錢柿汝, 袁久剛, 姚金龍, 樊正國(guó), 盧榮清, 王 強(qiáng), 范雪榮
(1. 江南大學(xué) 生態(tài)紡織教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 無(wú)錫 214122;2. 江蘇聯(lián)發(fā)紡織股份有限公司 江蘇省生態(tài)染整技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 海安 226601)
眾所周知,聚乙烯醇(PVA)和聚丙烯酸(PAA)均為比較重要的紡織上漿材料。PVA漿料具有很多優(yōu)點(diǎn),如黏度穩(wěn)定、粘著力強(qiáng)、成膜性好、漿膜強(qiáng)度較大,彈性伸長(zhǎng)、耐磨性和耐屈曲性好等,且其上漿性能優(yōu)于原淀粉和變性淀粉。PAA漿料對(duì)親水性纖維有良好的黏附性,能改善淀粉漿料的粘度熱穩(wěn)定性[1]。
經(jīng)紗上漿織造成織物后需要退漿,α-淀粉酶可迅速將淀粉大分子降解成糊精、麥芽糖和葡萄糖等水溶性物質(zhì),將織物(經(jīng)紗)上的淀粉漿料快速去除,具有能耗低、排污少、廢水處理簡(jiǎn)單等優(yōu)點(diǎn)[2-3]。此外,由于酶的專一性,淀粉酶退漿較堿退漿織物強(qiáng)力損傷小,因此淀粉酶退漿被印染企業(yè)廣泛采用。但酶對(duì)反應(yīng)環(huán)境的要求苛刻,對(duì)環(huán)境的變化敏感。當(dāng)反應(yīng)環(huán)境發(fā)生變化時(shí),其構(gòu)象和活力都會(huì)發(fā)生變化,導(dǎo)致其催化效率發(fā)生變化。研究表明,一些小分子多元醇[4]和表面活性劑[5-6]等低分子量物質(zhì)和聚乙二醇、聚乙烯胺[7-8]等高聚物均會(huì)對(duì)酶的分子內(nèi)結(jié)構(gòu)和微環(huán)境等造成一定的影響,這些影響可以通過(guò)酶內(nèi)氨基酸的內(nèi)源性熒光及酶的二級(jí)結(jié)構(gòu)的變化予以分析。大多數(shù)的酶分子中都含有芳香族氨基酸,色氨酸(Trp)、酪氨酸(Tyr)和苯丙氨酸(Phe)這3類氨基酸均同屬于這一類氨基酸,這3類氨基酸所具有的的熒光特性之所以不同,主要是因?yàn)樗鼈兊膫?cè)鏈基團(tuán)不同。這3類氨基酸所具有的熒光強(qiáng)度排列依次為:色氨酸、酪氨酸和苯丙氨酸。在現(xiàn)有的酶構(gòu)象研究中,往往會(huì)根據(jù)芳香族氨基酸的熒光特性來(lái)推測(cè)酶分子的構(gòu)象以及微環(huán)境的變化。Trp殘基不但對(duì)微環(huán)境變化非常敏感,而且它在大部分蛋白質(zhì)中的數(shù)量均較多,因此,往往選用Trp殘基作為酶分子的內(nèi)源性熒光探針,來(lái)反映處于不同環(huán)境下酶分子構(gòu)象和微環(huán)境變化的信息。在淀粉酶退漿過(guò)程中,漿料組分中PVA/PAA的存在對(duì)淀粉酶的酶活、構(gòu)象等有何影響,目前尚無(wú)相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道。為此,本文研究了PVA/PAA對(duì)α-淀粉酶的活性、內(nèi)源性熒光及二級(jí)結(jié)構(gòu)的影響。
玉米原淀粉,山東鄒平天美紡織助劑有限公司;PVA-1799、PAA均為工業(yè)品,江蘇聯(lián)發(fā)紡織股份有限公司;α-淀粉酶(諾維信中溫α-淀粉酶),酶活120000 U/mL,上海諾維信生物技術(shù)有限公司;3, 5-二硝基水楊酸、氫氧化鈉、甘油、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、三氯乙酸,均為分析純,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。
UV-2802S紫外可見分光光度計(jì),上海尤尼科儀器有限公司;F-4600熒光分光光度計(jì),日本HITACHI公司;DOS-450圓二色譜儀,法國(guó)Bio-Logic公司。
1.2.1 α-淀粉酶活力測(cè)定
α-淀粉酶的活力采用DNS比色法測(cè)定[9]。1 mL適當(dāng)濃度的酶液在60 ℃、pH值6的條件下,1 min分解產(chǎn)生1 μmol還原糖為一個(gè)活力單位(1 U)。在不同PVA、PAA濃度時(shí)測(cè)定α-淀粉酶的活力,PVA的濃度分別為5%、15%和25%,PAA的濃度分別為1.5%、2%和2.5%,以未加PVA、PAA的α-淀粉酶活力為100%。
1.2.2 熒光光譜的測(cè)定
在α-淀粉酶的0.1 M磷酸鹽緩沖溶液中分別加入不同濃度的PVA或PAA溶液,PVA的濃度分別為5%、15%和25%,PAA的濃度分別為1.5%、2%和2.5%,混合均勻,25℃下以280 nm為激發(fā)波長(zhǎng),記錄300~400 nm波長(zhǎng)范圍內(nèi)的發(fā)射光譜。熒光發(fā)射譜的背景散射用緩沖溶液校正。
1.2.3 圓二色譜的測(cè)定
在α-淀粉酶的0.1 M 磷酸鹽緩沖溶液中分別加入不同濃度的PVA或PAA溶液,PVA的濃度分別為5%、15%和25%,PAA的濃度分別為1.5%、2%和2.5%,α-淀粉酶的濃度為0.01 g/L,混合均勻后,在25 ℃和氮?dú)獗Wo(hù)下于190~260 nm范圍內(nèi)掃描圓二色譜。圓二色譜用平均殘基摩爾橢圓度表示,單位為deg·cm2/dmol,二級(jí)結(jié)構(gòu)的計(jì)算采用K2D方法。
在α-淀粉酶水解體系中,分別加入不同濃度的PVA或PAA,其酶活性變化如圖1和圖2所示。
圖1 不同濃度PVA對(duì)α-淀粉酶活性的影響
圖2 不同濃度PAA對(duì)α-淀粉酶活性的影響
從圖1、圖2可以看出,PVA或PAA均使得α-淀粉酶的活性降低,且PVA或PAA的濃度越高,酶活性降低越多。這可能是PVA或PAA會(huì)使得酶分子的空間構(gòu)象發(fā)生扭曲,使酶活性逐漸降低。為了進(jìn)一步研究α-淀粉酶活性降低的原因,本文分別采用熒光色譜法和圓二色譜法研究了PVA/PAA對(duì)α-淀粉酶內(nèi)源性熒光及對(duì)酶二級(jí)結(jié)構(gòu)的影響。
PVA/PAA的濃度對(duì)α-淀粉酶的內(nèi)源性熒光的影響如圖3和圖4所示。
圖3 PVA濃度對(duì)α-淀粉酶內(nèi)源性熒光的影響
a-d: PVA的濃度依次為0%、5%、15%和25%。
圖4 PAA濃度對(duì)α-淀粉酶內(nèi)源性熒光的影響
a-d: PAA的濃度依次為0%、1.5%、2%和2.5%。
由圖3可知,PVA濃度的增強(qiáng)使得α-淀粉酶的內(nèi)源性熒光強(qiáng)度也會(huì)稍有增強(qiáng)。這一現(xiàn)象表明可能是PVA使α-淀粉酶芳香氨基酸殘基周圍環(huán)境的極性減小[10],或者是α-淀粉酶的空間結(jié)構(gòu)由于PVA的作用而變得松散,使得原處于淀粉酶分子內(nèi)疏水腔中的色氨酸(Trp)暴露在α-淀粉酶分子的表面,進(jìn)而熒光強(qiáng)度增強(qiáng)[11]。此外,在PVA溶液中,色氨酸殘基的吲哚基團(tuán)上的-N-H可能會(huì)與PVA分子中帶有的羥基形成分子間氫鍵,使得熒光體的結(jié)構(gòu)剛性增強(qiáng),受激發(fā)后產(chǎn)生π→π*躍遷,熒光量子效率增大,熒光增強(qiáng)[11]。由圖4可知,PAA的濃度越大,熒光強(qiáng)度的減弱程度越為明顯,由此可知,PAA對(duì)淀粉酶有熒光猝滅作用,分析原因可能是Trp殘基所處微環(huán)境的極性增大,使Trp殘基在溶劑環(huán)境中暴露程度降低[12]。此外,隨著PVA或PAA濃度的增加,最大吸收波長(zhǎng)(λmax)均發(fā)生紅移,由最大波長(zhǎng)337 nm紅移至340 nm,說(shuō)明PVA或PAA的作用使得α-淀粉酶部分肽鍵間疏水作用減弱,肽鍵羰基n→π*躍遷能量減少,肽鍵伸展[7]。由此可見,PVA或PAA的存在會(huì)使得α-淀粉酶分子中色氨酸殘基的微環(huán)境發(fā)生改變,使α-淀粉酶活性降低。
酶活性變化通常伴隨著酶的二級(jí)結(jié)構(gòu)和活性構(gòu)象的改變。圓二色譜(CD光譜)是分析蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)常用的工具[13-15],可以準(zhǔn)確地檢測(cè)到二級(jí)結(jié)構(gòu)的變化信息。PVA、PAA對(duì)α-淀粉酶二級(jí)結(jié)構(gòu)的影響如圖5和圖6所示。從圖5和圖6可以看出,PVA或PAA的存在,改變了α-淀粉酶的次級(jí)結(jié)構(gòu)組成,具體體現(xiàn)在α-螺旋、β-折疊和無(wú)規(guī)則卷曲的質(zhì)量組成均發(fā)生變化,且隨著PVA或PAA濃度的增加,α-螺旋、β-折疊和無(wú)規(guī)則卷曲的質(zhì)量組成的變化越明顯。
圖5 PVA濃度對(duì)α-淀粉酶二級(jí)結(jié)構(gòu)的影響
圖6 PAA濃度對(duì)α-淀粉酶二級(jí)結(jié)構(gòu)的影響
一個(gè)由8個(gè)α-螺旋和8個(gè)β-折疊交替出現(xiàn)形成的(β/α)8桶形結(jié)構(gòu)組成了α-淀粉酶的催化區(qū)域(CD),由此可知,α-淀粉酶是α/β結(jié)構(gòu)模體的酶。酶的天然構(gòu)象以及酶的特定功能域?qū)γ傅幕钚员3质种匾?,而酶的特定功能域的形成以及酶的?gòu)象的變化又與適當(dāng)?shù)摩?螺旋含量和一定的α/β比率密切相關(guān)[15]。圖5中α-淀粉酶的α-螺旋的含量會(huì)隨著PVA含量的增加而逐漸減小,而當(dāng)α-螺旋度的構(gòu)象過(guò)小時(shí),可能會(huì)使酶蛋白質(zhì)的氫鍵結(jié)構(gòu)和其他結(jié)構(gòu)遭到破壞而產(chǎn)生酶結(jié)構(gòu)不可逆的變化。圖6中隨著PAA含量的增加,α-螺旋的含量也在逐漸增大,由于α-螺旋結(jié)構(gòu)緊密的特殊性,酶的構(gòu)象中α-螺旋過(guò)大,則不利于酶形成活性中心,從而使底物不能與之結(jié)合,使酶活性喪失[16]。此外,α-淀粉酶的天然構(gòu)象與α/β的比率也密切相關(guān),特定的α/β 比率決定天然構(gòu)象。圖7、圖8分別表示了PVA和PAA對(duì)α-淀粉酶α-螺旋/β-折疊比率的影響。
圖7 PVA含量對(duì)α-淀粉酶二級(jí)結(jié)構(gòu)中α-螺旋/β-折疊比率的影響
圖8 PAA含量對(duì)α-淀粉酶二級(jí)結(jié)構(gòu)中α-螺旋/β-折疊比率的影響
結(jié)合圖1、圖2可知,PVA或PAA的濃度越大,α-淀粉酶的相對(duì)酶活越低,α-螺旋/β-折疊比率變化越大。酶分子的折疊或去折疊會(huì)隨著α/β的比率變化而變化,α/β的比率變化越大,折疊或去折疊的變化就會(huì)越大,總體上就會(huì)呈現(xiàn)出越多的錯(cuò)誤折疊,最終不能形成酶的天然構(gòu)象,從而使酶失去應(yīng)有的活性,即酶的天然構(gòu)象改變?cè)蕉啵钚灾行幕蚴擎I合位點(diǎn)就越少,酶的活性就越低[16]。
PVA和PAA均能使α-淀粉酶的活性降低,并能改變?chǔ)?淀粉酶的內(nèi)源性熒光和二級(jí)結(jié)構(gòu),且PVA和PAA的濃度越高,酶活性越低,酶的內(nèi)源性熒光和二級(jí)結(jié)構(gòu)的變化越大。
參考文獻(xiàn):
[1]范雪榮, 顧蓉英, 王 強(qiáng).聚丙烯酸漿料對(duì)淀粉漿液漿膜性能的影響[J]. 紡織學(xué)報(bào), 2004, 25(2): 37-39.
[2]Chand N, Nateri A S, Sajedi R, et al. Enzymatic desizing of cotton fabric using a Ca2+-independent α-amylase with acidic pH profile[J]. Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 2012, 83: 46-50.
[3]Sharma A, Satyanarayana T. Cloning and expression of acid stable, high maltose-forming, Ca2+-independent α-amylase from an acidophileBacillusacidicolaand its applicability in starch hydrolysis[J]. Extremophiles, 2012, 16: 515-522.
[4]Combes D, Graber M, Ye W N. Stabilizing effect of polyhydric alcohols[J]. Annals of the New York Academy of Sciences, 1990, 613: 559-563.
[5]Tanaka A, Hoshino E. Thermodynamic and activation parameters for the hydrolysis of amylose with Bacillus α-amylase in a diluted anionic surfactant solution[J]. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2002, 93: 485-490.
[6] Hirai M, Kawai-Hirai R, Hirai T, et al. Structural change of jack bean urease induced by addition of surfactants studied with synchrotron-radiation small-angle X-ray scattering[J]. European Journal of Biochemistry, 1993, 215: 55-61.
[7]王 峰, 梁力曼, 顧正彪, 等. 聚乙二醇、聚乙烯胺與淀粉酶相互作用熒光光譜[J]. 應(yīng)用化學(xué), 2010, 27(1): 96-100.
[8]Boeris V, Farruggia B, Nerli B, et al. Protein-flexible chain polymer interactions to explain protein partition in aqueous two-phase systems and the protein-polyelectrolyte complex formation[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2007, 41: 286-294.
[9]Decker L A. Worthington enzyme manual[M]. New Jersey : Worthington Bioghhemical Corporation, 1977.
[10]Konsula Z, Liakopoulou K M. Hydrolysis of starches by the action of an α-amylase fromBacillussubtilis[J]. Process Biochemistry, 2004, 39(11):1745-1749.
[11]潘宏程, 蔣治良, 袁偉恩, 等. 人血清蛋白-丙酮(乙醇)體系的熒光光譜及共振散色光譜特性[J]. 應(yīng)用化學(xué), 2003, 20(7): 661-663.
[12]Efink M R. In protein fluorescence[M]. New York: Kluwer Academic Publishers, 2002: 1.
[13]Johnson W C. Analyzing protein circular dichroism spectra for accurate secondary structures [J]. Protein, 1999, 35: 307-312.
[14]Adler A J, Greenfield N, Fasman G D. Complexes of deoxyribonucleic acid with lysine-rich (f1) histone phosphorylated at two separate sites: circular dichroism studies[J]. Arch Biochem Biophys, 1972, 153(2):769-777.
[15]Chen Y H, Yang J T, Martinez H M. Determination of the secondary structures of proteins by circular dichroism and optical rotatory dispersion[J]. Biochemistry, 1972, 11(22):4120-4131.
[16]沈 瓊, 黃 濱, 邵嘉量, 等. 運(yùn)用圓二色譜研究酶與化合物相互作用的機(jī)理[J]. 中山大學(xué)學(xué)報(bào), 2006, 45(4): 62-64.