余盼攀，張啟瑜，金慧成

（1.杭州市第一人民醫(yī)院 普外科，浙江 杭州 310000；2.溫州醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院 普外科，浙江溫州 325015）

白細胞介素17對大鼠肝星狀細胞膠原代謝的影響

余盼攀1，張啟瑜2，金慧成1

（1.杭州市第一人民醫(yī)院 普外科，浙江 杭州 310000；2.溫州醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院 普外科，浙江溫州 325015）

目的：探討白細胞介素17（IL-17）對大鼠肝星狀細胞（HSCs）增殖及基質金屬蛋白酶-9（MMP-9）和基質金屬蛋白酶組織抑制劑-1（TIMP-1）表達的影響及其與肝纖維化的關系。方法：采用Optiprep密度梯度離心法分離HSCs并進行鑒定、傳代。采用免疫細胞化學法檢測IL-17作用HSCs 72 h后α肌動蛋白（α-SMA）表達的影響。采用MTT法檢測IL-17作用HSCs 24、48和72 h后細胞的增殖情況。采用RT-PCR法和ELISA法分別檢測IL-17作用HSCs后MMP-9、TIMP-1 mRNA和蛋白表達的影響。結果：成功分離并培養(yǎng)HSCs，一定濃度的IL-17能促進HSCs α-SMA的表達并且促進HSCs增殖。IL-17能提高HSCs MMP-9和TIMP-1 mRNA和蛋白的分泌，呈濃度依賴性，且TIMP-1/MMP-9比值隨IL-17濃度增加而遞增。結論：IL-17不僅促進HSCs增殖，還能促進α-SMA、MMP-9和TIMP-1的表達，同時提高TIMP-1與MMP-9的比值，可能在肝纖維化中扮演重要角色。

白細胞介素17；肝星狀細胞；α肌白蛋白；基質金屬蛋白酶-9；基質金屬蛋白酶組織抑制劑-1；大鼠

肝星狀細胞（hepatic stellate cells，HSCs）主要位于肝竇周圍間隙內，在生理情況下參與體內維生素A的代謝。HSCs的活化、增殖、凋亡及分泌細胞外基質（extracellular matrixc，ECM）與肝纖維化的關系目前已經(jīng)形成共識[1]。ECM的動態(tài)平衡主要由基質金屬蛋白酶（MMPs）及其抑制因子（TIMPs）調節(jié)。而白細胞介素（IL-17）是由新型Th17細胞分泌的一種炎癥因子，是介導炎癥反應的主要細胞因子之一。研究顯示，IL-17與多種肝臟疾病的發(fā)生發(fā)展存在密切關系[2-5]，但具體機制尚不清楚。本研究旨在觀察IL-17對HSCs的增殖及膠原代謝的影響，進一步闡述IL-17與肝纖維化的關系。

1 材料和方法

1.1 材料

1.1.1 實驗動物：健康成年雄性SD大鼠10只（溫州醫(yī)科大學動物實驗中心提供），無特定病原菌級，體質量200～250 g，普通喂養(yǎng)，自由進食。

1.1.2 主要試劑：IV型膠原酶、DNA酶I均購自美國Sigma公司。Optiprep分離介質購自挪威Axisshield公司。大鼠α肌動蛋白（α-SMA）單克隆抗體、山羊抗小鼠IgG二抗購自武漢博士德公司。鼠源重組IL-17購自英國PeproTech公司。DMEM培養(yǎng)基和胎牛血清購自美國Gibco公司。四甲偶氮唑鹽（MTT）和二甲基亞砜（DMSO）購自Solarbio北京公司。大鼠MMP-9和TIMP-1 ELISA試劑盒購自美國R&D公司。反轉錄試劑盒和Trizol試劑盒均購自美國invitrogen公司。大鼠MMP-9和TIMP-1和內參GAPDH PCR引物由上海捷瑞生物工程有限公司合成。

1.1.3 主要儀器：超凈工作臺（蘇州凈化），PCR儀（德國Biometra公司），紫外分光光度計（美國Beckman公司），相差顯微鏡（日本Olympus公司），高速離心機（美國Beckman公司），CO2培養(yǎng)箱（SANYO公司），恒溫水浴箱（丹麥Heto公司），熒光顯微鏡（日本Olympus公司）。

1.2 方法

1.2.1 細胞分離及分組：采用改良的Optiprep密度梯度法[6]分離大鼠HSCs。將細胞以5×105/mL接種于25 mL培養(yǎng)瓶中，于37 ℃，5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，24 h后首次換液去除未貼壁的細胞。以后每2～3 d換液1次，待細胞長滿瓶底時0.25%胰酶消化傳代。將細胞分為5個處理組：對照組、1 ng/mL IL-17組、10 ng/mL IL-17組、100 ng/mL IL-17組、500 ng/ mL IL-17組。

1.2.2 免疫細胞化學法檢測HSCs、α-SMA表達：將對數(shù)生長期的HSCs以每孔3×104/mL接種入6孔板中進行細胞爬片，并加入IL-l7（100 ng/mL）進行處理，對照組加入等量0.9%氯化鈉溶液，培養(yǎng)72 h后取出進行染色，PBS沖洗3次后4%多聚甲醛固定15 min，3% Triton X-100透膜30 min，封閉，滴加一抗（4 ℃過夜），PBS沖洗，滴加二抗孵育30 min，DAB試劑盒進行顯色，蘇木素染色2 min，依次在75%、85%、95%、100%乙醇中脫水，封片觀察。

1.2.3 MTT法檢測細胞增殖情況：將對數(shù)生長期的HSCs以每孔3×103/mL細胞接種入96孔板中，培養(yǎng)24 h，換無血清的DMEN饑餓過夜使細胞同步化。按照上述分組進行處理，每組設6個復孔。于37 ℃、5% CO2條件下繼續(xù)培養(yǎng)24、48和72 h后棄上清，每孔加入濃度為5 mg/mL的MTT 20μL，37 ℃作用4 h后棄作用液，各孔加入DMSO 150μL，震蕩10 min，使結晶充分溶解，全自動酶標儀于490 nm波長檢測各孔吸光度（OD）。

1.2.4 RT-PCR法檢測細胞MMP-9和TIMP-1mRNA表達水平：取對數(shù)生長期HSCs，按1×105/mL細胞接種于六孔板內培養(yǎng)，按照上述分組處理，培養(yǎng)24 h后收集細胞用于總RNA提取，RNA提取采用Trizol法。取等量的RNA按照反轉錄試劑盒說明書進行反轉錄。對反轉錄的cDNA進行PCR擴增：引物序列GAPDH引物上游5’-GTGCGATGGCGTGCTATG-3’，下游5’-GGGTGG TCCAGGGTTTCTTA-3’，片段長度280 bp；TIMP-1引物上游5’-TCCTCTTGTTGCTATCATTGATAGCTT-3’，下游5’-CGCTGGTATAAGGTGGTCTCGAT-3’，片段長度148 bp；MMP-9引物上游5’-CAGTGTAGGCGTGGGTCCAGTA-3’，下游5’-CCAAGAACTTCCGACTATCCAATGA-3’，片段長度110 bp。反應條件：95 ℃預變性5 min，95 ℃變性30 s，59 ℃退火30 s，72 ℃延伸30 s，循環(huán)30～35次。PCR產(chǎn)物用2%瓊脂糖凝膠電泳，利用Gel-Pro分析軟件分析條帶。

1.2.5 ELISA法檢測細胞培養(yǎng)上清MMP-9和TIMP-1蛋白量：HSCs以3×105/mL接種于24孔板中，待細胞貼壁并同步化后按上述分組處理細胞24 h終止培養(yǎng)，取細胞培養(yǎng)液離心去除沉淀，取上清，按照ELISA試劑盒說明書進行操作。每組設3個復孔，操作結束后將ELISA板置于酶標儀上450 nm波長下讀取各孔吸光度值，根據(jù)標準曲線計算出MMP-9和TIMP-1的含量。

1.3 統(tǒng)計學處理方法 應用SPSS17.0統(tǒng)計學軟件。數(shù)據(jù)用±s表示，多組間比較采用單因素方差分析（one-way ANOVA）。P＜0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

2 結果

2.1 HSCs的分離、培養(yǎng)及鑒定 采用Optiprep密度梯度離心法分離HSCs，平均細胞得率2×107個/肝。經(jīng)0.4%錐蟲藍染色，細胞存活率在90%以上。熒光顯微鏡下新分離的細胞自發(fā)淡藍色熒光，見圖1。相差顯微鏡下，新分離的HSCs呈圓形，具有很強的折光性，體積明顯小于肝細胞，培養(yǎng)至5 d左右細胞外觀呈現(xiàn)出明顯的梭形，胞漿內顆粒減少，細胞逐漸融合成片狀生長，見圖2。

圖1 新分離HSCs自發(fā)熒光（×400）圖2 相差顯微鏡下培養(yǎng)5 d的HSCs（×200）

2.2 IL-17促進HSCs α-SMA的表達 IL-17作用體外培養(yǎng)5 d的HSCs 72 h，免疫細胞化學染色法測定α-SMA在HSCs中表達情況，可見陽性染色的α-SMA位于胞質內，呈高張力纖維狀分布，IL-17（100 ng/ mL）處理組比空白對照組HSCs α-SMA的表達量明顯升高，差異有統(tǒng)計學意義（P＜0.01），結果見圖3。

2.3 IL-17促進HSCs增殖 MTT結果顯示，在一定時間和濃度下，IL-17具有促進HSCs增殖的作用。IL-17作用HSCs 24 h后，隨藥物濃度的增高，細胞的增殖有增高的趨勢，但各濃度組與對照組比差異均無統(tǒng)計學意義（P＞0.05）。當作用48、72 h，藥物濃度在10、100和500 ng/mL時，隨著作用時間的延長和藥物濃度的增加，增殖作用越顯著，各組與對照組比差異有統(tǒng)計學意義（P＜0.01）。IL-17作用HSCs 72 h，100 ng/mL與500 ng/mL組比差異無統(tǒng)計學意義（P＞0.05），說明在作用72 h后IL-17促HSCs增殖作用可能在100 ng/mL時基本達到飽和，見表1。

圖3 培養(yǎng)5 d HSCs α-SMA免疫染色（×400）

表1 不同濃度IL-17作用HSCs不同時間細胞增殖OD值（n=6，±s）

表1 不同濃度IL-17作用HSCs不同時間細胞增殖OD值（n=6，±s）

組別24 h48 h72 h 10.304±0.0280.367±0.0300.671±0.027 20.307±0.0270.372±0.0320.717±0.048 30.321±0.0130.411±0.024a0.765±0.037a40.324±0.0120.500±0.018a0.853±0.038a50.326±0.0290.524±0.017a0.871±0.046a注：1：對照組；2：1 ng/mL IL-17組；3：10 ng/mL IL-17組；4：100 ng/ mL IL-17組；5：500 ng/mL IL-17組。與對照組比：aP＜0.01

2.4 IL-17促進HSCs MMP-9和TIMP-1 mRNA表達RT-PCR結果顯示，IL-17作用于HSCs 24 h能明顯促進MMP-9和TIMP-1 mRNA表達，除1 ng/mL組外，其余各濃度組與對照組比差異均有統(tǒng)計學意義（P＜0.01），并且呈濃度依賴性。如圖4-5可知，TIMP-1 mRNA表達量明顯強于MMP-9 mRNA表達量，且TIMP-1/ MMP-9 mRNA比值隨濃度增加而遞增，差異有統(tǒng)計學意義（P＜0.05）。

圖4 不同濃度IL-17對HSCs MMP-9 mRNA表達的影響

圖5 不同濃度IL-17對HSCs TIMP-1 mRNA表達的影響

2.5 IL-17對HSCs分泌MMP-9和TIMP-1蛋白的影響如表2所示，IL-17能明顯促進HSCs MMP-9、TIMP-1蛋白的分泌，除1 ng/mL組外，其余各濃度組與對照組比均明顯增強，差異有統(tǒng)計學意義（P＜0.01），并且隨著作用濃度的提高，MMP-9和TIMP-1蛋白量也逐漸提高，呈濃度依賴性。下表可知TIMP-1蛋白含量明顯高于MMP-9，TIMP-1/MMP-9比值隨濃度增加而遞增，差異有統(tǒng)計學意義（P＜0.01）。見表2。

表2 不同濃度IL-17作用大鼠HSCs后MMP-9和TIMP-1蛋白水平（n=6，±s）

3 討論

肝纖維化是一個慢性的病理過程，是肝硬化的中間環(huán)節(jié)，是一種可逆的損傷-修復反應[7]。雖然多種因素能夠引起肝纖維化，但HSCs的激活、增殖及分泌ECM仍然是肝纖維化形成的重要過程[8]。HSCs被激活后，轉變?yōu)榧〕衫w維細胞并特異性表達α-SMA，說明α-SMA是HSCs活化的標志，也是提示肝纖維化嚴重程度的指標之一[9]。目前研究證實，多種細胞因子如轉化生長因子β（TGF-β）、血小板源性生長因子（PDGF）、腫瘤壞死因子（TNF）、IL-1、IL-6等都能經(jīng)過多種途徑促進HSCs的活化、增殖及膠原合成，從而引起肝纖維化[10]。MMPs是調節(jié)ECM動態(tài)平衡的重要酶系，TIMPs是一種能抑制MMPs功能的活性多肽[11]。在肝組織中MMPs和TIMPs主要由活化的HSCs產(chǎn)生。由于肝臟ECM代謝主要由MMPs和TIMPs共同調節(jié)，目前觀點認為MMPs和TIMPs的失衡也是肝纖維化形成的重要因素[12]。MMP-9是一種明膠酶B。有研究表明，在肝纖維化早期MMP-9的基因表達顯著增強，但在肝硬化期表達量則呈下降趨勢，說明MMP-9對肝硬化的發(fā)生發(fā)展具有雙重的調節(jié)作用。MMP-9不僅能降解異常沉積的ECM，還可降解由IV型膠原構成的肝臟正常的基底膜及正常的肝組織，從而破壞HSCs與ECM間的動態(tài)平衡，激活并促進HSCs增殖。TIMP-1則不僅能抑制降解異常ECM的MMPs的活性，而且還可以抑制酶原的激活使ECM降解減少，兩者共同促進肝纖維化的發(fā)生、發(fā)展。

IL-17細胞因子家族包括IL-17A、IL-17B、IL-17C、IL-17D、IL-17E（IL-25）和IL-17F。通常我們研究的IL-17為IL-17A。IL-17是一類由CD4+ T細胞亞型—Th17細胞分泌的前炎癥因子，其對中性粒細胞有強大的趨化作用，促進多種前炎癥因子（IL-6、IL-8、MCP-1等）釋放，在介導炎癥反應過程中發(fā)揮重要的作用[13]。研究表明，各種肝臟疾病患者血清IL-17水平較正常組顯著升高，說明IL-17在多種肝病的發(fā)生發(fā)展中起重要作用。但IL-17是否能通過促進HSCs活化、增殖及MMP-9和TIMP-1的表達從而促進肝纖維化的發(fā)生發(fā)展目前鮮有報道。

本實驗觀察到，IL-17在一定濃度能促進HSCs α-SMA的表達，說明IL-17能促進HSCs活化。10、100、500 ng/mL的IL-17作用HSCs 48、72 h具有明顯促進其增殖的作用，并且呈濃度-時間依賴性。同時，IL-17作用HSCs 24 h能顯著提高MMP-9和TIMP-1 mRNA表達和蛋白的分泌，IL-17濃度在10、100、500 ng/mL范圍時，隨著濃度的增高MMP-9和TIMP-1 mRNA和蛋白表達逐漸增高，各濃度組與對照組比差異均有統(tǒng)計學意義（P＜0.01）。另外我們觀察到，在一定濃度范圍內，TIMP-1/MMP-9的比值也隨藥物濃度的增加而增加。

綜上所述，IL-17在肝纖維化發(fā)生發(fā)展中的作用可能是：①激活HSCs，使之具有成纖維細胞活性；②促進HSCs的增殖，分泌更多的ECM；③提高HSCs MMP-9的表達，促進正常的基底膜的降解，破壞HSCs的微環(huán)境，從而促進HSCs的激活和遷移；④促進HSCs TIMP-1的表達，抑制MMPs（主要為MMP-1/MMP-13）的活性，抑制ECM的降解；⑤提高HSCs TIMP-1/ MMP-9的比值，破壞TIMPs/MMPs的平衡，使ECM代謝紊亂。

因此，通過抑制IL-17及其受體的表達、阻斷其信號轉導通路或許能夠為肝纖維的預防和治療提供新的思路。

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（本文編輯：吳健敏）

Objective:To investigate the effect of Interleukin17 (IL-17) on proliferation and expression of MMP-9, TIMP-1 in rat hepatic stellate cells in vitro.Methods:The HSCs were isolated by method of Optiprep. Immunocytochemical method was used to detect the α-SMA expression of HSCs. The HSCs was treated with different concentrations of IL-17 and the proliferation of HSCs was measured by MTT. The MMP-9 and TIMP-1 mRNA levels were detected by reverse-transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). While the MMP-9 and TIMP-1 protein were measured by ELISA.Results:HSCs were isolated and cultured successfully. Stimulated with IL-17 could signifcantly increase proliferation and α-SMA expression in HSCs. IL-17 could promote the MMP-9 and TIMP-1 mRNA expression and increased protein secresion in HSCs by dose depedent manner. With increased of IL-17 concentration, the value of TIMP-1/MMP-9 was markedly upregulated. Conclusion: IL-17 can promote the proliferation of HSCs and also increases α-SMA, MMP-9 and TIMP-1 expression, then upregulate the value of TIMP-1/MMP-9 in HSCs, which may play an important role in live fbrosis.

interleukin17; hepatic stellate cells; α-SMA; MMP-9; TIMP-1; rats

R657.3

A

1000-2138（2014）12-0868-05

2014-05-15

浙江省外科學重中之重學科基金資助項目（2008-255）。

余盼攀（1986-），男，浙江衢州人，住院醫(yī)師，醫(yī)學碩士。

Effect of interleukin17 on collagen metabolism in hepatic stellate cells

YU Panpan1, ZHANG Qiyu2, JIN Huicheng1. 1.Department of General Surgery, the First People's Hospital of Hangzhou, Hangzhou, 310000; 2.Department of General Surgery, the First Affliated Hospital of Wenzhou Medical University, Wenzhou, 325015