劉 迪,尚 華
(陜西工業(yè)職業(yè)技術學院化工與紡織學院,陜西 咸陽 721000)
膽固醇又稱膽甾醇,是一種環(huán)戊烷多氫菲的衍生物。膽固醇是動物體內最重要的固醇,通常是以游離狀態(tài)或酯化狀態(tài)的形式存在于動物組織中,是動物體維持正常生理活動所必需的[1-6]。從20世紀80年代初期開始,作為一種可能危害人體健康的食品組分——膽固醇,已逐漸成為國內外食品醫(yī)學界辯論的熱門話題。近年來,我國人民的膽固醇攝取量,由于動物性食物之攝食增加而逐年遞增。但是,人體內過多的膽固醇將引起高血脂,并進而引發(fā)動脈粥樣硬化、高血壓、冠心病等一系列心血管疾病,因此控制飲食膽固醇攝入是非常必要的。食品中膽固醇的檢測越來越引起重視,這就要求建立一種簡便、快速且重現(xiàn)性好的測定膽固醇方法。
目前,膽固醇的定量分析方法主要有比色法、酶法、分子發(fā)光法、溫度測定法、電化學方法、氣相色譜法和高效液相色譜法[7-12]。然而這些傳統(tǒng)的膽固醇檢測技術存在實際應用上的缺陷。例如,傳統(tǒng)的比色法由于操作手續(xù)繁雜,所需試劑多,造成了比色結果的偏差和計算結果的復雜化,且成本高,從而限定了該方法的廣泛使用。另一方面,酶法由于技術含量較高,特異性強,而其他方法又需要特殊的設備,所以都難于推廣使用。因此建立一種快速、準確、方便的測定方法是必要的。本研究利用銅納米團簇的過氧化酶活性,結合膽固醇被膽固醇氧化酶催化氧化產生的雙氧水,以愈創(chuàng)木酚作為顯色底物,建立一種基于銅納米團簇[13-16]的納米探針[17-19]比色檢測牛奶中膽固醇的方法,旨在建立一種測定牛奶中膽固醇的較簡單、易普及的納米技術分析方法。
牛奶 市售;牛血清蛋白、膽固醇、膽固醇氧化酶 美國Sigma公司;五水硫酸銅、愈創(chuàng)木酚、卵磷脂、腦磷脂、乳蛋白、葡萄糖、葉酸 阿拉丁試劑(上海)有限公司;VA、VD、VE、VC 廣州西隴化學試劑公司;無水乙醇、乙醚、石油醚均為分析純;實驗用水為18.25 MΩ超純水。
UV-2550型紫外-可見分光光度計 日本島津公司;F-4600型熒光分光光度計、HT7700型透射電子顯微鏡 日本Hitachi公司;CS110-4型真空冷凍干燥機丹麥Labogene公司;實驗室純水機 越純科技(廣東)有限公司。
1.3.1 銅納米團簇合成
銅納米簇合成采用已有文獻[20]報道的方法,將1 mL CuSO4·5H2O水溶液(20 mmol/L)加入到5 mL牛血清蛋白(albumin from bovine serum,BSA)溶液(15 mg/mL)。該溶液在室溫條件下攪拌2~3 min,然后添加NaOH溶液,使得反應環(huán)境的pH值為12。此時,在2~5 min時間范圍內,溶液的顏色由藍色變?yōu)樽仙?。然后,?5 ℃恒溫條件下,將所得混合物繼續(xù)劇烈攪拌6~8 h,觀察此時顏色變?yōu)榈厣礊榻K止反應時間點。最后,將淡棕色溶液用3 000 u的透析袋透析48 h,以達到出去溶液中多余的Cu2+,得到實驗所用的銅納米團簇。
1.3.2 銅納米團簇表征
利用紫外-可見吸收光譜和熒光光譜及透射電子顯微鏡(transmission eectron microscope,TEM)進行銅納米團簇(copper nanoclusters,CuNCs)的表征實驗,以此驗證CuNCs的合成是否成功。
1.3.3 牛奶樣品處理[8]
1.3.3.1 皂化
準確稱取樣品5 g,精確至0.000 1 g,于250 mL平底燒瓶中,加入30 mL無水乙醇和10 mL質量濃度60 g/100 mL的kOH溶液。將試樣置恒溫磁力攪拌器(150 ℃、400 r/min)上皂化回流1 h,不時振蕩防止試樣黏附在瓶壁上,皂化結束后,用5 mL無水乙醇自冷凝管頂端沖洗其內部,取下燒瓶,冷卻至室溫。
1.3.3.2 提取
定量轉移全部皂化液于250 mL分液漏斗中,用30 mL水,分2~3 次沖洗平底燒瓶,合并入分液漏斗中,再用40 mL石油醚(60~90 ℃)和乙醚混合液(1∶1,V/V)分2~3 次沖洗平底燒瓶,合并入分液漏斗中,加蓋,放氣,混合,振搖2 min,靜置,分層。轉移水相于第2個分液漏斗中,再用30 mL石油醚和乙醚混合液(1∶1,V/V)重復提取2 次,棄去水相,合并3 次有機相,用蒸餾水洗滌提取液至中性,初次水洗時輕輕旋搖防止乳化,提取液轉移至150 mL平底燒瓶中。
1.3.3.3 濃縮
將上述平底燒瓶中的提取液在真空45 ℃條件下水浴蒸發(fā)至干殘渣,用無水乙醇溶解并轉移至10 mL容量瓶中,無水乙醇定容至刻度,搖勻,溶液通過0.45 μm濾膜過濾,取續(xù)濾液,即得。
1.3.4 高效液相色譜法檢測牛奶膽固醇
色譜柱:Wondasil型C18色譜分析柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相為乙腈;柱溫30 ℃;流速1.0 mL/min;檢測波長203 nm;進樣量10 μL。
1.3.5 檢測pH值優(yōu)化
將CuNCs放在0.01 mol/L HAc-NaAc緩沖液為反應介質溶液中,分別調節(jié)緩沖溶液pH值為5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5和8.0,測定CuNCs催化效果,不同的催化效果用吸光度表示,根據結果優(yōu)選出最佳的測定pH值。
1.3.6 膽固醇的檢測
在37 ℃條件下,將50 μL膽固醇氧化酶(cholesterol oxidase,ChOx,2 U/mL)和25 μL不同質量濃度的膽固醇添加到由1.3.5節(jié)確定最優(yōu)pH值的0.01 mol/L HAc-NaAc緩沖液中,孵育30 min。然后,添加40 μL愈創(chuàng)木酚(0.3 mmol/L)、50 μL CuNCs至上述緩沖液中,30 ℃孵育15 min。觀察溶液顏色變化,且測量該溶液吸光度。
1.3.7 線性范圍、標準曲線方程和檢出限測定實驗
分別配制質量濃度為0、10、40、80、100、160、200 μg/mL和320 μg/mL的標準膽固醇系列溶液,在優(yōu)化的實驗條件下,按照1.3.6節(jié)方法測定各溶液在波長為0~800 nm之間的吸光度。分析吸光度與膽固醇質量濃度之間的變化關系,尋找最佳線性吸收波長和線性檢測膽固醇質量濃度范圍,測定線性曲線和線性相關系數。同時根據國際純粹與應用化學聯(lián)合會(International Union of Pure and Applied Chemistry,IUPAC)建議,確定該方法的檢出限。
1.3.8 精密度實驗
精密量取按照1.3.3節(jié)制備好的牛奶樣品5 mL,按照1.3.5節(jié)和1.3.6節(jié)方法分別測定膽固醇含量,重復6 次,比較高效液相色譜法和CuNCs比色法膽固醇測定結果,分別計算相對標準偏差(relative standard deviation,RSD),評價該方法的精密度。
1.3.9 重現(xiàn)性實驗
從同一批次牛奶產品中各取6 份樣品5 g,按1.3.3節(jié)方法制備牛奶樣品,按照1.3.6節(jié)方法對每份牛奶樣品平行測定6 次分析膽固醇含量,計算RSD,評價該方法的重現(xiàn)性。
1.3.10 穩(wěn)定性實驗
將制備好的牛奶樣品在室溫條件下放置,分別在0、1、2、4、8、16 h后按照1.3.6節(jié)方法測定膽固醇含量,計算RSD,評價該方法的穩(wěn)定性。
1.3.11 準確性實驗
對不同的市售牛奶進行加標回收實驗,市售牛奶按照1.3.3節(jié)方法處理牛奶樣品,然后按照1.3.4節(jié)方法測定不同牛奶中膽固醇含量。稱取不同牛奶樣品3 份,每份約5 g,精密稱量,分別精密加入1.0 mL質量濃度為0.688 0 mg/mL和1.376 0 mg/mL標準膽固醇溶液,按1.3.3節(jié)方法制備加標牛奶樣品,按照1.3.6節(jié)方法對每份加標牛奶樣品平行測定6 次測定,計算回收率和RSD,評價該方法的準確性。
1.3.12 干擾實驗
選擇牛奶中含量較多的非膽固醇成分做干擾實驗。分別取10 份市售牛奶100 mL,分別加入25 mg膽固醇、卵磷脂、腦磷脂、乳蛋白、葡萄糖、VA、VD、VE、VC和葉酸,另取1 份市售牛奶100 mL,分別按照1.3.3節(jié)和1.3.6節(jié)方法處理和測定各樣品的吸光度,再用加入各標準品牛奶樣品吸光度與原牛奶樣品吸光度之差,考察不同干擾物質對牛奶中膽固醇測定的干擾影響。
圖1表示CuNCs和BSA紫外-可見吸收光譜,雖然BSA在280 nm波長處有明顯的紫外吸收峰,但CuNCs與BSA光譜圖相比,CuNCs在325 nm波長處出現(xiàn)了明顯吸收強度變大的現(xiàn)象。結合文獻[20]報道,可以得出325 nm波長處的紫外吸收峰可能為CuNCs的特征吸收峰,初步判斷該納米團簇可能被合成。為了進一步確定,根據CuNCs熒光特性,本實驗用熒光光譜圖對CuNCs的合成與否進一步驗證。如圖2所示,CuNCs在激發(fā)波長為335 nm時,有明顯的熒光吸收強度;而當它在發(fā)射波長為410 nm處,CuNCs也出現(xiàn)的一個強的熒光強度,CuNCs展現(xiàn)的這種熒光吸收特征符合文獻[21]報道,由此,可以判斷CuNCs合成成功。因此,結合紫外-可見吸收光譜和熒光吸收光譜得出,按照水熱法合成的此種CuNCs即為具有模擬辣根過氧化物酶活性的銅納米團簇。為了進一步評估本實驗中合成CuNCs粒徑大小,根據文獻[20]提供的合成和表征方法,本實驗用高分辨率的透射電鏡圖進行表征。如圖3所示,表明本實驗合成的CuNCs小于10 nm(約3 nm),這種CuNCs的形態(tài)特征與文獻[20-21]報道是一致的。
圖1 CuNCs和BSA紫外-可見吸收光譜圖Fig.1 UV-vis absorption spectra of CuNCs and BSA
圖2 CuNCs熒光光譜圖Fig.2 Fluorescence spectra of CuNCs
圖3 CuNCs的TEM照片F(xiàn)ig.3 TEM image of CuNCs
CuNCs的催化活性、測定的靈敏度和穩(wěn)定性與反應溶液的pH值有關,因此,為了最大程度地保持CuNCs的反應速度和活性,必須確定測定的最佳pH值,結果如圖4所示。緩沖液的pH值在6.5時具有最高的吸光度,顯示在此pH值時CuNCs的催化活力最高,穩(wěn)定性最好;當pH值上升或下降時,吸光度都變小。因此,選擇pH 6.5的0.01 mol/L HAc-NaAc緩沖液作為反應溶液。
圖4 不同pH值對檢測體系影響Fig.4 Effect of different pH values on the absorbance of the reaction mixture
為了對基于CuNCs納米比色檢測的靈敏度進行評估,選擇不同質量濃度的膽固醇作為目標物進行檢測。如圖5所示,結果表明,隨著膽固醇質量濃度增加,相對應的混合溶液吸光度也增加。這是因為反應體系中膽固醇越多,它被膽固醇氧化酶氧化產生的H2O2越多,則參與到CuNCs比色感應中的H2O2數量越多,導致反應越強,這樣吸光度越大。此外,結果發(fā)現(xiàn)吸光度和膽固醇質量濃度之間呈現(xiàn)較好線性關系(R2=0.997 1)。通過分析得出,在波長為420 nm處吸光度與膽固醇質量濃度在40~320 μg/mL范圍內具有線性關系,線性回歸方程和相關系數如圖6所示。根據IUPAC建議,測得方法的檢出限為5 μg/mL膽固醇。
圖5 CuNCs催化不同質量濃度膽固醇紫外-可見吸收光譜圖Fig.5 UV-Vis absorption spectra of different concentrations of cholesterol under CuNCs catalysis
圖6 膽固醇質量濃度與吸光度的線性相關性Fig.6 Linear relationship between cholesterol concentrations and absorbance
表1 精密度實驗結果Table 1 Results of precision tests
如表1所示,CuNCs比色法檢測膽固醇含量檢測結果的RSD值為0.16%,高效液相色譜法檢測膽固醇含量檢測結果的RSD值為0.14%,表明此方法與高效液相色譜法具有比較接近的精密度,并且該方法的精密度滿足分析檢驗精密度要求。
表2 重現(xiàn)性實驗結果Table 2 Results of reproducibility tests
如表2所示,膽固醇含量的RSD值為0.36%,滿足分析檢驗重現(xiàn)性要求,表明該方法的重現(xiàn)性較好。
表3 穩(wěn)定性實驗結果Table 3 Results of stability tests
如表3所示,膽固醇含量的RSD值為0.25%,表明該牛奶樣品在16 h內穩(wěn)定性較好。
表4 準確性實驗結果Table 4 Results of accuracy tests
如表4所示,所得的3 份樣品的回收率在99.5%~101.2%之間,RSD在1.7%~2.9%之間,表明本方法準確性較好。
圖7 干擾實驗結果Fig.7 Results of interference tests
如圖7所示,牛奶中共存的卵磷脂、腦磷脂、乳蛋白、葡萄糖、VA、VD、VE、VC和葉酸成分,對牛奶中膽固醇的測定基本無干擾,由此可以看出,本方法具有較好的抗干擾性。
本實驗建立了一種利用納米技術測定牛奶中膽固醇的方法,該方法操作簡便可靠、精密度、重現(xiàn)性、穩(wěn)定性、準確度、抗干擾性均較好,可以較快速準確的對牛奶中膽固醇成分進行定量分析,是分析牛奶中膽固醇成分較理想的方法。本檢測方法中,銅納米團簇的合成和樣品的制備步驟較為復雜、耗時,是進一步提高此方法快速檢測性的一個突破口,有待改進。基于目前的研究,本檢測方法適用的范圍為牛奶中膽固醇的檢測,本檢測方法應用于其他含膽固醇產品的檢測有待于進一步研究。
[1]kHELASHVILI G, JOHNER N, ZHAO G, et al.Molecular origins of bending rigidity in lipids with isolated and conjugated double bonds:the effect of cholesterol[J].Chemistry and Physics of Lipids, 2014,178: 18-26.
[2]TSUYOSHI I, YASUFUMI D, TOSHIHARU N, et al.Non-highdensity lipoprotein cholesterol and the development of coronary heart disease and stroke subtypes in a general Japanese population: the hisayama study[J].Atherosclerosis, 2014, 233(2): 343-348.
[3]WANG k, CHANG C C, WANG k L, et al.Determinants of lowdensity lipoprotein cholesterol goal attainment: insights from the cepheus pan-asian survey[J].Journal of the Chinese Medical Association, 2014, 77(2): 61-67.
[4]HUGHES T M, LOPEZ O L, EVANS R W, et al.Markers of cholesterol transport are associated with amyloid deposition in the brain[J].Neurobiology of Aging, 2014, 35(4): 802-807.
[5]FAUST P L, kOVACS W J.Cholesterol biosynthesis and ER stress in peroxisome de ficiency[J].Biochimie, 2014, 98: 75-85.
[6]VARBO A, BENN M, NORDESTGAARD B G.Remnant cholesterol as a cause of ischemic heart disease: evidence, de finition,measurement, atherogenicity, high risk patients, and present and future treatment[J].Pharmacology & Therapeutics, 2014, 141(3): 358-367.
[7]郭瑋, 陳方俊, 潘柏申.膽固醇檢測方法的發(fā)展歷史及標準化[J].檢驗醫(yī)學, 2013, 28(11): 970-974.
[8]張麗, 湯佳佳, 徐國兵, 等.高效液相色譜法測定牛奶中的膽固醇[J].食品科學, 2012, 33(2): 216-218.
[9]丁卓平, 王明華, 劉振華, 等.食品中膽固醇含量測定方法的研究與比較[J].食品科學, 2004, 25(1): 130-135.
[10]NARVáEA-RIVAS M, PHAM A J, SCHILLING M W, et al.A new SPE/GC-fid method for the determination of cholesterol oxidation products.Application to subcutaneous fat from Iberian dry-cured ham[J].Talanta, 2014, 122: 58-62.
[11]TIMóN-ZAPATA J, LASERNA-MENDIETA E J, SáENZ-MATEOS L F, et al.A multicentre analysis of four low-density lipoprotein cholesterol direct assays in samples with extreme high-density lipoprotein cholesterol concentrations[J].Clinica Chimica Acta, 2014,430: 71-76.
[12]LI Ruimin, XIONG Cen, XIAO Zhiyou, et al.Colorimetric detection of cholesterol with G-quadruplex-based DNAzymes and ABTS2-[J].Analytica Chimica Acta, 2012, 724: 80-85.
[13]IBUPOTO Z H, kHUN k, LIU X, et al.Low temperature synthesis of seed mediated CuO bundle of nanowires, their structural characterisation and cholesterol detection[J].Materials Science and Engineering: C, 2013, 33(7): 3889-3898.
[14]CAI Xiaojun, GAO Xia, WANG Lisha, et al.A layer-by-layer assembled and carbon nanotubes/gold nanoparticles-based bienzyme biosensor for cholesterol detection[J].Sensors and Actuators B:Chemical, 2013, 181: 575-583.
[15]ZHANG Na, QU Fei, LUO Hongqun, et al.Sensitive signal-on fl uorescent sensing for copper ions based on the polyethyleneiminecapped silver nanoclusters-cysteine system[J].Analytica Chimica Acta, 2013, 791: 46-50.
[16]LI Wenhua, LI Wang, HU Yufang, et al.A fluorometric assay for acetylcholinesterase activity and inhibitor detection based on DNA-templated copper/silver nanoclusters[J].Biosensors and Bioelectronics,2013, 47: 345-349.
[17]ZHANG Pu, WANG Yi, CHANG Yong, et al.Highly selective detection of bacterial alarmone ppGpp with an off-on fluorescent probe of copper-mediated silver nanoclusters[J].Biosensors and Bioelectronics, 2013, 49: 433-437.
[18]GAO Zhao, SU Rongxin, QI Wei, et al.Copper nanocluster-based fl uorescent sensors for sensitive and selective detection of kojic acid in food stuff[J].Sensors and Actuators B: Chemical, 2014, 195: 359-364.
[19]WANG Qingqing, YU Xiangyang, ZHAN Guoqing, et al.Fluorescent sensor for selective determination of copper ion based onN-acetyll-cysteine capped CdHgSe quantum dots[J].Biosensors and Bioelectronics, 2014, 54: 311-316.
[20]GOSWAMI N, GIRI A, BOOTHARAJU M S, et al.Copper quantum clusters in protein matrix: potential sensor of Pb2+ion[J].Analytical Chemistry, 2011, 83: 9676-9680.
[21]HU Lianzhe, YUAN Yali, ZHANG Ling, et al.Copper nanoclusters as peroxidase mimetics and their applications to H2O2and glucose detection[J].Analytica Chimica Acta, 2013, 762: 83-86.