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        高效液相色譜法測(cè)定槐米中槲皮素的含量

        2014-05-05 00:44:32趙虎平
        中國(guó)醫(yī)藥指南 2014年18期
        關(guān)鍵詞:槐米量瓶蘆丁

        趙虎平

        (包頭醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院藥劑科,內(nèi)蒙古 包頭 014010)

        高效液相色譜法測(cè)定槐米中槲皮素的含量

        趙虎平

        (包頭醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院藥劑科,內(nèi)蒙古 包頭 014010)

        目的 建立槐米中槲皮素的含量測(cè)定方法。方法 利用甲醇-0.4%磷酸溶液(60∶40,v/v)檢測(cè)波長(zhǎng)375 nm,其中甲醇為色譜純,磷酸為分析純,流速為0.8 mL/min。色譜柱:Diamonsil(TM)C18(416 mm×250 mm,5 μm)。結(jié)果 槲皮素在1.964~19.64 mg/mL的濃度范圍內(nèi)峰面積和濃度呈良好的線性關(guān)系r=0.9994;測(cè)得回收率為98.6%,RSD為1.8%。結(jié)論 方法準(zhǔn)確可靠、簡(jiǎn)便,適用于槐米中槲皮素的含量測(cè)定。

        槐米;槲皮素;高效液相色譜法;含量測(cè)定

        槐米是豆科植物槐(Sophora japonicaL)的干燥花蕾或花,具有清肝瀉火的功能[1]。其主要成分為黃酮類(lèi),與槐花的藥理作用密切相關(guān)。因此,槐花的質(zhì)量主要由黃酮類(lèi)的含量決定。黃酮類(lèi)中的黃酮苷主要包括蘆丁及槲皮素等。槲皮素(Quercetin)是黃酮醇的一種代表性化合物,具有很高的藥用價(jià)值,能夠抗氧化、清除氧自由基、降低血壓、保護(hù)心肌缺血再灌注損傷等[2]??蓳?jù)此利用槲皮素制作中藥制劑,并進(jìn)行提取。本研究采用加熱回流法,對(duì)槲皮素進(jìn)行提取,并建立針對(duì)其的HPLC測(cè)定方法。

        1 儀器與試劑

        1.1 儀器

        高效液相色譜儀(日本島津,LC-10Tvp);紫外-可見(jiàn)檢測(cè)器(SPD-10Avp);雙通道色譜工作站N-2000(浙江大學(xué)智能信息工程研究所,浙江大學(xué)智能信息工程有限公司);BS110S電子天平(北京塞多利斯天平有限公司Max為110 g,d=0.1 mg);KQ-50型超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);0.45 μm微孔濾膜;水浴回流裝置;容量瓶等。

        1.2 試劑

        槐米,槲皮素標(biāo)準(zhǔn)品;甲醇(色譜純),甲醇(分析純);水為重蒸餾水;磷酸為分析純,25%鹽酸。

        2 方 法

        2.1 色譜條件

        色譜柱:Diamonsil(TM)C18(416 mm×250 mm,5 μm);流動(dòng)相:甲醇-0.4%磷酸溶液(60∶40,v/v);檢測(cè)波長(zhǎng):375 nm;流速:0.8 mL/min。

        2.2 對(duì)照品溶液的制備

        精密稱(chēng)取槲皮素對(duì)照品0.001 g,于100 mL量瓶中加適量甲醇溶解、定容配成10 μg/mL的溶液100 mL,備用。

        2.3 供試品溶液的制備

        取槐米適量,用研缽研磨,過(guò)100目篩得本品粉末。取本品粉末0.12 g,加甲醇-25%鹽酸(4∶1)混合溶液水浴回流30 min,放冷,置于50 mL的量瓶中,加甲醇使其稀釋至刻度,搖勻即可。

        2.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作

        取槲皮素對(duì)照品5 mL置50 mL量瓶中,加甲醇(色譜純),超聲處理20 min后過(guò)濾,加甲醇(色譜純)定容到刻度,備用。精密量取上述對(duì)照品溶液0.20、0.25、1.20、2.00 mL,分別置4個(gè)10mL量瓶中,加甲醇(色譜純)稀釋至刻度,搖勻。分別量取20 μL注入色譜儀,記錄色譜圖。以濃度(C μg/mL)為橫坐標(biāo)、峰面積為縱坐標(biāo)進(jìn)行線形回歸,得回歸方程:Y=107.02X+7616.8。相關(guān)系數(shù)r=0.9994。表明:在1.964~19.64 mg/mL的濃度范圍內(nèi),槲皮素的峰面積和濃度呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系。

        2.5 精密度試驗(yàn)

        取對(duì)照品溶液1 mL于10 mL量瓶中,用甲醇(色譜純)稀釋至刻度,超聲處理后20 μL進(jìn)樣,重復(fù)5次,記錄峰面積,計(jì)算主峰面積的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差,其中五次的值分別為134076.031,133516.383,129512.398,137479.516,143425.297,RSD為0.69%。

        2.6 重現(xiàn)性試驗(yàn)

        取樣品粉末0.12 g,進(jìn)行精密稱(chēng)定后,按上述制備方法和測(cè)定條件,重復(fù)測(cè)定5份。記錄峰面積分別為35141.293,32630.783,34890.906,32856.066,36646.836,RSD為0.26%。

        2.7 回收率試驗(yàn)

        取樣品粉末0.12 g,進(jìn)行精密稱(chēng)定后,按上述供試品溶液的制備方法和測(cè)定條件,重復(fù)測(cè)定6份。測(cè)定結(jié)果如表1。測(cè)得回收率為98.6%,RSD為1.8%。

        3 結(jié)果與討論

        3.1 結(jié)果

        取適量槐米,研磨,過(guò)100目篩,約0.12 mg粉末,精密稱(chēng)定后加甲醇-25%鹽酸(4∶1)混合溶液25 mL,水浴回流30 min以使其冷卻,置50 mL量瓶中精密吸取1 mL置25 mL量瓶中,加甲醇,超聲處理20 min使完全溶解并稀釋至刻度,搖勻,濾過(guò),精密量取20 μL,注入液相色譜儀,記錄色譜圖,測(cè)得4批(n=3)樣品中槲皮素的含量分別為:12.46%(RSD=0.75%);9.78%(RSD=1.0%);9.43%(RSD=0.64%);11.09%(RSD=0.38%)。

        3.2 討論

        3.2.1 檢測(cè)波長(zhǎng)的選擇

        取適量的槲皮素對(duì)照品,以甲醇為溶劑,在紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)上,于200~600 nm掃描。結(jié)果顯示,槲皮素在264 nm、375 nm波長(zhǎng)處,吸收量最大。在同一條件下經(jīng)高效液相色譜儀測(cè)定,槲皮素的峰面積在375 nm處較264 nm波長(zhǎng)處大,因此,選擇375 nm作為槲皮素的檢測(cè)波長(zhǎng)。

        3.2.2 流動(dòng)相的選擇

        調(diào)整流動(dòng)相甲醇-0.4%磷酸溶液的比例(50∶50,55∶45,60∶40,70∶30)20 μL進(jìn)樣,記錄色譜圖如圖1。確定二者比例在60∶40時(shí)分離效果最好,而且靈敏度較高。

        圖1 對(duì)照品(甲醇-0.4%磷酸溶液=60∶40,v/v)時(shí)的色譜圖

        3.2.3 溶液水解條件的選擇

        鹽酸水解蘆丁為槲皮素,而槲皮素易溶于甲醇,因此,蘆丁的水解和槲皮素的提取受到不同比例、體積的甲醇-25%鹽酸混合溶液的影響[3]。在本研究中,研究者對(duì)水解時(shí)混合溶液的比例和體積進(jìn)行了選擇,水浴回流30 min,放冷,置50 mL量瓶中精密吸取1 mL置25 mL量瓶中,加甲醇進(jìn)行超聲處理,使其完全溶解并稀釋至刻度,搖勻、濾過(guò)后,精密量取20 μL,注入液相色譜儀,記錄色譜圖,結(jié)果表明在甲醇-25%鹽酸總體積為25 mL比例為4∶1時(shí),水解條件最佳結(jié)果為甲醇-25%鹽酸總體積為25 mL比例為4∶1[4]。取蘆丁對(duì)照品同法水解,經(jīng)過(guò)薄層色譜法和高效液相色譜法的測(cè)定,如圖2所示,蘆丁已完全水解為槲皮素。

        圖2 供試品(甲醇-25%鹽酸總體積為25 mL比例為4∶1)色譜圖

        [1] 李力更,李作平,霍長(zhǎng)虹.固相萃取-分光光度法聯(lián)用測(cè)定中藥槐米中蘆丁含量的研究[J].中成藥,2003,25(8):673-674.

        [2] 李云峰.槲皮素代謝的研究進(jìn)展[M].生理科學(xué)進(jìn)展,2002,33(1): 53-55.

        [3] Hosseini MS,Belador F.Cr (III)/Cr (VI) speciation determination of chromium in water samples by luminescence quenching of quercetin[J].J Hazard Materials,2009,165(1):1062-1067.

        [4] Olszewska M.Separation of quercetin,sexangularetin,kaempferol and isorhamnetin for simultaneous HPLC determination of flavonoid aglycones in inflorescences,leaves and fruits of three Sorbus species[J].J Pharm and Biomed Anal,2008,48(3): 629-635.

        R446;R9

        B

        1671-8194(2014)18-0094-02

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