管 笛,潘燦平,王 文,武會娟,*
磁微粒酶聯(lián)免疫吸附法測定玉米中的伏馬毒素B1
管 笛1,2,3,潘燦平3,王 文1,2,武會娟1,2,*
(1.北京市理化分析測試中心,北京 100089;2.北京市食品安全分析測試工程技術(shù)研究中心,北京 100089;3.中國農(nóng)業(yè)大學(xué)理學(xué)院,北京 100094)
將磁微粒的偶聯(lián)物替代酶標(biāo)板作為固定相,用于酶聯(lián)免疫吸附(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)法檢測玉米中的伏馬毒素B1(fumonisin B1,F(xiàn)B1)。在直接競爭ELISA反應(yīng)中,分別引入羊抗兔抗體-磁微粒、蛋白A-磁微粒,并比較二者替代效果。通過對檢測方法的優(yōu)化,使用羊抗兔抗體、蛋白A與磁微粒的偶聯(lián)物作為固定相的檢出限分別為0.024 μg/mL和0.030 μg/mL。羊抗兔抗體-磁微粒偶聯(lián)物替代酶標(biāo)板后具有更低的檢出限,為常規(guī)ELISA法檢測限的三分之一。玉米樣品中FB1回收率范圍在76.4%~110.6%之間,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差小于11%。研究建立了一種靈敏度高、穩(wěn)定性好的FB1檢測方法。
磁微粒;酶聯(lián)免疫吸附法;伏馬毒素;玉米;蛋白A
伏馬毒素(fumonisins)是20世紀(jì)80年代末期發(fā)現(xiàn)的一類由串珠鐮刀菌(Fusarium moniliforme)產(chǎn)生的真菌毒素,目前已知有28 種衍生物,其中以伏馬毒素B1(fumonisin B1,F(xiàn)B1)最為常見[1-2]。伏馬毒素具有神經(jīng)毒性、肺毒性、致癌性,可引起馬腦白質(zhì)軟化癥和豬肺水腫綜合癥,且與人類食管癌和肝癌的發(fā)生有密切關(guān)系[3-5]。國際癌癥研究機構(gòu)已將伏馬毒素列為2B級致癌物,即人類潛在致癌物[6]。鑒于伏馬毒素的危害性,世界各國對其進行嚴(yán)格限量。歐盟規(guī)定不同飼料中伏馬毒素的推薦最高限量標(biāo)準(zhǔn)為5 mg/kg[7];美國食品藥品監(jiān)督管理局公布的食用谷物中伏馬毒素的推薦最高限量為2 mg/kg[8]。
伏馬毒素主要存在于谷物中,以玉米居多[9]。玉米是世界主要農(nóng)作物之一,也是我國大部分地區(qū)食物和飼料的重要來源。因此,加強玉米及飼料中伏馬毒素含量的測定,獲知其污染程度,有利于保障我國人民食用安全及畜牧業(yè)穩(wěn)定。
目前檢測FB1的方法主要有高效液相色譜-熒光檢測法[10-11]、高效液相色譜-質(zhì)譜檢測法[12-17]等儀器分析法,以及基于免疫學(xué)原理的酶聯(lián)免疫吸附法(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)[18-19]、化學(xué)發(fā)光檢測法[20-23]、膠體金免疫層析法[24-25]等。這些方法在保證食品及農(nóng)產(chǎn)品安全方面發(fā)揮了重要的作用。本研究在傳統(tǒng)ELISA法的基礎(chǔ)上,引入超順磁微粒,替代酶標(biāo)板作為固相載體,使免疫反應(yīng)從二維到三維立體反應(yīng),以期提高檢測靈敏度,促進FB1檢測技術(shù)的發(fā)展,對控制伏馬毒素的污染具有重要意義。
1.1 材料與試劑
FB1標(biāo)準(zhǔn)溶液、牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)、3,3’,5,5’-四甲基聯(lián)苯胺 美國Sigma-Aldrich公司;FB1多克隆抗體、FB1-HRP偶聯(lián)物 美國Beacon公司;蛋白A-磁微粒偶聯(lián)物、2.8 μm粒徑磁微粒美國Invitrogen公司;羊抗兔抗體 北京科百奧生物科技有限責(zé)任公司;96孔可拆卸酶標(biāo)板 美國Corning公司;其他試劑均為分析純。
1.2 方法
1.2.1 磁微粒與羊抗兔抗體的偶聯(lián)
取2.8 μm粒徑磁微粒165 μL,用pH 9.5硼酸緩沖液洗滌2 次,棄去溶液;加入4 μL質(zhì)量濃度為25 mg/mL的羊抗兔抗體,加pH 9.5硼酸緩沖液至終體積為150 μL,旋渦輕輕混勻,再加入100 μL含3 mol/L硫酸銨的pH 9.5硼酸緩沖液,搖床210 r/min,37 ℃反應(yīng)18 h;用磁鐵吸附磁微粒,棄去反應(yīng)溶液,加入1 mL含0.5% BSA的磷酸緩沖液,搖床210 r/min,37 ℃反應(yīng)1 h;利用磁鐵吸附,棄去溶液;用含0.5% BSA的磷酸緩沖液洗滌2 次,加入330 μL 0.5% BSA、0.05%硫柳汞的磷酸緩沖液,4 ℃保存待用。
1.2.2 常規(guī)ELISA方法
將羊抗兔抗體溶于pH 9.5的碳酸鹽緩沖液中至質(zhì)量濃度為40 μg/mL,加入酶標(biāo)板中,100 μL/孔,4 ℃過夜。磷酸-吐溫溶液洗板3 次后,每孔加入200 μL 1.5% BSA封閉液,37 ℃孵育2 h。磷酸-吐溫溶液洗板3 次后,每孔加入50 μL樣品/標(biāo)準(zhǔn)品溶液,50 μL FB1-HRP偶聯(lián)物,50 μL FB1抗體溶液,37 ℃反應(yīng)15 min。磷酸-吐溫溶液洗板5 次后,每孔加入100 μL顯色液,37 ℃反應(yīng)10 min后,每孔加入50 μL 2 mol/L硫酸終止反應(yīng),450 nm波長處測定吸收度。
1.2.3 基于羊抗兔抗體-磁微粒偶聯(lián)物的ELISA方法
向96孔板每孔中加入200 μL 1.5% BSA溶液,37 ℃孵育2 h。磷酸-吐溫溶液洗板3 次后,每孔加入50 μL樣品/標(biāo)準(zhǔn)品溶液,50 μL FB1-HRP偶聯(lián)物,15 μg羊抗兔抗體-磁微粒偶聯(lián)物,50 μL FB1抗體溶液,放入搖床中,37 ℃,150 r/min,反應(yīng)15 min。將96孔板磁力板上,放置1 min,待磁微粒完全吸附在板孔底部后,吸去反應(yīng)液,并用磷酸-吐溫溶液洗板3 次,每次每孔380 μL。每孔加入100 μL顯色液,放入搖床中,37 ℃,150 r/min,反應(yīng)10 min后,每孔加入50 μL 2 mol/L硫酸終止反應(yīng),450 nm波長處測定吸收度。
1.2.4 基于蛋白A-磁微粒偶聯(lián)物的ELISA方法
方法步驟與1.2.3節(jié)相同,將15 μg羊抗兔抗體-磁微粒偶聯(lián)物換成15 μg 蛋白A-磁微粒偶聯(lián)物。
1.2.5 標(biāo)準(zhǔn)曲線建立與數(shù)據(jù)處理
取FB1標(biāo)準(zhǔn)品溶液質(zhì)量濃度為0、0.02、0.06、0.2、0.6、1.2 μg/mL,利用以上方法分別建立標(biāo)準(zhǔn)曲線。溶液吸收度通過酶標(biāo)儀在450 nm波長處測定,并作圖。以抑制率為縱坐標(biāo)(抑制率=A/A0×100,式中:A為含有FB1時的吸光度;A0為質(zhì)量濃度為0時的吸光度),F(xiàn)B1質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)。測定結(jié)果用非線性四參數(shù)邏輯斯蒂擬合。方法的檢出限定義為90%抑制率時所對應(yīng)FB1質(zhì)量濃度。檢測的線性范圍定義為抑制率在20%~80%之間所對應(yīng)的FB1質(zhì)量濃度。
1.2.6 玉米樣品中FB1回收率的測定
以不同質(zhì)量濃度FB1添加于空白玉米粉樣品中,稱取20 g樣品,并量取100 mL 70%甲醇溶液至一具塞三角瓶中。劇烈振蕩3 min,靜置3 min,待樣品沉淀。用玻璃纖維濾紙過濾萃取液,并收集,取50 μL上樣定量檢測。
2.1 磁微粒用量的優(yōu)化
磁微粒的用量對實驗結(jié)果的準(zhǔn)確性與穩(wěn)定性具有很大的影響。由于磁微粒本身沒有透光性,為棕色顆粒,加入量不當(dāng)會造成本底吸光度過大,且因磁微粒的分布不均,造成不同程度的遮光現(xiàn)象,引起吸光度不穩(wěn)定。因此本研究首先對加入不同量的磁微粒的本底吸光度進行研究,結(jié)果見表1。
表1 磁微粒的本底吸光度Table 1 Background absorbanceof magnetic particles
由表1可知,隨著加入磁微粒量的增加,透光性有一定減弱,吸光度隨之升高。羊抗兔抗體-磁微粒偶聯(lián)物的本底吸光度由0.040 6增加到0.190 8;蛋白A-磁微粒偶聯(lián)物本底吸光度由0.046 5增加到0.211 1。同時磁微粒加入的增多,本底值相對標(biāo)準(zhǔn)偏差也升高,當(dāng)加入22.5 μg磁微粒時,2 種磁微粒偶聯(lián)物的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差均大于20%。
表2 磁微粒使用量對顯色結(jié)果的影響Table 2 Effect of the amount of magnetic particles used on color reaction
由表2可知,對于2 種磁微粒偶聯(lián)物來說,隨著磁微粒用量的增大,其在450 nm波長處吸收度隨之增大。但是磁微粒用量在7.5 μg時,顯色結(jié)果的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差較大。引起相對標(biāo)準(zhǔn)偏差變大的原因是磁微粒使用量較少,即在單位磁微粒上結(jié)合的免疫復(fù)合物較多,而在洗滌步驟中若有少量損失,由于標(biāo)記酶的級聯(lián)放大作用,會對顯色結(jié)果產(chǎn)生較大影響,造成吸光度的不穩(wěn)定。
因此,綜合考慮本底吸光度和顯色結(jié)果的影響,本研究選取15 μg作為羊抗兔抗體-磁微粒偶聯(lián)物與蛋白A-磁微粒偶聯(lián)物的最佳使用量。
2.2 洗板方式的選擇
樣品中游離的FB1(或標(biāo)準(zhǔn)品FB1)、FB1-HRP偶聯(lián)物、抗體、蛋白A-磁微粒偶聯(lián)物(羊抗兔抗體-磁微粒偶聯(lián)物)在微孔板中進行競爭反應(yīng)。與抗體-FB1/抗體-FB1-HRP偶聯(lián)物結(jié)合在磁微粒上,為避免發(fā)生非特異性反應(yīng)和降低背景值,通過磁鐵吸附聚集,未結(jié)合物需經(jīng)棄液、洗滌過程。若洗滌方式不當(dāng),有可能造成非結(jié)合物會洗滌不徹底,吸光度偏高,也可能造成磁微粒復(fù)合物損失,使結(jié)果不穩(wěn)定。
本研究比較了洗板機洗滌和手動洗滌兩種方式。洗板機洗滌方式為在96孔板下方加上一個相應(yīng)的96孔磁力吸附板,經(jīng)過吸液-加液-吸液的過程重復(fù)3 次。手動洗滌方式為:首先利用磁鐵將磁微粒吸到微孔板底部一側(cè),再將微孔板放到相應(yīng)的96孔磁力吸附板上,利用排槍在微孔磁微粒的另一側(cè)將廢液吸去,并加洗液至滿孔,再將洗液吸去,重復(fù)3 次。為將液體充分吸凈,在吸液過程中將微孔板抬起一定角度,有磁微粒的一側(cè)高,保證液體均流向吸液一側(cè)。通過測定標(biāo)準(zhǔn)品質(zhì)量濃度為0、0.06、0.2、0.6、1.2 μg/mL時的顯色結(jié)果,每個質(zhì)量濃度重復(fù)3 次,比較兩種洗板方式的洗板效果。結(jié)果見圖1。由圖1可知,利用洗板機洗板的方式,顯色結(jié)果梯度不好,而且結(jié)果穩(wěn)定性差,5 個質(zhì)量濃度顯色值相對標(biāo)準(zhǔn)偏差在12.57%~46.12%之間。結(jié)果不穩(wěn)定的原因在于洗板機洗板時,磁微粒被磁鐵吸附在底部均勻分開,而洗板機吸液吸力較大,且在板孔的中心部位吸取,這樣會造成一定程度的磁微粒損失。手動洗板的方式結(jié)果呈現(xiàn)較好的梯度,且5 個質(zhì)量濃度顯色值相對標(biāo)準(zhǔn)偏差在1.37%~9.00%之間,結(jié)果穩(wěn)定性好。結(jié)果穩(wěn)定的原因在于洗板時,將磁微粒吸至一側(cè),而吸液、加液在板孔另一側(cè)完成,整個過程磁微粒損失較小。
在洗板過程中,洗滌次數(shù)對結(jié)果也會產(chǎn)生一定的影響。洗板次數(shù)不夠,F(xiàn)B1-HRP有殘留,影響顯色結(jié)果,洗板次數(shù)過多,不僅會造成磁微粒的損失,而且會增加額外操作時間。本研究采用上述提到的手動洗滌方式,對FB1標(biāo)準(zhǔn)品質(zhì)量濃度為0、1.2 μg/mL的孔分別洗2、3、4、5 次,每次重復(fù)結(jié)果3 次,結(jié)果見表3??芍?,隨著洗板次數(shù)的增多,顯色結(jié)果基本穩(wěn)定,在第3次之后,干擾物已經(jīng)基本洗凈,考慮到洗板次數(shù)越多會延長檢測時間,選取洗板3 次為最佳。
圖1 不同洗滌方式的比較Fig.1 Comparison of different washing methods
表3 洗滌次數(shù)對顯色結(jié)果影響Table 3 Effect of washing number on color reaction
2.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線的比較
圖2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的比較Fig.2 Comparison of standard curves
本研究將蛋白A-磁微粒和羊抗兔抗體-磁微粒作為承載體,取代酶標(biāo)板引入ELISA中,并分別建立標(biāo)準(zhǔn)曲線,與常規(guī)ELISA進行比較,結(jié)果見圖2。在FB1質(zhì)量濃度0~1.2 μg/mL范圍內(nèi),承載體為酶標(biāo)板,蛋白A-磁微粒、羊抗兔抗體-磁微粒的標(biāo)準(zhǔn)曲線表現(xiàn)出較好的擬合度,R2值均大于0.999。但是3 種方法的檢出限有所不同。常規(guī)ELISA方法,即以酶標(biāo)板作為承載體的檢出限為0.076 μg/mL,蛋白A-磁微粒作為承載體的檢出限為0.030 μg/mL,羊抗兔抗體-磁微粒作為承載體的檢出限為0.024 μg/mL。由結(jié)果可知,磁微粒的引入,較常規(guī)ELISA法可以降低檢出限,提升檢測靈敏度,具體到本研究檢出限僅為常規(guī)酶聯(lián)免疫吸附法的三分之一。與常規(guī)酶標(biāo)板作為承載體相比,磁微粒具有更大的比表面積,能提供更多結(jié)合位點,在溶液中較為均一分散,表面結(jié)合的抗體反應(yīng)位點在溶液中充分暴露,降低了抗體與抗原結(jié)合的空間位阻。酶標(biāo)板包被法中,抗原通過分子布朗運動和擴散運動到微孔板的速度較慢,而磁微粒可均勻分布在溶液中,更易于接近抗原,在液相中呈三維立體反應(yīng),從而加快與抗原的結(jié)合速度。綜上,相較常規(guī)酶標(biāo)板,在相同時間內(nèi),磁微粒的引入可使免疫反應(yīng)更徹底,從而獲得更高的靈敏度。
2.4 玉米樣品中FB1添加回收率的測定
向空白玉米樣品中添加一定量的FB1標(biāo)準(zhǔn)品,使終質(zhì)量濃度為0.1、0.5 μg/mL和0.8 μg/mL。經(jīng)過提取回收,利用酶標(biāo)板、蛋白A-磁微粒、羊抗兔抗體-磁微粒作為承載體的方法分別測定并比較。
表4 玉米樣品中FB1添加回收率測定Table 4 Recoveries of FB1in spiked corn samples
由表4可知,羊抗兔抗體-磁微粒偶聯(lián)物的回收率范圍在76.4%~92.0%之間,蛋白A-磁微粒偶聯(lián)物的回收率范圍在88.6%~110.6%之間,常規(guī)ELISA回收率范圍在93.0%~112.1%之間。通過3 種不同質(zhì)量濃度FB1玉米樣品的應(yīng)用研究,得到了很好的回收率,進一步證明磁微粒作為承載體能夠用于玉米中FB1的ELISA檢測。
本研究利用蛋白A-磁微粒、羊抗兔抗體-磁微粒替代酶標(biāo)板作為固定相,用于ELISA檢測玉米樣品中的FB1。由于磁微粒能夠提供更大的比表面積,更好的流動性,能夠避免空間位阻,使抗原抗體在液相中呈三維立體反應(yīng),因此相較常規(guī)的酶標(biāo)板,可使反應(yīng)靈敏度得到提升。為了驗證在玉米樣品檢測中的適用性,本研究對添加回收率進行測定,結(jié)果在76.4%~110.6%之間。綜上所述,本研究成功建立了一種檢測玉米中FB1的基于磁微粒的ELISA方法。
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Development of a Magnetic Particle-Based Enzyme-Linked Immunosorbent Assay for Determining Fumonisin B1in Corn
GUAN Di1,2,3, PAN Can-ping3, WANG Wen1,2, WU Hui-juan1,2,*
(1. Beijing Centre for Physical and Chemical Analysis, Beijing 100089, China; 2. Beijing Engineering Research Center of Food Safety Analysis, Beijing 100089, China; 3. College of Science, China Agricultural University, Beijing 100094, China)
Magnetic particles (MPs) were used as the support to replace enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) plates for the determination of fumonisin B1(FB1) in corn. Goat anti-rabbit antibody and protein A-MP conjugates were utilized in a direct competitive ELISA format. Under optimized conditions, the limits of detection (LOD) for goat anti-rabbit antibody and protein A-MPs were 0.024 and 0.030 μg/mL, respectively. The goat anti-rabbit antibody MP conjugates exhibited a lower LOD which was only one third of that of conventional ELISA. The recoveries from spiked corn varied from 76.4% to 110.6%, with relative standard deviation (RSD) less than 11%. Overall, a sensitive and stable method for FB1has been developed in this paper.
magnetic particles; enzyme-linked immunosorbent assay; fumonisins; corn; protein A
TS207.4
A
1002-6630(2014)08-0208-04
10.7506/spkx1002-6630-201408041
2013-08-13
北京市市級財政項目(PXM2013_178305_000002)
管笛(1983—),男,助理研究員,博士,研究方向為食品安全與檢測技術(shù)。E-mail:guandi@yeah.net
*通信作者:武會娟(1972—),女,副研究員,博士,研究方向為食品安全與檢測技術(shù)。E-mail:sunnywhj@126.com