吳錦程等
摘 要 以果型和品質差異較大的黃肉枇杷(Eriobotrya japonica Lindl.)‘解放鐘和白肉枇杷‘白梨的果實為試材,測定果實發(fā)育過程中山梨醇、果糖、葡萄糖含量及與山梨醇代謝相關酶--山梨醇脫氫酶(Sorbitol dehydrogenase, SDH)和山梨醇氧化酶(Sorbitol oxidase, SOX)活性的變化,并探討山梨醇代謝與枇杷果實生長發(fā)育和品質形成的關系。結果表明:2個枇杷品種果實中山梨醇含量均隨果實發(fā)育進程呈下降趨勢,且‘白梨枇杷果實中山梨醇含量高于‘解放鐘。在花后35~80 d,2個枇杷品種幼果中葡萄糖和果糖含量均較低且相對穩(wěn)定,而花后95~140 d果實中葡萄糖和果糖含量逐漸上升,并在花后125~140 d果實成熟期急劇增加而達到峰值;果實中葡萄糖含量在2個品種間差異不顯著(p>0.05),花后125~140 d的果實成熟期,‘白梨果實中果糖含量顯著高于‘解放鐘(p<0.05)。果實發(fā)育過程中SDH和SOX的活性均呈先降后升的變化趨勢。說明2個枇杷品種果實發(fā)育過程中山梨醇、果糖、葡萄糖含量及SDH和山SOX的活性表現出相似的變化規(guī)律,但果實山梨醇含量與SDH和SOX的活性在果實膨大期均存在顯著差異(p<0.05),這可能是黃肉枇杷與白肉枇杷品質差異的關鍵。
關鍵詞 枇杷;山梨醇;山梨醇脫氫酶;山梨醇氧化酶
中圖分類號 S667.3 文獻標識碼 A
Abstract The changes of sorbitol, fructose and glucose contents and the activities of sorbitol-metabolizing enzymes, including sorbitol dehydrogenase(SDH), sorbitol oxidase(SOX)were studied during the fruit development of ‘Baili and ‘Jiefangzhongcultivars of loquat(Eriobotrya japonica Lindl.). The study was carried out to explore the relationships between sorbitol metabolism and the growth, development and quality formation of loquat fruits. The results showed that sorbitol content in the two cultivars generally decreased during fruit development, and sorbitol content was higher in ‘Baili than in ‘Jiefangzhong loquat. In the two cultivars, young loquat fruits from 35 to 80 days after anthesis exhibited low and relatively stable contents of fructose and glucose; their contents increased gradually from 95 to 140 days after anthesis, reaching to a peak from 125 to 140 days after anthesis. The glucose contents in the developing loquat fruits were similar in the two cultivars(p>0.05). The fructose content of ‘Baili fruit was significantly higher than that of ‘Jiefangzhong fruit during fruit maturation(p<0.05). In both cultivars, the activities of SDH and SOX decreased at first, and then rised during loquat fruit development. Trends of sorbitol, fructose and glucose contents and SDH, SOX activities were similar in the two cultivars, except for sorbitol content and SDH, SOX activities at the stage of loquat fruit enlargement(p<0.05). This may be the key for the formation of fruit quality in the two different loquat cultivars with yellow and white pulp.
Key words Loquat;Sorbitol;Sorbitol dehydrogenase(SDH);Sorbitol oxidase(SOX)
doi 10.3969/j.issn.1000-2561.2014.10.019
枇杷(Eriobotrya japonica Lindl.)是薔薇科(Rosaceae)蘋果亞科(Maloideae)枇杷屬的一種常綠果樹,是原產中國南方的特有珍稀水果。枇杷依其果肉顏色可分為黃肉枇杷和白肉枇杷2類,黃肉枇杷果實相對較大,但品質不及白肉枇杷;白肉枇杷果實味甜爽口、品質極優(yōu),但果較小。山梨醇屬于糖醇類,是山梨糖的還原產物[1]。山梨醇在高等植物中多集中分布于薔薇科的蘋果亞科、梅亞科、繡線菊亞科和薔薇亞科的棣棠花屬、下田菊屬和多瓣木屬,而其它植物山梨醇含量極低或不含[2]。相關研究認為,果實中山梨醇并不始終以山梨醇的形式存在,可通過其代謝酶而被轉化為果糖和葡萄糖,從而促進果實的膨大和品質的形成[3-5]。單守明等[6]的研究結果表明,外源激素通過調控SDH和SOX的活性而對蘋果果實生長速率及品質的形成產生影響。安永梅等[7]研究認為蘋果套袋降低了果實山梨醇的轉化能力,從而改變果實的品質。孟海玲等[8]研究認為山梨醇吸收量和代謝能力的增強能促進桃果實體積和重量的迅速增加。目前,有關果實發(fā)育過程中山梨醇及相關酶活性變化的研究多集中在薔薇科的蘋果、桃子、梨等果樹,而枇杷果實發(fā)育過程中營養(yǎng)成分及相關酶活性變化的研究主要集中于蔗糖及相關酶活性,有關枇杷果實山梨醇及代謝相關酶的研究鮮有報道。本研究以果型和品質差異較大的黃肉枇杷‘解放鐘(大果型)和白肉枇杷‘白梨(小果型)的果實為材料,分析果實發(fā)育過程中山梨醇、果糖、葡萄糖含量及山梨醇代謝相關酶活性的變化規(guī)律,旨在為進一步探索枇杷果實生長發(fā)育及糖積累與轉化的調控提供依據。
1 材料與方法
1.1 材料
以果型和品質差異較大的‘解放鐘和‘白梨枇杷果實為試材,由福建省莆田市果樹研究所提供。選取8年生樹冠大小和長勢相對一致、無病蟲害、生長正常的枇杷樹15株掛牌標記(經常規(guī)疏果),采取統(tǒng)一的土、肥、水管理方案,按物候期自花后35 d起至果實成熟,每隔15 d定期于樹冠外圍東、南、西、北和頂部隨機選取中等大小果實15~20個,采用隔熱保溫箱冰凍密封,并迅速運回實驗室,液氮速凍后保存于-70 ℃超低溫冰箱,待測相關指標。
1.2 方法
1.2.1 山梨醇的提取與測定 果實山梨醇的提取參照陳俊偉等[9]和孟艷玲等[10]的方法并稍作修改。用液氮將果實研磨成粉末過篩后,稱2.0~3.0 g粉末樣品,加入10.0 mL 80%乙醇于80 ℃水浴中提取10 min,以2 500×g離心10 min并收集上清液,其沉淀再用80%乙醇提取2次,合并上清液于旋轉蒸發(fā)儀上濃縮,加2.0 mL雙蒸水定溶,再用Sep-Pak C18柱進行固相萃取以除去色素、多酚與脂類,然后用0.22 μm濾膜進行除菌過濾,最后獲得山梨醇待測樣液。
山梨醇含量的測定參照孟艷玲等[10]和張麗娟等[11]的方法并稍作修改,采用液相色譜儀Waters 209系統(tǒng),泵Waters 510,色譜柱為SUGAR SC1011(Shodex,日本)(8 mm i. d.×300 mm),以超純水為流動相,0.8 mL/min的流量,紫外檢測器,檢測波長為190 nm, 柱溫為25 ℃,進樣量為20.0 μL。
1.2.2 糖的提取與測定 果糖和葡萄糖的提取與測定參照張友杰[12]的方法,果糖和葡萄糖含量以mg/g FW表示。
1.2.3 酶液制備與活性測定 酶液制備參照單守明等[6]的方法并稍作修改。稱取1.0 g果肉于研缽內,加少量石英砂和HEPES提取緩沖液5.0 mL(50.0 mmol/L的HEPES-NaOH,pH7.5,含10.0 mmol/L的MgCl2,1.0 mmol/L的EDTA,2. 5 mmol/L的DTT,10.0 mmol/L的維生素C和5.0%不溶性PVPP),冰浴研磨勻漿,于4 ℃條件下經12 000×g離心20 min,上清液即為粗酶液。粗酶液經45%~75%飽和度的硫酸銨分級鹽析,鹽析后采用稀釋10倍的HEPES提取緩沖液(不含PVPP)于4 ℃下透析15 h,得到的酶液保存于4 ℃冰箱中待測酶活性。SDH和SOX的活性測定參照Yamaki[13]和任雪峰等[14]的方法并稍作修改,以μmol NADH/h·g FW表示SDH的活性,以μmol glucose/(h·g FW)表示SOX的活性。
1.3 數據分析
以上各指標的測定均重復3次,取平均值。所得數據采用Microsoft Excel軟件進行繪圖,采用SPSS軟件檢驗差異顯著性。
2 結果與分析
2.1 枇杷果實發(fā)育過程中山梨醇含量的變化
從圖1可看出,枇杷果實中山梨醇含量相對較低?!夥喷婅凌斯麑嵣嚼娲己侩S果實發(fā)育進程而降低,在花后35~95 d的果實生長期,果實山梨醇含量呈快速下降,而果實發(fā)育后期即果實趨向成熟,果實山梨醇含量下降速度趨向平緩?!桌骅凌斯麑嵣嚼娲己侩S果實發(fā)育進程呈降-升-降-升的變化規(guī)律,致使其果實山梨醇含量在花后65~95 d的果實膨大期和125~140 d的成熟期顯著高于‘解放鐘,差異達顯著水平(p<0.05)。但‘白梨枇杷果實山梨醇含量隨果實發(fā)育進程總體上呈下降趨勢,表現出與‘解放鐘枇杷相似的變化趨勢。在果實發(fā)育進程中,‘白梨果實山梨醇含量總體上高于‘解放鐘。
2.2 枇杷果實發(fā)育過程中葡萄糖含量的變化
由圖2可見,‘白梨和‘解放鐘枇杷果實發(fā)育過程中葡萄糖含量均呈上升的變化趨勢,其中在花后35~95 d的果實生長期,2個枇杷品種果實的葡萄糖含量較低且相對穩(wěn)定,而花后125~140 d的果實生長發(fā)育后期,果實葡萄糖含量急劇上升并達到峰值,葡萄糖含量的變化與枇杷果實發(fā)育過程中甜度逐漸增加的品質變化進程相吻合?!桌婧汀夥喷婅凌嗽诠麑嵃l(fā)育過程中葡萄糖含量差異不顯著(p>0.05),2個枇杷品種果實品質存在差異的原因不在于葡萄糖。
2.3 枇杷果實發(fā)育過程中果糖含量的變化
從圖3可以看出,‘白梨和‘解放鐘果實發(fā)育過程中果糖含量均呈增加的變化趨勢,在花后35~80 d,果實中果糖含量一直保持在較低的水平,花后80~110 d果實中果糖含量開始平緩上升,而花后125~140 d果實中果糖含量急劇增加并達到峰值,90%以上的果糖是在果實成熟前30 d內積累的。在花后35~125 d,‘白梨和‘解放鐘枇杷果實中果糖含量相近,兩者差異未達顯著水平(p>0.05),但在花后125~140 d,‘白梨枇杷果實中果糖含量顯著高于‘解放鐘(p<0.05);至果實成熟時,‘白梨枇杷果實中果糖含量是‘解放鐘的2倍多,差異達極顯著水平(p<0.01)。這可能是導致黃肉枇杷果實品質不及白肉枇杷的重要原因之一。
2.4 枇杷果實發(fā)育過程中SDH活性的變化
SDH在果實中催化山梨醇轉變成果糖和葡萄糖。從圖4可看出,‘白梨果實發(fā)育過程中SDH活性變化不同于‘解放鐘,‘白梨枇杷果實SDH活性呈“升-降-升”的變化規(guī)律,而‘解放鐘枇杷果實SDH活性則呈“先降-后升”的變化趨勢。在花后50~95 d, ‘解放鐘枇杷果實SDH活性明顯高于‘白梨,差異達顯著水平(p<0.05)。在花后110~140 d即果實生長發(fā)育后期,因‘白梨枇杷果實SDH活性上升較快,導致‘白梨枇杷果實SDH活性高于‘解放鐘,兩者差異達顯著水平(p<0.05),這與‘白梨枇杷果實果糖含量高于‘解放鐘枇杷的結果相一致。在花后125~140 d,2個枇杷品種果實的SDH活性均表現出急劇上升。
SOX在果實中催化山梨醇轉變成葡萄糖。從圖5可看出,‘白梨和‘解放鐘枇杷果實發(fā)育過程中SOX活性均呈“先降-后升”的變化趨勢,但‘白梨枇杷果實SOX活性下降較為平緩,而‘解放鐘枇杷果實SOX活性下降較為明顯,并由此導致在花后35~80 d,‘白梨枇杷果實SOX活性高于‘解放鐘,特別在花后50~80 d期間,兩者差異達顯著水平(p<0.05)。在花后80~140 d,2個枇杷品種果實SOX活性逐漸上升,但兩者SOX活性差異不明顯(p>0.05),這與果實成熟時‘白梨枇杷果實葡萄糖含量略高于‘解放鐘枇杷的結果相吻合。
3 討論與結論
山梨醇是薔薇科果樹枇杷同化物的主要運輸形式,參與果實的形態(tài)建成及糖代謝,影響果實的生長發(fā)育與品質的形成[9]。枇杷果實發(fā)育早期生長較慢,且葡萄糖和果糖含量較低,可能與山梨醇作為代謝基質用于呼吸代謝、細胞分裂和細胞形成等消耗較少,同時山梨醇被轉化成葡萄糖和果糖也較少有關;而葉片合成的山梨醇不斷外運到果實中,使發(fā)育早期枇杷果實山梨醇含量保持在較高的水平。隨著果實進入細胞快速分裂和生長的發(fā)育中期,用于形態(tài)建成的山梨醇消耗隨之增加,導致此時果實山梨醇含量的降低。果實發(fā)育后期,SDH和SOX的活性隨著果實的成熟而逐漸升高,果實葡萄糖和果糖含量也隨之增加,葉片轉運來的山梨醇可能大部分被轉化成葡萄糖和果糖,因此成熟果實中山梨醇含量很低。在枇杷果實發(fā)育過程中,由山梨醇在果實發(fā)育早期和中期主要用于形態(tài)建成逐漸向果實發(fā)育后期山梨醇被轉化的功能轉變。本研究結果還發(fā)現果實成熟時,供試白肉枇杷‘白梨果實的果糖含量是‘解放鐘的2倍多,其山梨醇含量也高于‘解放鐘,而葡萄糖含量無明顯差別。在枇杷果實的葡萄糖、果糖和蔗糖3種糖中,果糖的甜度最高,白肉枇杷果實品質優(yōu)于黃肉枇杷與其高果糖含量相關,這與陳俊偉等[9]的研究結果一致。
本研究結果表明,在果實發(fā)育的早期和中期即花后50~95 d,‘解放鐘枇杷果實SDH的活性雖明顯高于‘白梨,而此期間‘解放鐘和‘白梨的果糖含量卻維持在較低的水平且,兩者幾乎無差異。果實發(fā)育后期即花后110~125 d,‘白梨枇杷果實SDH的活性高于‘解放鐘,而這期間‘白梨的果糖含量極顯著高于‘解放鐘,這表明枇杷果實中果糖含量還受控于其它代謝途徑,這與Sizuki等[15]在蘋果與亞洲梨上的研究結果基本一致。
Loescher等[16]和Archbold[17]研究認為蘋果果實的生長速率取決于果實獲取山梨醇的能力及山梨醇的轉化效率,SDH和SOX對果實生長發(fā)育和品質的形成起調控作用[4, 17]。本試驗在花后65~95 d的果實細胞快速分裂和生長期,‘白梨枇杷果實山梨醇的含量顯著高于‘解放鐘,而果實中果糖和葡萄糖含量卻沒有明顯變化且維持在較低的水平;這一時期‘白梨果實細胞分裂和細胞生長速度慢于‘解放鐘,可能與其果實山梨醇用于細胞分裂與生長等形態(tài)建成的轉化能力較弱或轉化為果糖和葡萄糖的需求少于‘解放鐘相關,導致其山梨醇的積累量高于‘解放鐘的結果,從而影響果實體積和重量的迅速增加,這可能是白肉枇杷果型普遍比黃肉枇杷果型小的原因之一。
參考文獻
[1] 婁成后. 植物生理學[M]. 北京: 農業(yè)出版社, 1980: 265.
[2] 白寶璋, 孫存華, 田文勛,等. 薔薇科果樹中山梨醇的研究概況[J]. 吉林農業(yè)大學學報, 1995, 17(增刊): 57-62.
[3] 周 睿, 束懷瑞. 高等植物中的山梨醇及其代謝[J]. 植物生理學通訊, 1993, 29(5): 384-390.
[4] Beruter J, Feusi M E. The effect of gridling on carbohydrate partitioning in the growing apple fruit[J]. Journal of Plant Physiology, 1997, 151(2): 277-285.
[5] 楊愛珍, 張志毅, 孟海玲,等. 桃果實發(fā)育過程中山梨醇及酶活性變化[J]. 林業(yè)科學, 2009, 45(5): 143-147.
[6] 單守明, 王永章, 董曉穎, 等. IAA、 GA和ABA對蘋果果實山梨醇代謝相關酶活性的影響[J]. 園藝學報, 2005, 32(6): 990-993.
[7] 安永梅, 王永章, 李培環(huán),等. 套袋對紅富士蘋果果實山梨醇代謝和相關酶活性的影響[J]. 中國農學通報, 2010, 26(16):234-237.
[8] 孟海玲, 王有年, 師光祿,等. 桃樹子房發(fā)育初期山梨醇含量及其相關酶活性的變化[J]. 植物生理學通訊, 2007, 43(2):241-244.
[9] 陳俊偉, 徐紅霞, 謝 鳴, 等. 紅沙枇杷‘大紅袍與白沙枇杷‘寧海白糖積累及代謝的差異[J]. 園藝學報, 2010, 37(6):997-1 002.
[10] 孟艷玲, 韓振海, 閆建河, 等. 干旱脅迫下平邑甜茶各器官中山梨醇的累積[J]. 植物生理學通訊, 2007, 43(6): 1 065-1 071.
[11] 張麗娟, 韋志明,韋少平. 高效液相色譜法測定電解液中的山梨醇及甘露醇[J]. 分析試驗室, 2007, 26(10): 63-65.
[12] 張友杰. 以蒽酮分光光度法測定果蔬中的葡萄糖、 果糖、蔗糖和淀粉[J]. 分析化學, 1977, 5(3): 167-171.
[13] Yamaki S. Properties and functions of sorbitol-6-phosphate dehydrigenase sorbitol dehydrogenase and sorbitol oxidase in fruit and cotyledon of apple[J]. Journal of the Japan Society for Horticultural Science, 1980, 49(3): 429-434.
[14] 任雪峰, 陳載融,孫春洪. 連續(xù)監(jiān)測法測定血清山梨醇脫氫酶[J]. 臨床檢驗雜志, 1997, 15(2): 76-79.
[15] Suzuki Y, Odanaka S, Kanayama Y. Fructose content and fructose-related enzyme activity during the fruit development of apple and Japanese pear[J]. Journal of the Japan Society for Horticultural Science, 2001, 70(1): 16-20.
[16] Loescher W H, Marlow G C, Kennedy R A. Sorbitol metabolism and sink-source inter conversions in developing apple leaves[J]. Plant Physiology, 1982, 70(2): 335-339.
[17] Archbold D D. Carbohydrate availability modifies sorbitol dehydrogenase activity of apple fruit[J]. Physiologia Plantarum,1999, 105(2): 391-395.