,凋亡小體形成,這些都呈現(xiàn)程序性細(xì)胞凋亡的特征。

        Figure 3.Effect of Et-DHA on the morphology of HepG2 cell nucleus(×400).A:control group cells were pale blue and round;B:after treated with 100 μmol/L Et-DHA,the HepG2 cells revealed a marked nuclear condensation,membrane blebbing,nuclear fragmentation and apoptotic bodies,all of which were the characteristics of apoptotic programmed cell death.圖3 Et-DHA對HepG2細(xì)胞核形態(tài)的影響

        4 Et-DHA誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞凋亡的機(jī)制

        4.1 Et-DHA對HepG2細(xì)胞內(nèi)ROS的影響 如圖4所示,與對照組比較,Et-DHA誘導(dǎo)HepG2的細(xì)胞ROS含量均明顯增加,且呈劑量-效應(yīng)關(guān)系。經(jīng)10、30、100和300 μmol/L Et-DHA處理后,DCF出現(xiàn)了近1.3、1.8、2.2和2.5倍的增加。研究表明ROS會(huì)導(dǎo)致線粒體膜通透性以及結(jié)構(gòu)的改變[14],因而上述結(jié)果提示Et-DHA導(dǎo)致HepG2細(xì)胞ROS的大量產(chǎn)生,可能是誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞凋亡的原因。

        Figure 4.Effect of Et-DHA on the level of ROS in HepG2 cells.*P<0.05 vs control group.圖4 Et-DHA對ROS量的影響

        4.2 Et-DHA對HepG2細(xì)胞總SOD活性的影響Et-DHA作用48 h對HepG2細(xì)胞的總SOD活性并無顯著影響,提示Et-DHA處理后HepG2細(xì)胞的抗氧化能力水平?jīng)]有顯著改變,見表1。

        表1 Et-DHA對HepG2細(xì)胞總SOD活性的影響Table 1.Effect of Et-DHA on total superoxide dismutase(SOD) activity in HepG2 cells(Mean±SD.n=3)

        4.3 Et-DHA對HepG2細(xì)胞Bax、Bak和Bid線粒體轉(zhuǎn)位、Bid活化及Bcl-2表達(dá)的影響 不同濃度的Et-DHA作用HepG2細(xì)胞48 h后,線粒體上的Bax、Bak和Bid的水平均顯著高于對照組(P<0.05);Bcl-2水平較對照組下調(diào)(P<0.05),表明Et-DHA誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞凋亡可能主要激活了線粒體凋亡通路。而細(xì)胞質(zhì)中cleaved Bid上調(diào),提示Et-DHA可能也激活了caspase-8凋亡途徑,從而活化Bid,見圖5。

        4.4 Et-DHA對HepG2細(xì)胞Cyt C和Smac釋放的影響 Et-DHA作用HepG2細(xì)胞48 h后,胞漿中Cyt C和Smac水平呈劑量依賴性增加,而線粒體內(nèi)Cyt C和Smac呈劑量依賴性降低,見圖6。

        Figure 5.Western blotting analysis of Bid activation,Bcl-2 expression,and Bax,Bak and Bid mitochondrial translocation during Et-DHA-induced apoptosis in HepG2 cells.圖5 Et-DHA對Bid活化、Bcl-2表達(dá)及Bax、Bak和Bid線粒體轉(zhuǎn)位的影響

        Figure 6.Effects of Et-DHA on the release of Cyt C and Smac in HepG2 cells during apoptosis.圖6 Et-DHA對Cyt C和Smac釋放的影響

        4.5 Et-DHA對HepG2細(xì)胞caspase-8、caspase-9和caspase-3的影響 如圖7所示 10 μmol/L以及30 μmol/L Et-DHA處理HepG2細(xì)胞48 h后,caspase-8和caspase-9酶原被同性活化,被切割成有活性的cleaved caspase-8和 cleaved caspase-9,其中 cleavedcaspase-9水平顯著增加,并具劑量-效應(yīng)關(guān)系。我們繼而檢測了下游的效應(yīng)分子 caspase-3,結(jié)果表明caspase-3酶原也被劑量依賴性切割成 cleaved caspase-3。以上結(jié)果表明Et-DHA主要通過線粒體內(nèi)源途徑以及部分caspase-8外源途徑交互作用,激活caspase-3,誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞凋亡。

        Figure 7.Effects of Et-DHA on the activation of caspase-8,caspase-9 and caspase-3 in HepG2 cells.圖7 Et-DHA對caspase-8、caspase-9和caspase-3活化的影響

        4.6 Et-DHA對HepG2細(xì)胞caspase-9活性的影響

        Et-DHA作用HepG2細(xì)胞48 h后,HepG2細(xì)胞caspase-9活性增加,并呈劑量-效應(yīng)關(guān)系,與對照組相比,P<0.05,見圖8。此結(jié)果進(jìn)一步表明線粒體內(nèi)源途徑參與了Et-DHA誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞凋亡。

        Figure 8.Effect of Et-DHA on caspase-9 activity in HepG2 cells after 48 h of exposure.*P<0.05 vs control group.圖8 不同濃度 Et-DHA處理 HepG2細(xì)胞 48 h后對caspase-9活性的影響

        4.7 Et-DHA對T細(xì)胞殺傷HepG2細(xì)胞的影響 10 μmol/L Et-DHA促使 T細(xì)胞增殖約70% ~90% (P<0.05),見圖9A。當(dāng)10 μmol/L Et-DHA與T細(xì)胞共同培養(yǎng)24 h后,HepG2細(xì)胞比單獨(dú)使用Et-DHA時(shí)顯著減少,并且具有時(shí)程-效應(yīng)關(guān)系(P<0.05);當(dāng)培養(yǎng)48 h時(shí),在Et-DHA和T細(xì)胞的共同作用下,HepG2細(xì)胞數(shù)量比Et-DHA單獨(dú)作用時(shí)顯著減少,見圖9B。以上結(jié)果表明Et-DHA可能通過活化T細(xì)胞,促進(jìn)HepG2凋亡。

        4.8 Et-DHA對T細(xì)胞granzyme B蛋白表達(dá)的影響不同濃度的Et-DHA作用T細(xì)胞48 h后,granzyme B較對照組表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.05),見圖10A;在Et-DHA作用于HepG2細(xì)胞或T細(xì)胞和HepG2細(xì)胞共培養(yǎng)48 h后,移去T細(xì)胞,共培養(yǎng)組HepG2細(xì)胞內(nèi)granzyme B水平較空白對照組以及HepG2組上調(diào),granzyme B釋放到HepG2細(xì)胞內(nèi)較明顯,見圖10B。而空白對照組以及 Et-DHA組 HepG2內(nèi)granzyme B的水平很低(第1、2條帶),在與T細(xì)胞共培養(yǎng)后,HepG2內(nèi)granzyme B的水平顯著增加(第3條帶),而共培養(yǎng)體系中從HepG2細(xì)胞中洗脫的T細(xì)胞granzyme B較明顯(第4條帶)。以上結(jié)果表明Et-DHA可能通過誘導(dǎo)T細(xì)胞釋放granzyme B,殺傷HepG2細(xì)胞,從而間接誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞凋亡。

        討論

        在近來研究中,EPA和DHA因其具有的預(yù)防、抑癌能力及改善心血管功能等功效而倍獲關(guān)注[1,15]。目前國內(nèi)外已有許多關(guān)于EPA和DHA抗癌機(jī)制的研究,主要集中在以下幾方面:(1)改變腫瘤細(xì)胞膜的結(jié)構(gòu),(2)破壞機(jī)體脂肪酸的形成,(3)阻斷腫瘤細(xì)胞的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,(4)改變體內(nèi)的脂類代謝[16]。本研究旨在探究Et-DHA誘導(dǎo)的HepG2細(xì)胞凋亡是否依賴于脂質(zhì)過氧化物的過度積累觸發(fā)凋亡效應(yīng),以及Et-DHA激活T細(xì)胞后抑癌作用的分子機(jī)制。

        實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,Et-DHA作用于HepG2細(xì)胞24 h后,均可觀察到各濃度實(shí)驗(yàn)組的HepG2細(xì)胞的密度呈劑量依賴性下降,非貼壁的漂浮細(xì)胞增多。這與Araseki等[17]的研究顯示HepG2細(xì)胞經(jīng)油酸、花生四烯酸和DHA聯(lián)合處理后,HepG2細(xì)胞存活率呈濃度依賴性下降的結(jié)果較一致。MTT檢測結(jié)果顯示,Et-DHA對HepG2細(xì)胞的存活率有顯著抑制作用,隨著Et-DHA的濃度和給藥持續(xù)時(shí)間的增加,抑制率顯著增強(qiáng)。在Hochest 33258熒光染色實(shí)驗(yàn)中,Et-DHA各濃度組細(xì)胞核呈高染色密度,染色體呈強(qiáng)藍(lán)色熒光,核仁裂解,染色體在核膜周邊凝聚,碎裂等在細(xì)胞程序性凋亡過程中的特征,而對照組細(xì)胞不呈現(xiàn)以上特征,暗示Et-DHA可能通過脂質(zhì)過氧化等途徑誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞凋亡[14,16]。

        Figure 9.Effect of Et-DHA on HepG2 cells during co-cultured with T cells(×100).A:T cells treated with Et-DHA;B:HepG2 cells treated with Et-DHA and co-cultured with T cells.圖9 HepG2細(xì)胞與T細(xì)胞共培養(yǎng)24 h和48 h后,Et-DHA對HepG2細(xì)胞的影響

        DHA作為一種長鏈多不飽和脂肪酸,富集于細(xì)胞膜上,化學(xué)性質(zhì)不穩(wěn)定,容易受到其他離子的攻擊,發(fā)生脂質(zhì)過氧化反應(yīng)。DHA可通過氧化應(yīng)激,增強(qiáng)細(xì)胞膜的脂質(zhì)過氧化作用、抑制類花生酸的生物合成等方面誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡[1,14]。盡管本實(shí)驗(yàn)檢測Et-DHA處理HepG2細(xì)胞后,各濃度組總SOD活力并無明顯變化,HepG2腫瘤細(xì)胞的抗氧化水平即清除ROS水平?jīng)]有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義上的改變,但檢測出ROS呈劑量性顯著升高,提示這可能與Et-DHA處理HepG2細(xì)胞后,膜上含有大量的易被氧化的DHA,氧化應(yīng)激引起脂質(zhì)過氧化作用增強(qiáng)有關(guān),與DHA通過影響ROS代謝從而調(diào)節(jié)結(jié)腸癌細(xì)胞生長和死亡機(jī)理類似[5],也與乳腺癌病人每天補(bǔ)充DHA血液循環(huán)磷脂增加后,其化療效果明顯改善的機(jī)制類似[12]。而過量累積的ROS會(huì)導(dǎo)致線粒體DNA損傷、以及線粒體膜通透性以及結(jié)構(gòu)的改變,繼而引發(fā)凋亡效應(yīng)[14]。結(jié)果與直接暴露HepG2細(xì)胞于2 mmol/L過氧化氫,產(chǎn)生氧化應(yīng)激能誘導(dǎo) HepG2肝癌細(xì)胞發(fā)生凋亡的機(jī)制類似[17]

        細(xì)胞接受凋亡信號(hào)(ROS、不可修復(fù)DNA損傷等)后,胞內(nèi)凋亡信號(hào)“感受器”(Bid、Bad等)被活化的caspase-8切割后,也被活化,從而對Bcl-2家族包括凋亡抑制因子(Bcl-2、Bcl-xL)等起拮抗作用。從而使處于抑制狀態(tài)的凋亡促進(jìn)因子(Bax、Bak等)釋放出來,從細(xì)胞質(zhì)中轉(zhuǎn)移到線粒體外膜上,并發(fā)生寡聚化,并與膜上電壓依賴性陰離子通道相互作用,改變膜的通透性,使線粒體內(nèi)的凋亡因子 Cyt C和Smac等釋放到細(xì)胞質(zhì)中,引發(fā)細(xì)胞凋亡[18]。本研究通過Western blotting測定Et-DHA處理HepG2細(xì)胞后,線粒體上的Bax、Bak以及Bid水平上調(diào),胞漿中的Bid被切割,Bcl-2表達(dá)下調(diào),而Bax/Bcl-2比值的改變可影響細(xì)胞對誘發(fā)凋亡的敏感性,揭示Et-DHA可能通過激活線粒體途徑,誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞凋亡。我們進(jìn)一步檢測到胞漿中的Cyt C和Smac水平升高,而線粒體中的 Cyt C和 Smac水平下降,提示HepG2細(xì)胞接收凋亡信號(hào)后,在Bax和Bak等凋亡因子的作用下,通透性增加,Cyt C和Smac從線粒體中釋放到細(xì)胞質(zhì)中,從而激活下游的 caspase-9及caspase-8家族等凋亡因子。本結(jié)果與DHA通過選擇性調(diào)節(jié)凋亡蛋白和通路,誘導(dǎo)結(jié)腸癌細(xì)胞生長和死亡的機(jī)制類似[5]。

        Figure 10.Western blotting analysis of granzyme B secreted by T cells(TC)and penetrated into HepG2 cells during co-culture and Et-DHA(DHA)treatment for 24 h.A:effect of DHA on granzyme B protein expression in TC;B:granzyme B protein in HepG2 cells without treatment(HepG2),DHA-treatedHepG2 cells (DHA+HepG2),DHA-treated HepG2 cells co-cultured with TC(TC were removed;DHA+HepG2/ TC),and TC washed from DHA-treated HepG2 cell co-culture(DHA+TC).圖10 Et-DHA對T細(xì)胞和HepG2細(xì)胞共培養(yǎng)體系中g(shù)ranzyme B表達(dá)的影響

        Caspases家族是驅(qū)動(dòng)凋亡的分子開關(guān),起始caspase以及效應(yīng)caspase具有同性活化和異性活化的特征。被活化的 caspase-9和caspase-8則接著激活位于級聯(lián)反應(yīng)下游的效應(yīng)caspase-3,使級聯(lián)反應(yīng)快速地?cái)U(kuò)大。而caspase-9是線粒體的凋亡程序中不可或缺的起始因子,本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,HepG2細(xì)胞經(jīng)Et-DHA處理后,caspase-9和 caspase-3被切割成cleaved caspase-9和cleaved caspase-3,caspase-9的活性大大提高,且與其濃度呈正相關(guān),提示caspase-9是Et-DHA抑制HepG2細(xì)胞生長的重要參與者。凋亡程序的開始信號(hào)到達(dá)線粒體以后,誘導(dǎo)線粒體排放出Cyt C,之后Cyt C與凋亡蛋白酶活化因子1反應(yīng),并使其空間結(jié)構(gòu)改變成為八聚體,后者和caspase-9反應(yīng)并導(dǎo)致它開始活化自身,進(jìn)而切割下游的caspase-3?;罨男?yīng) cleaved caspase-3可活化caspase激活的脫氧核糖核酸酶,切割DNA成200 bp的DNA片段,誘發(fā)HepG2細(xì)胞凋亡。根據(jù)以上結(jié)果推測,Et-DHA處理后HepG2細(xì)胞的凋亡方式,與白細(xì)胞介素4誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞凋亡類似,主要與線粒體凋亡途徑相關(guān)[13]。

        此外,我們的結(jié)果還顯示細(xì)胞質(zhì)中caspase-8和Bid也微弱地被切割,并且Smac的水平升高。以上結(jié)果提示,Et-DHA抑制HepG2細(xì)胞生長,也可能部分通過激活caspase-8內(nèi)源凋亡途徑。這與EPA通過ROS堆積、caspase-8活化以及自噬誘導(dǎo)胰腺癌凋亡的機(jī)制類似[13]。

        先前的研究表明自然殺傷細(xì)胞對不同肝癌細(xì)胞株(K562、BEL-7402、SMMC-7721和HepG2)具有一定的殺傷作用[19],那么Et-DHA在機(jī)體內(nèi)是否可通過活化T淋巴細(xì)胞perforin-granzyme B途徑來誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞凋亡呢?為了驗(yàn)證以上設(shè)想,我們采用淋巴細(xì)胞和HepG2共培養(yǎng)體系,模擬了機(jī)體內(nèi)細(xì)胞生存環(huán)境,觀察Et-DHA是否間接通過激活T細(xì)胞,從而增加 T細(xì)胞殺傷 HepG2效應(yīng)。結(jié)果表明Et-DHA誘導(dǎo)T細(xì)胞增殖,當(dāng)共培養(yǎng)時(shí),與Et-DHA單獨(dú)處理HepG2細(xì)胞相比,其凋亡率更顯著。以上結(jié)果暗示Et-DHA通過活化T淋巴細(xì)胞,促使增殖,并釋放細(xì)胞因子,對HepG2細(xì)胞的毒性增強(qiáng),從而間接抑制HepG2細(xì)胞的生長[20]。

        當(dāng)激活的細(xì)胞毒性T細(xì)胞與靶細(xì)胞結(jié)合后,經(jīng)顆粒胞吐方式,效應(yīng)細(xì)胞釋放致密的胞質(zhì)顆粒及其內(nèi)容物到達(dá)靶細(xì)胞和效應(yīng)細(xì)胞的結(jié)合位點(diǎn)處,對靶細(xì)胞進(jìn)行致死性的攻擊。在脫顆粒過程中釋放許多大分子物質(zhì),其中最主要的為granzyme B,檢測T細(xì)胞granzyme B分子的表達(dá)可以直接反映T細(xì)胞的殺傷力[21]。本研究發(fā)現(xiàn),DHA作用后,T細(xì)胞內(nèi)以及HepG2細(xì)胞內(nèi)granzyme B均較對照組明顯升高(P<0.05),表明DHA通過活化T細(xì)胞,上調(diào)granzyme B的表達(dá),從而在機(jī)體內(nèi)間接增強(qiáng)誘導(dǎo)HepG2凋亡。而在T細(xì)胞的增殖活化過程中,ERK1/2信號(hào)通路扮演著重要角色。DHA是否通過抑制ERK1/2信號(hào)通路,有待進(jìn)一步研究。

        總之,在Et-DHA誘導(dǎo)人肝癌HepG2細(xì)胞凋亡的過程中,caspase-9以及granzyme B扮演了重要角色。本研究的結(jié)果將為臨床上利用n-3多不飽和脂肪酸預(yù)防及輔助治療人類肝癌提供一定依據(jù),無論單獨(dú)使用或是結(jié)合化療藥物聯(lián)合輔助使用都可能是一種高效、對正常細(xì)胞無毒性、安全的肝癌病人的生物預(yù)防和治療策略。

        [1]Vaughan VC,Hassing MR,Lewandowski PA.Marine polyunsaturated fatty acids and cancer therapy[J].Br.J.Cancer,2013,108(3):486-492.

        [2]Araseki M,Kobayashi H,Hosokawa M,et al.Lipid peroxidation of a human hepatoma cell line(HepG2)after incorporation of linoleic acid,arachidonic acid,and docosahexaenoic acid[J].Biosci Biotechnol Biochem,2005,69 (3):483-490.

        [3]Sun SN,Jia WD,Chen H,et al.Docosahexaenoic acid (DHA)induces apoptosis in human hepatocellular carcinoma cells[J].Int J Clin Exp Pathol,2013,6(2):281-289.

        [4]Sato SB,Park J,Kawamoto J,et al.Inhibition of constitutive Akt(PKB)phosphorylation by docosahexaenoic acid in the human breast cancer cell line MDA-MB-453[J].Biochim Biophys Acta,2013,1831(2):306-313.

        [5]Skender B,Vaculova AH,Hofmanova J.Docosahexaenoic fatty acid(DHA)in the regulation of colon cell growth and cell death:a review[J].Biomed Pap Med Fac Univ Palacky Olomouc Czech Repub,2012,156(3):186-199.

        [6]Yao QH,Zhang XC,F(xiàn)u T,et al.ω-3 polyunsaturated fatty acids inhibit the proliferation of the lung adenocarcinoma cell line A549 in vitro[J].Mol Med Rep,2014,9(2): 401-406.

        [7]Rudra PK,Krokan HE.Cell-specific enhancement of doxorubicintoxicity in human tumour cells by docosahexaenoic acid[J].Anticancer Res,2001,21(1A):29-38.

        [8]Coleman WB.Mechanisms of human hepatocarcinogenesis[J].Curr Mol Med,2003,3(6):573-588.

        [9]Sawada N,Inoue M,Iwasaki M,et al.Consumption of n-3 fatty acids and fish reduces risk of hepatocellular carcinoma[J].Gastroenterology,2012,142(7):1468-1475.

        [10]Chua ME,Sio MC,Sorongon MC,et al.Relationship of dietary intake of omega-3 and omega-6 fatty acids with risk of prostate cancer development:a meta-analysis of prospective studies and review of literature[J].Prostate Cancer,2012,2012:826254.

        [11]Murphy RA,Mourtzakis M,Chu QS,et al.Supplementation with fish oil increases first-line chemotherapy efficacy in patients with advanced nonsmall cell lung cancer[J].Cancer,2011,117(18):3774-3780.

        [12]Bougnoux P,Hajjaji N,F(xiàn)errasson MN,et al.Improving outcome of chemotherapy of metastatic breast cancer by docosahexaenoic acid:a phase II trial[J].Br J Cancer,2009,101(12):1978-1985.

        [13]Aoudjehane L,Podevin P,Scatton O,et al.Interleukin-4 induces human hepatocyte apoptosis through a Fas-independent pathway[J].FASEB J,2007,21(7):1433-1444.

        [14]Fukui M,Kang KS,Okada K,et al.EPA,an omega-3 fatty acid,induces apoptosis in human pancreatic cancer cells:role of ROS accumulation,caspase-8 activation,and autophagy induction[J].J Cell Biochem,2013,114 (1):192-203.

        [15]賀艷麗,葉 平,周 新.不飽和脂肪酸影響HepG-2細(xì)胞PAI-1表達(dá)的機(jī)制初探[J].中國病理生理雜志,2005,21(3):436-440.

        [16]Di Nunzio M,Valli V,Bordoni A.Pro-and anti-oxidant effects of polyunsaturated fatty acid supplementation in HepG2 cells[J].Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids,2011,85(3-4):121-127.

        [17]國 平,吳靈飛,蒲澤錦.氧化應(yīng)激誘導(dǎo)HepG2肝癌細(xì)胞凋亡的研究[J].中國病理生理雜志,2008,24(1): 105-111.

        [18]Lim K,Han C,Dai Y,et al.Omega-3 polyunsaturated fatty acids inhibit heptocellular carcinoma cell growth through blocking β-catenin and cyclooxygenase-2[J].Mol Cancer Ther,2009,8(11):3046-3055.

        [19]黎建軍,陳詩萍,古模發(fā).NK細(xì)胞對不同人肝癌細(xì)胞株的殺傷作用[J].中國病理生理雜志,2012,28(4): 638-642.

        [20]Calder PC.Immunomodulation by omega-3 fatty acids[J].Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids,2007,77(5-6):327-335.

        [21]Fritsch K,F(xiàn)inke J,Grüllich C.Suppression of granzyme B activity and caspase-3 activation in leukaemia cells constitutively expressing the protease inhibitor 9[J].Ann Hematol,2013,92(12):1603-1609.

        Et-DHA induces apoptosis of HepG2 cells through activation of mitochondrial pathway and induction of granzyme B expression in T cells

        CHEN Kun1,CHEN Yong-shun1,WANG Xue-jun1,CHEN Yun-fan1,LIU Ke-li1,CHEN Feng-jia2,LU Jian-jun2

        (1Institute of Gene Interference,Guangzhou University,Guangzhou 510006,China;2Department of Thoracic Surgery,the First Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University,Guangzhou 510080,China.E-mail:kchennju@hotmail.com)

        AIM:To investigate the effect of ethyl docosahexaenoate(Et-DHA)on the apoptosis of human hepatocarcinoma HepG2 cells.METHODS:HepG2 cells were used to test the anticarcinogenicity of Et-DHA.The direct inhibition of HepG2 cells by Et-DHA was detected by MTT.Nuclear morphological features of the HepG2 cells were observed under fluorescence microscope after staining with Hochest 33258.The levels of Bax,Bak,Bid,Bcl-2,Smac and cytochrome C(Cyt C)in mitochondria and cytosol,the cleaved caspase-8,cleaved caspase-9,and cleaved caspase-3 in cytosol,as well as the release of reactive oxygen species(ROS),total superoxide dismutase(SOD)and caspase-9 activity in the Et-DHA-treated HepG2 cells were determined by Western blotting and ELISA.Furthermore,by co-culturing the HepG2 cells with T cells,the effects of proliferation of Et-DHA-treated T cells on the activity of HepG2 cells were observed,and the level of granzyme B was detected.RESULTS:Et-DHA significantly inhibited the growth of HepG2 cells ina concentration-and time-dependent manner.The ROS release and caspase-9 activity increased markedly in Et-DHA-treated HepG2 cells,and no significant change of the total SOD activity was observed.The levels of the pro-apoptotic proteins Bax,Bak and Bid in mitochondria increased,the anti-apoptotic protein Bcl-2 as well as mitochondrial Cyt C and Smac levels decreased,and the cytoplasmic Cyt C,Smac,cleaved caspase-8,cleaved caspase-9,cleaved caspase-3 and cleaved Bid levels showed dose-dependent increases.Additionally,the degree of Et-DHA-induced apoptosis in HepG2 cells in the co-culture group(T cells+HepG2 cells)showed a further increase as compared with the HepG2 cells treated with Et-DHA alone.Due to Et-DHA inducing elevation of granzyme B level in the T cells,the granzyme B released into HepG2 cells was significantly increased.CONCLUSION:Et-DHA might induce the apoptosis of HepG2 cells through activation of caspase-3 mainly via a mitochondrial intrinsic pathway and a caspase-8 pathway,and promote the increase in granzyme B indirectly by activating T cells,thus enhancing the cytotoxic effect on HepG2 cells.

        Docosahexaenoic acids;HepG2 cells;Caspase-9;Granzyme B;Cytochrome C;Smac protein

        R363

        A

        10.3969/j.issn.1000-4718.2014.03.001

        1000-4718(2014)03-0385-09

        2013-11-15

        2014-01-20

        國家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(No.31171281);廣州市教育局科技計(jì)劃項(xiàng)目(No.10A044)

        △通訊作者Tel:020-87755766;E-mail:kchennju@hotmail.com

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