周贊虎，張海艷，鄭俊超，江喆敏，陳春香，何藝貞，林俊君，蘇雪勤，王根芳，鄭天凌*

（1.廈門大學生命科學學院，濱海濕地生態(tài)系統(tǒng)教育部重點實驗室，福建 廈門 361005；2.漳州出入境檢驗檢疫局，福建 漳州 363000；3.漳州衛(wèi)生職業(yè)學院，福建 漳州 363000）

環(huán)介導等溫擴增技術(shù)檢測食品中酸土環(huán)脂芽孢桿菌

周贊虎1,2，張海艷3，鄭俊超2，江喆敏2，陳春香2，何藝貞2，林俊君2，蘇雪勤2，王根芳2，鄭天凌1,*

（1.廈門大學生命科學學院，濱海濕地生態(tài)系統(tǒng)教育部重點實驗室，福建 廈門 361005；2.漳州出入境檢驗檢疫局，福建 漳州 363000；3.漳州衛(wèi)生職業(yè)學院，福建 漳州 363000）

目的：利用環(huán)介導等溫擴增技術(shù)建立食品中酸土環(huán)脂芽孢桿菌快速檢測方法。方法：針對酸土環(huán)脂芽孢桿菌16S序列設(shè)計特異引物，再優(yōu)選反應(yīng)體系，用顯色法檢測實驗結(jié)果。結(jié)果：該方法能夠在63 ℃條件下1 h內(nèi)檢出食品中酸土環(huán)脂芽孢桿菌，所設(shè)計的引物有良好的特異性；靈敏度達6.7 CFU/mL（弱陽性）。結(jié)論：該方法具有高效、特異性強和敏感性高等特點，可滿足酸土環(huán)脂芽孢桿菌快速檢測篩選的要求。

環(huán)介導等溫擴增；酸土環(huán)脂芽孢桿菌；食品

酸土環(huán)脂芽孢桿菌（Alicyclobacillus acidoterrestris）[1]是一種嗜熱、嗜酸、好氧的桿菌，是耐熱菌（thermoacidophilic bacteria，TAB）中污染果汁的主要菌種，其芽孢能經(jīng)受酸性果汁加工中的巴氏殺菌而存活，在適宜的溫度條件下可大量繁殖，可以引起巴氏滅菌果汁的腐敗，產(chǎn)生難以接受的氣味，在這種腐敗初期，產(chǎn)品并不出現(xiàn)明顯的漲包或酸敗，但該菌代謝產(chǎn)物在極低濃度就會使果汁口感風味變劣，產(chǎn)生濁度升高乃至形成白色沉淀等質(zhì)量危害。耐熱菌超標是濃縮果汁產(chǎn)品最為嚴重的質(zhì)量問題之一。近年來，我國濃縮蘋果汁行業(yè)取得了突飛猛進的進步，2010年我國已經(jīng)成為世界蘋果濃縮汁的生產(chǎn)出口第一大國。2013年1—12月我國出口濃縮蘋果汁數(shù)量為59.79萬 t，金額為8.98億 美元，出口金額比2010年同比增長50.90%[2]。目前國際貿(mào)易中對果汁中耐熱菌有嚴格要求，是蘋果濃縮汁的必檢項目，也是當前中國蘋果濃縮汁出口中所遭遇的主要技術(shù)壁壘之一和蘋果濃縮汁生產(chǎn)中急待解決的問題。

目前檢測酸土環(huán)脂芽孢桿菌方法[3]主要有傳統(tǒng)的微生物培養(yǎng)生理生化檢測法和分子生物學聚合酶鏈式反應(yīng)（polymerase chain reaction，PCR）法，傳統(tǒng)的微生物培養(yǎng)檢測法耗時耗力，整個檢測周期需耗費7～10 d；PCR法則需要昂貴的PCR儀和有分子生物學檢測技術(shù)的檢測人員，基層微生物檢測試驗室較難滿足條件。目前國內(nèi)尚未檢索到用環(huán)介導等溫擴增技術(shù)檢測酸土環(huán)脂芽孢桿菌的報道。

環(huán)介導等溫擴增技術(shù)（loop-mediated isothermal amplification，LAMP）是Notomi等[4]建立的一種新的核酸擴增方法，其原理是針對靶基因的6 個特異區(qū)域，設(shè)計4 條特異性引物（分別為上游外引物（F3）、下游外引物（B3）、上游內(nèi)引物（FIP）和下游內(nèi)引物（BIP）及具有鏈置換活性的Bst DNA聚合酶，在恒溫條件下特異、高效、快速地擴增DNA，在l h內(nèi)能達到109靶序列拷貝，通過觀察副產(chǎn)物焦磷酸鎂沉淀的濁度或者熒光染料亮度即可判斷反應(yīng)是否發(fā)生。因其不需要昂貴的儀器，在水浴鍋里保持恒溫，60 min內(nèi)即可高效擴增目的DNA上億倍，且可以通過目測判斷結(jié)果，所以適合在基層應(yīng)用和推廣，用于大量樣品的快速檢測和篩選。

本研究旨在建立一種快速、準確檢測食品中酸土環(huán)脂芽孢桿菌的方法并進行實際應(yīng)用，以滿足進出口水果濃縮汁快速檢測的需要，旨在為實現(xiàn)與國際檢測技術(shù)接軌提供更多的參考。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌株

酸土環(huán)脂芽孢桿菌（Alicyclobacillus acidoterrestris，ATCC 49025）、大腸埃希氏菌（Escherichia coli，ATCC 8739）、鼠傷寒沙門氏菌（Salmonella typhimurium，CMCC(B) 50115）、痢疾志賀氏菌（Shigella dysenteriae，CMCC 51528（5））、單核細胞增生李斯特氏菌（Listeria monocytogenes，CMCC(B) 54002）、金黃色葡萄球菌（Staphylococcus aureus，ATCC 6538）、綠膿桿菌（Pseudomonas aeruginosa，CMCC(B) 10104）中國食品藥品檢定研究院；枯草芽孢桿菌（Bacillus subtilis，CICC10012）、蘇云金芽孢桿菌（Bacillus thuringiensis，CICC10322）、巨大芽孢桿菌（Bacillus megaterium，CICC10448）和蠟樣芽孢桿菌（Bacillus Cereus，CICC20551） 中國工業(yè)微生物菌種保藏管理中心。

1.1.2 試劑與儀器

甜菜堿 美國Sigma公司；dNTPs、SYBR Green Ⅰ染料 上海生工生物工程有限公司；Bst DNA聚合酶大片段 美國NEB公司；其他試劑均為分析純級。

TGRADIENT 96梯度PCR儀 德國Biometra公司；FIREREADER凝膠成像儀 英國UVItec公司；600水浴鍋 江蘇省金壇市江南儀器廠；LAMP反應(yīng)管 廣州華峰生物科技有限公司。

1.1.3 引物

根據(jù)GenBank中酸土環(huán)脂芽孢桿菌16S序列，設(shè)計了4條特異性引物，即F3、B3、FIP和BIP，其序列依次為：

F3：5’-CGGCGCATTAGCTAGTTGG-3’

B3：5’-ACTCTCCTTGTCGCTCTCC-3’

FIP：5’-TGTCTCAGTCCCAGTGTGGCCGAGGTAACGGCTCACCAAG-3’

BIP：5’-TAGGGAATCTTCCGCAATGGGCAGAGCTTTACAACCCGAAGG-3’

以上引物均委托上海生工生物工程技術(shù)公司合成。

1.1.4 培養(yǎng)基與果汁樣品

YSG液體培養(yǎng)基（酵母膏2 g、葡萄糖1 g、可溶性淀粉2 g，溶于1 L蒸餾水中，用1 mol/L鹽酸調(diào)節(jié)pH（3.7±0.1），121 ℃滅菌15 min）；蘋果汁、橙汁和菠蘿汁均為福建綠泉食品有限公司產(chǎn)品。

1.2 方法

1.2.1 細菌DNA的提取

取酸土環(huán)脂芽孢桿菌菌液1 mL加到1.5 mL無菌離心管中，10 000×g離心2 min，盡量吸棄上清液；加入100 μL TE-Trinton，混勻后沸水浴10 min；12 000×g離心2 min，上清液即為模板DNA，-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.2 LAMP反應(yīng)體系初建

根據(jù)文獻[5]，初步設(shè)定LAMP反應(yīng)體系：內(nèi)外引物比為8∶1，F(xiàn)IP和BIP各1.6 ?mol/L，F(xiàn)3和B3各0.2 ?mol/L，dNTP Mixture 1.6 mmol/L，ThermoPol緩沖液1×，甜菜堿0.8 mol/L，MgSO48 mmol/L，DNA模板2 ?L，8 U Bst DNA聚合酶0.5 ?L，加雙蒸水至25 ?L。反應(yīng)混合物先在95 ℃加熱5 min使DNA解鏈，放在冰上冷卻5 min后加8 U Bst DNA 聚合酶大片段，然后在63 ℃孵育60 min，最后在80 ℃、10 min終止反應(yīng)。反應(yīng)完成后，加入1000×SYBR Green Ⅰ 2 ?L，輕輕混勻并在白色背景下觀察。實驗3 個重復，同時做空白對照。

1.2.3 LAMP反應(yīng)體系優(yōu)化

反應(yīng)體系（25 ?L）分別進行酶添加量、反應(yīng)時間、反應(yīng)溫度和引物濃度優(yōu)化，每組反應(yīng)進行3 個重復。酶添加量分別為4、8、12、16、20 U；反應(yīng)時間分別設(shè)為30、45、60、75、90 min；反應(yīng)溫度分別設(shè)為60、61、62、63、64、65 ℃；引物濃度設(shè)置：根據(jù)LAMP文獻[5]等多個LAMP研究，LAMP內(nèi)外引物比在8∶1反應(yīng)效果較好，設(shè)定內(nèi)外引物比為8∶1，然后分別設(shè)定外引物的終濃度為0.4、0.8、1.2、1.6、2.0 μmol/L，同時根據(jù)8∶1的比例添加相應(yīng)的內(nèi)引物進行實驗。

1.2.4 特異性實驗

用食品中常見致病菌大腸桿菌、沙門氏菌、痢疾志賀氏菌、單增李斯特氏菌、金黃色葡萄球菌、綠膿桿菌進行驗證；同時選取果汁中常見的枯草芽孢桿菌、蘇云金芽孢桿菌、巨大芽孢桿菌和蠟樣芽孢桿菌進行特異性驗證。提取以上各種菌基因組DNA，用1.2.2節(jié)方法進行檢測，驗證該方法檢測酸土環(huán)脂芽孢桿菌的種屬特異性。

1.2.5 敏感性實驗

將酸土環(huán)脂芽孢桿菌標準菌株經(jīng)YSG液體培養(yǎng)基，過夜培養(yǎng)后，增菌液以10 倍遞增稀釋至106倍，每一稀釋倍數(shù)菌懸液分別取1 mL，進行菌落計數(shù)，每組設(shè)3 個重復；然后再分別取上述每個稀釋度菌懸液1 mL提取其DNA，同時用雙蒸水為空白對照，依據(jù)1.2.2節(jié)方法進行檢測，確定該方法的檢出限。

1.2.6 食品樣品檢測

取經(jīng)PCR檢測酸土環(huán)脂芽孢桿菌陰性的蘋果汁、橙汁和菠蘿汁各100 mL，分裝入3 根無菌的試管，并分別接入濁度0.6的酸土環(huán)脂芽孢桿菌液10 μL，混勻后45 ℃培養(yǎng)48 h；同時另取相應(yīng)酸土環(huán)脂芽孢桿菌陰性的果汁在45 ℃培養(yǎng)48 h作為陰性對照；各取1 mL用1.2.1節(jié)方法提取DNA，按酸土環(huán)脂芽孢桿菌LAMP檢測優(yōu)選方案進行LAMP擴增檢測。

2 結(jié)果與分析

2.1 酸土環(huán)脂芽孢桿菌LAMP反應(yīng)初建體系實驗

酸土環(huán)脂芽孢桿菌反應(yīng)管3個重復實驗結(jié)果均為特異性綠色，空白對照為橙色。陽性結(jié)果跟空白對照結(jié)果如圖1所示。

圖1 酸土環(huán)脂芽孢桿菌LAMP檢測結(jié)果Fig.1 LAMP results of A. acidoterrestris

2.2 反應(yīng)體系優(yōu)化實驗結(jié)果

反應(yīng)溫度60、61、62、63、64、65 ℃均能擴增目的產(chǎn)物顯綠色，各管顏色沒明顯差異；3 組重復性實驗沒有差異。25 ?L反應(yīng)體系酶添加量分別為4、8、12、16、20 U，均能擴增目的產(chǎn)物顯色，各管顏色沒明顯差異；3 組重復性實驗沒有差異。

圖2 反應(yīng)時間對LAMP的影響Fig.2 Effect of reaction time on the LAMP

由圖2可知，反應(yīng)30 min時實驗結(jié)果有轉(zhuǎn)綠，但綠色比較淺（弱陽性），反應(yīng)45 min以后各管顏色均顯示綠色且沒明顯差異；3 組重復性實驗沒有明顯的組間差異。

圖3 引物濃度對LAMP的影響Fig.3 Effect of primer concentrations on the LAMP

由圖3可見，引物終濃度為0.4 μmol/L顯示為陰性，0.8 μmol/L為弱陽性，1.2 μmol/L及以上的濃度為陽性；3 組重復性實驗沒有明顯的組間差異。

通過對各個反應(yīng)條件進行實驗，在反應(yīng)體系體積為25μL的條件下，反應(yīng)體系的優(yōu)選方案為：外引物1、2各0.15 μmol/L；內(nèi)引物1、2各1.2 μmol/L；Bst DNA聚合酶，0.16 U/μL；DNA模板，2.0 μL。63 ℃擴增60 min后，每個反應(yīng)管中加入1 000×SYBR Green Ⅰ 2 ?L，輕輕混勻并在白色背景下觀察。

2.3 特異性實驗

圖4 酸土環(huán)脂芽孢桿菌特異性實驗結(jié)果Fig.4 Specificity of the LAMP method for A. acidoterrestris

由圖4可見，只有酸土環(huán)脂芽孢桿菌反應(yīng)管為特異性綠色，其余均為橙色。3 組重復性實驗沒有出現(xiàn)明顯的組間差異，說明該反應(yīng)體系特異性好。

2.4 靈敏度實驗

對酸土環(huán)脂芽孢桿菌各個稀釋度的菌懸液進行檢測后，結(jié)果如圖5所示，稀釋度為100～105倍時，反應(yīng)管均顯示綠色，106稀釋度為淺綠色，空白對照管為橙色。實驗重復了3組，3組實驗結(jié)果沒有大的差異，最后根據(jù)菌落計數(shù)結(jié)果取3 組數(shù)據(jù)的平均值， 105稀釋度細菌濃度對應(yīng)的平皿菌落計數(shù)平均值為58 CFU/mL（具體數(shù)值分別為60、64、50 CFU/mL），106稀釋度細菌濃度為6.7 CFU/mL（具體數(shù)值分別為5、7、8 CFU/mL）；可以判斷，本研究建立的酸土環(huán)脂芽孢桿菌方法的最低檢出限可達到10 CFU/mL以內(nèi)，但綠色較淺，肉眼判斷有一定的誤判可能；在細菌濃度升高一個數(shù)量級后（平均值為58 CFU/mL）以后則顯示明顯的強陽性。

圖5 酸土環(huán)脂芽孢桿菌LAMP 檢測靈敏度結(jié)果Fig.5 Sensitivity of the LAMP method for A. acidoterrestris

2.5 食品樣品檢測結(jié)果

在添加酸土環(huán)脂芽孢桿菌的蘋果汁、橙汁和菠蘿汁均檢測出酸土環(huán)脂芽孢桿菌陽性，而未添加酸土環(huán)脂芽孢桿菌的果汁則為酸土環(huán)脂芽孢桿菌陰性，證明本檢測方法能夠從食品中檢出酸土環(huán)脂芽孢桿菌，結(jié)果見圖6。實驗重復3 次，結(jié)果一致。

圖6 加標果汁樣品LAMP檢測結(jié)果Fig.6 Results obtained for the detection of spiked juice samples by the LMAP method

2.6 LAMP 專用反應(yīng)管

圖7 LAMP 專用反應(yīng)管Fig.7 Special reaction tube of LAMP

LAMP法由于產(chǎn)物濃度高，后續(xù)染色的時候容易產(chǎn)生污染，導致后續(xù)實驗產(chǎn)生假陽性，本研究采用特制的LAMP反應(yīng)管，如圖6所示，在普通的離心管中加設(shè)一隔板2，將離心管分隔成小腔1和大腔3，大腔作為反應(yīng)室，小腔中作為染料室，反應(yīng)結(jié)束后，只需上下顛倒反應(yīng)管即可染色，不需開蓋，降低了污染概率。

3 討論與結(jié)論

酸土環(huán)脂芽孢桿菌作為污染果汁的主要菌種受到人們的廣泛關(guān)注。目前對于酸土環(huán)脂芽孢桿菌的檢測手段仍停留在傳統(tǒng)的分離培養(yǎng)和后續(xù)的生理生化鑒定上。傳統(tǒng)的方法不但操作繁瑣，而且檢測周期很長。PCR技術(shù)是目前一種微生物常用的快速檢測方法，有熒光定量PCR法[6-9]和普通PCR法[10-11]，但其檢測過程需要PCR儀、電泳儀和凝膠成像系統(tǒng)等貴重儀器，且對操作人員技術(shù)水平要求較高，這些問題造成PCR技術(shù)難以在基層推廣。LAMP彌補了PCR技術(shù)的不足，不需要貴重儀器，操作簡便，反應(yīng)時間短，適合推廣；目前很多研究已經(jīng)采用LAMP檢測，如病原菌檢測[12-16]、病毒檢測[17-21]、寄生蟲檢測[22-24]、轉(zhuǎn)基因檢測[25]等。常見的LAMP產(chǎn)物的檢測方法有濁度法、顯色法、熒光法和凝膠電泳法；濁度法分辨率較低，熒光法和凝膠電泳法則需要相關(guān)設(shè)備，本研究采用方便性和靈敏度俱佳的顯色法檢測，在菌液濃度60 CFU/mL具有強陽性，與Connor等[26]的實時熒光定量PCR法的靈敏度相當。研究中采用煮沸法提取模板DNA，并用其進行LAMP擴增，結(jié)果均能檢測出目的菌，在保證方法特異性的前提下能達到方便、快速的目的。用該方法對食品中常見的致病菌做特異性檢驗，均未出現(xiàn)假陽性結(jié)果，顯示了良好的特異性。LAMP法由于產(chǎn)物濃度高，后續(xù)染色的時候容易產(chǎn)生污染，導致后續(xù)的實驗產(chǎn)生假陽性，本研究采用特制的LAMP反應(yīng)管，不需開蓋即可染色，降低的終產(chǎn)物污染的概率。

綜上所述，本研究建立的酸土環(huán)脂芽孢桿菌LAMP檢測方法，具有特異性強，靈敏度高，方便、快捷，成本低等特點，適用于食品中酸土環(huán)脂芽孢桿菌的快速檢測。

[1] 胡貽椿, 岳出利, 袁亞宏, 等. 果汁中脂環(huán)酸芽孢桿菌(Alicyclobacillus spp.)的危害及其控制[J]. 食品科學, 2008, 29(1): 364-368.

[2] 國果. 2014濃縮蘋果汁產(chǎn)業(yè)分析[J]. 農(nóng)產(chǎn)品加工: 上, 2014(6): 20-21.

[3] 孔德義, 董佳, 白小瓊. 脂環(huán)酸芽孢桿菌的研究進展[J]. 糧食與食品工業(yè), 2011, 18(2): 39-42.

[4] NOTOMI T, OKAYAMA H, MASUBUCHI H, et al. Loop-mediated isothermal amplification of DNA[J]. Nucleic Acids Research, 2000, 28 (12): 63-69.

[5] 史亞東, 董海聚, 王榮軍, 等. 微小隱孢子蟲LAMP檢測方法的探索[J].中國人獸共患病學報, 2012, 28(12): 1195-1201.

[6] 姜雪, 高玉偉, 胡桂學, 等. 貓杯狀病毒熒光定量PCR檢測方法的建立及初步應(yīng)用[J]. 吉林大學學報: 理學版, 2013, 51(5): 973-977.

[7] 陳峰, 吳爾翔, 丁鎖順, 等. 二聚體蝎型探針熒光定量PCR快速檢測志賀菌方法的建立及初步應(yīng)用[J]. 中國人獸共患病學報, 2013, 29(9): 886-890.

[8] SABRINA M, KELTHOUM M, STOYKA C, et al. Development of a rapid real-time PCR method as a tool to quantify viable photobacterium phosphoreum bacteria in Salmon (Salmo salar) steaks[J]. Applied and Environmental Microbioly, 2013, 79(8): 2612-2619.

[9] EIJI H, MASAAKI K, HIROYUKI K, et al. Real-time PCR detection of adenoviruses, polyomaviruses, and torque teno viruses in river water in Japan[J]. Water Research, 2010, 44(6): 1747-1752.

[10] 耿偉光, 史成銀, 李晉, 等. 同步檢測海水養(yǎng)殖動物5種病原菌的擴增子拯救多重PCR(Arm-PCR)方法的建立與應(yīng)用[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學報, 2013, 21(9): 1125-1134.

[11] 李宏, 吳海武, 孟凡同, 等. 基于gyrB基因的地衣芽孢桿菌PCR快速檢測方法的建立[J]. 海南大學學報: 自然科學版, 2013, 31(3): 230-233; 239.

[12] 董培培, 李長紅, 丁文超, 等. 環(huán)介導等溫擴增技術(shù)與橫向流動試紙條法快速檢測鰻利斯頓氏菌的研究[J]. 水產(chǎn)科學, 2011, 30(2): 63-68.

[13] 張宏偉, 張霞, 侯麗萍, 等. 環(huán)介導等溫擴增技術(shù)檢測乳粉中肺炎克雷伯菌[J]. 南開大學學報: 自然科學版, 2011, 44(2): 38-43.

[14] PéREZ-SANCHO M, GARC?A-SECO T, ARROGANTE L, et al. Development and evaluation of an IS711-based loop mediated isothermal amplifi cation method (LAMP) for detection of Brucella spp. on clinical samples[J]. Research in Veterinary Science, 2013, 95(2): 489-494.

[15] KEVIN W, MONALISA K, TOBIAS M. Evaluation of colorimetric detection methods for Shigella, Salmonella, and Vibrio cholerae by loop-mediated isothermal amplification[J]. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease, 2013, 77(4): 321-323.

[16] LUO J, VOGEL R F, NIESSEN L. Development and application of a loop-mediated isothermal amplifi cation assay for rapid identification of aflatoxigenic molds and their detection in food samples[J]. International Journal of Food Microbiology, 2012, 159(3): 214-224.

[17] PARK J, JUNG Y, KIL E J, et al. Loop-mediated isothermal amplification for the rapid detection of Chrysanthemum chlorotic mottle viroid (CChMVd)[J]. Journal of Virological Methods, 2013, 193(1): 232-237.

[18] SHIRO F, MASARU T, HIDEKAZU M, et al. Differential detection of Wheat yellow mosaic virus, Japanese soil-borne wheat mosaic virus and Chinese wheat mosaic virus by reverse transcription loopmediated isothermal amplifi cation reaction[J]. Journal of Virological Methods, 2013, 18(2): 348-354.

[19] ARUNRUT N, KAMPEERA J, SUEBSING R, et al. Rapid and sensitive detection of shrimp infectious myonecrosis virus using a reverse transcription loop-mediated isothermal amplification and visual colorogenic nanogold hybridization probe assay[J]. Journal of Virological Methods, 2013, 193(2): 542-547.

[20] DENG X, QI X, GAO Y, et al. Development of a loopmediated isothermal amplification method for rapid detection of reticuloendotheliosis virus[J]. Journal of Virological Methods, 2010, 168(1): 82-86.

[21] BHAT A I, SILJO A, DEESHMA K P. Rapid detection of Piper yellow mottle virus and cucumber mosaic virus infecting black pepper (Piper nigrum) by loop-mediated isothermal amplifi cation (LAMP)[J]. Journal of Virological Methods, 2013, 193(1): 190-196.

[22] CHEN J H, LU F, LIM C S, et al. Detection of Plasmodium vivax infection in the Republic of Korea by loop-mediated isothermal amplifi cation (LAMP)[J]. Acta Tropica, 2010, 113(1): 61-65.

[23] LIU A, GUAN G, DU P, et al. Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) method based on two species-specific primer sets for the rapid identification of Chinese Babesia bovis and B. bigemina[J]. Parasitology International, 2012, 61(4): 658-663.

[24] WANG L X, HE L, FANG R, et al. Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) assay for detection ofTheileria sergenti infection targeting the p33 gene[J]. Veterinary Parasitology, 2010, 171(1): 159-162.

[25] 閆興華, 許文濤, 商穎, 等. 環(huán)介導等溫擴增技術(shù)(LAMP)快速檢測轉(zhuǎn)基因玉米LY038[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學報, 2013, 21(5): 621-626.

[26] CONNOR C J, LUO H L, GARDENER B B, et al. Development of a real-time PCR-based system targeting the 16S rRNA gene sequence for rapid detection of Alicyclobacillus spp. in juice products[J]. International Journal of Food Microbiology, 2005, 99: 229-235.

Loop-Mediated Isothermal Amplification (LAMP) for Detection of Alicyclobacillus acidoterrestris in Foods

ZHOU Zan-hu1,2, ZHANG Hai-yan3, ZHENG Jun-chao2, JIANG Zhe-min2, CHEN Chun-xiang2, HE Yi-zhen2, LIN Jun-jun2, SU Xue-qin2, WANG Gen-fang2, ZHENG Tian-ling1,*
(1. Key Laboratory of Coastal and Wetland Ecosystems, Ministry of Education, School of Life Sciences, Xiamen University, Xiamen 361005, China; 2. Zhangzhou Entry-Exit Inspection and Quarantine Bureau, Zhangzhou 363000, China; 3. College of Zhangzhou Health Vocational, Zhangzhou 363000, China)

Purpose: A loop-mediated isothermal amplification (LAMP) method was established for the detection of Alicyclobacillus acidoterrestris in foods. Methods: After optimization of the reaction conditions of LAMP including the concentrations of primers, reaction time and amplification temperature, the LAMP method was developed, and its sensitivity and specificity were evaluated. Results: The method was capable of rapidly and specifically detecting A. acidoterrestris in foods within 1 hour at a constant temperature of 63 ℃. The sensitivity of the method was 6.7 CFU/mL and the specificity was 100%. Conclusions: The LAMP method is efficient, highly sensitive and specific, and suitable for the rapid detection of A. acidoterrestris in various food samples.

loop-mediated isothermal amplification (LAMP); Alicyclobacillus acidoterrestris; food

S182

A

1002-6630（2014）22-0233-05

10.7506/spkx1002-6630-201422045

2014-01-07

福建省漳州市自然科學基金項目（ZZ2012J16）

周贊虎（1973—），男，高級工程師，博士，研究方向為微生物與分子生物學。E-mail：24345460@qq.com

*通信作者：鄭天凌（1955—），男，教授，博士，研究方向為海洋微生物生態(tài)學。E-mail：24345460@qq.com