亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        擬南芥應(yīng)答環(huán)境變化的表觀遺傳學(xué)調(diào)控研究進(jìn)展

        2014-02-11 18:39:27李漢梁陳素珠洪蟬緣林雪嬌
        臺(tái)灣農(nóng)業(yè)探索 2014年1期
        關(guān)鍵詞:春化擬南芥表觀

        李漢梁,陳素珠,洪蟬緣,林雪嬌

        (福建師范大學(xué),福建 福州 350108)

        在植物生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中,植物的應(yīng)答調(diào)控對(duì)植物適應(yīng)外界環(huán)境變化,進(jìn)行正常的生長(zhǎng)、發(fā)育與再生起著至關(guān)重要的作用。有些應(yīng)答決定著植物正常的生長(zhǎng)與發(fā)育的時(shí)機(jī),如植物對(duì)于開花的時(shí)機(jī)的調(diào)控受光周期、春化作用等的影響[1]。有些應(yīng)答使植物可以在一定程度上適應(yīng)不良的環(huán)境,得以生存下來(lái),如對(duì)低溫的應(yīng)答反應(yīng)、對(duì)鹽的應(yīng)答反應(yīng)、對(duì)病原菌的免疫應(yīng)答反應(yīng)和對(duì)干旱的應(yīng)答反應(yīng)等。表觀遺傳學(xué)是20世紀(jì)80年代逐漸興起的一門學(xué)科,研究的是在不改變DNA序列的前提下,某些機(jī)制所引發(fā)的可穩(wěn)定遺傳的基因表達(dá)或細(xì)胞表型的變化[2]。本文總結(jié)了組蛋白變體H2A.Z在擬南芥各種應(yīng)答反應(yīng)中所扮演的角色,闡述了組蛋白的甲基化修飾對(duì)于擬南芥開花過(guò)程調(diào)控的重要意義,并列舉了擬南芥其他一些應(yīng)答反應(yīng)的表觀遺傳學(xué)調(diào)控機(jī)理。

        1 表觀遺傳學(xué)調(diào)控在應(yīng)答反應(yīng)中的調(diào)控作用

        表觀遺傳學(xué)研究的方向大體可分為兩類:研究基因的選擇性轉(zhuǎn)錄表達(dá)調(diào)控與基因轉(zhuǎn)錄后調(diào)控。其中,前者研究的現(xiàn)象包括染色質(zhì)的重塑、組蛋白的共價(jià)修飾、DNA的甲基化、基因印記及假基因等;后者研究的現(xiàn)象包括RNA的可變剪接、非編碼的RNA、核糖開關(guān)等。組蛋白依據(jù)凝膠電泳性質(zhì)分為5類:H1、H2A、H2B、H3、H4。由核心組蛋白H2A、H2B、H3、H4各兩個(gè)拷貝組成組蛋白八聚體,組蛋白八聚體在組蛋白H1的作用下形成穩(wěn)定結(jié)構(gòu),其周圍纏繞的核心DNA約1.65圈、合147個(gè)堿基對(duì),再加上鄰近的一段20~50個(gè)堿基對(duì)的DNA連接子共同構(gòu)成染色質(zhì)的基本單位——核小體[3]。核小體這種緊密的結(jié)構(gòu)不利于轉(zhuǎn)錄的進(jìn)行,通過(guò)染色質(zhì)的重塑、組蛋白變體的相互作用和組蛋白的共價(jià)修飾可以改變這種情況。雖然組蛋白八聚體中組蛋白變異體的功能尚未完全明確,但組蛋白變異體形成的明顯不同的染色質(zhì)結(jié)構(gòu)確實(shí)起到了重要的生物學(xué)作用。在核心組蛋白中H2A家族的變異體種類最多,目前在自然界(包括動(dòng)物和部分植物)中存在H2A.Z、MacroH2A、H2A.Bbd、TH2A和 H2A.X這五種變體均能參與核小體的形成,影響核小體的穩(wěn)定性[3]。在核心組蛋白中有兩個(gè)結(jié)構(gòu)域:組蛋白球形折疊區(qū)和氨基末端(N端)結(jié)構(gòu)域。其中,氨基末端伸出核小體,可與調(diào)控蛋白和DNA相互作用,上面的一些特異位點(diǎn)常被組蛋白修飾酶共價(jià)修飾,這些修飾包括乙?;?、甲基化、磷酸化、ADP核糖基化、泛素化、SUMMO化和羥基化等[3]。

        2 擬南芥應(yīng)答基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控中的H2A.Z

        H2A.Z在擬南芥的基因表達(dá)調(diào)控中扮演著重要的角色。擬南芥中ARP6基因編碼的蛋白是SWR1復(fù)合物的重要組成,是升溫應(yīng)答調(diào)控中的重要因子。ARP6的突變會(huì)引發(fā)H2A.Z的缺失,從而導(dǎo)致擬南芥在正常溫度下異常啟動(dòng)溫度應(yīng)答基因,表現(xiàn)出在溫暖環(huán)境中的表型[4]。常溫(22℃)下,在溫度應(yīng)答基因的啟動(dòng)位點(diǎn)的第一個(gè)核小體處有H2A.Z的聚集,而在較溫暖的環(huán)境(27℃)中H2A.Z會(huì)減少或被替換為正常的H2A。此外,在環(huán)境溫度改變的信號(hào)引發(fā)的基因激活或抑制中都有H2A.Z丟失的現(xiàn)象。這些數(shù)據(jù)顯示在轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)的H2A.Z的存在有助于基因的應(yīng)答調(diào)控。在磷酸鹽缺乏的應(yīng)答反應(yīng)[5]與系統(tǒng)獲得性應(yīng)答中也有相似的現(xiàn)象[6]。在ARP6突變的植株中磷酸鹽缺乏的應(yīng)答基因會(huì)在正常情況下啟動(dòng),并使植物表現(xiàn)出與磷酸鹽缺乏類似的性狀。在野生型植株中,這些基因在轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)附近的核小體中都含有H2A.Z,并在正常情況下維持在一個(gè)比較低的表達(dá)水平[5]。系統(tǒng)獲得性抗性基因在植物激素水楊酸的調(diào)控下正常表達(dá),但在H2A.Z突變及SWR的組成成分PIE1和SEF突變體中處于持續(xù)表達(dá)狀態(tài),并使植株表現(xiàn)出自發(fā)的細(xì)胞死亡和病院抗性的增強(qiáng)[6]。在實(shí)驗(yàn)中,H2A.Z或SWR1復(fù)合體發(fā)生突變應(yīng)答基因表現(xiàn)出了與正常植株在相應(yīng)誘導(dǎo)信號(hào)出現(xiàn)時(shí)相同的轉(zhuǎn)錄水平的改變。綜上所述,H2A.Z的功能很可能是用來(lái)在沒(méi)有相應(yīng)誘導(dǎo)信號(hào)出現(xiàn)時(shí)抑制應(yīng)答基因的表達(dá)。

        利用基因組分析技術(shù)發(fā)現(xiàn),在擬南芥中H2A.Z不僅如其他生物一樣在轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)的第一個(gè)核小體上聚集,還出現(xiàn)在一些低表達(dá)的基因體(gene body)中[7]。有趣的是有研究表明那些在基因體中的H2A.Z與基因的較高級(jí)的應(yīng)答調(diào)控相關(guān)[8]。H2A.Z會(huì)在那些對(duì)環(huán)境或變化的刺激進(jìn)行應(yīng)答的基因體中聚集,如果H2A.Z缺失會(huì)導(dǎo)致這些基因的轉(zhuǎn)錄發(fā)生錯(cuò)誤的調(diào)控。研究者們認(rèn)為在基因體中的H2A.Z使基因的表達(dá)更具變化性。在擬南芥中在上述脅迫應(yīng)答基因中發(fā)生的基因誘導(dǎo)和動(dòng)態(tài)的核小體的重塑顯著改變了核小體的密度與組蛋白的修飾[9]。H2A.Z可能在一定程度上參與了應(yīng)力應(yīng)答基因的基因體中核染色質(zhì)的動(dòng)態(tài)改變。而基因的誘導(dǎo)可以引發(fā)組蛋白的置換。擬南芥中另一個(gè)保守的組蛋白變體H3.3存在于那些處于轉(zhuǎn)錄激活狀態(tài)的基因的啟動(dòng)子與基因體中,并可能參與組蛋白的置換[10]。在人體細(xì)胞中,如果核小體中同時(shí)存在H2A.Z與H3.3會(huì)是其相比于那些含H2A/H3或含 H2A.Z/H3的核小體穩(wěn)定性差[11-12]。同時(shí)含H2A.Z和H3.3的核小體的這種不穩(wěn)定性也許有利于基因體中核小體的移除并促進(jìn)染色質(zhì)重塑和組蛋白修飾,使染色質(zhì)變得有利于轉(zhuǎn)錄激活的進(jìn)行。也可能這種不穩(wěn)定性本身使細(xì)胞對(duì)胞內(nèi)環(huán)境敏感從而作為胞內(nèi)外信號(hào)的傳感器,在植物的應(yīng)答反應(yīng)中可能也存在類似的機(jī)制。

        3 擬南芥開花調(diào)控中的組蛋白甲基化修飾

        目前認(rèn)為組蛋白甲基化只發(fā)生在組蛋白的賴氨酸殘基和精氨酸殘基上,其中賴氨酸可以被單、雙、三甲基化,而精氨酸殘基能夠形成單、雙甲基化,其中精氨酸的雙甲基化還可分為對(duì)稱與不對(duì)稱兩種類型[3]。在組蛋白中已發(fā)現(xiàn)的會(huì)發(fā)生甲基化的位點(diǎn)常見(jiàn)的有H3中第4、9、27、36、79位,H4中第20位的賴氨酸殘基與H3中第2、8、17、26位,H4中第3位的精氨酸殘基[13]。

        一般情況下,H3K9與H3K27的甲基化與基因沉默相關(guān),H3K4與H3K36的甲基化與基因的激活相關(guān)[3],H4K20的甲基化與DNA的損傷應(yīng)答有關(guān)[3],關(guān)于組蛋白精氨酸甲基化修飾的生物學(xué)功能現(xiàn)在研究得較少,H3R2me2a不對(duì)稱的雙甲基化(asymmetric)會(huì)拮抗H3K4的三甲基化[5],因此可能與基因表達(dá)抑制相關(guān)。

        在植物中FLC編碼的蛋白是開花過(guò)程中起決定作用的負(fù)調(diào)控因子,在擬南芥中它受FRI依賴途徑、自主途徑、春化途徑、光周期途徑和赤霉素信號(hào)途徑的共同調(diào)控。其中FRI依賴途徑、自主途徑與春化途徑都是通過(guò)改變FLC染色體的結(jié)構(gòu)調(diào)控開花過(guò)程的,組蛋白甲基化修飾在其中扮演著重要的角色。

        H3K4、H3K36和H3K79的甲基化能促進(jìn)FLC的表達(dá);而H3K9與H3K27的甲基化會(huì)抑制FLC的表達(dá)[14-17]。FRI依賴途徑在開花時(shí)間的調(diào)控中起重要作用是擬南芥所特有的,與其他植物相比在C24型擬南芥中FRI依賴途徑對(duì)于開花時(shí)間的調(diào)控可以取代部分自主途徑的調(diào)控。參與FRI依賴途徑的ELF7和ELF8是FLC發(fā)生H3K4甲基化所必須[16],在初始階段由ELF7、ELF8和VIP4等組成的PAF1復(fù)合物通過(guò)招募EFS來(lái)甲基化FLC中的H3K4。之后PAF1結(jié)合EFS后可以通過(guò)識(shí)別這一甲基化信號(hào)起始FLC的轉(zhuǎn)錄的并在EFS的作用下進(jìn)一步促進(jìn)H3K4的甲基化[18]。另外PIE1同樣是通過(guò)對(duì)這一甲基化信號(hào)的識(shí)別而結(jié)合到FLC的核心體中起到穩(wěn)定這一狀態(tài)的作用,維持FLC的高表達(dá)[19]。這一機(jī)制的存在能有效的防止擬南芥過(guò)早開花,同時(shí)對(duì)這一機(jī)制的阻斷是其他促進(jìn)開花的調(diào)控的主要手段。

        在擬南芥自主途徑抑制因子FLD和FVE可以促進(jìn)FLC的去乙?;M(jìn)程[20-21],來(lái)阻止ELF7和ELF8的結(jié)合,抑制FLC的表達(dá)。另外還有研究發(fā)現(xiàn),在擬南芥中存在一種具有催化FLC中H3K36的甲基化活性的甲基轉(zhuǎn)移酶——SDG8,其對(duì)FLC表達(dá)的促進(jìn)作用不受春化作用與光周期調(diào)控的影響[17]。

        在擬南芥的春化調(diào)控途徑中,VIN3在春化過(guò)程中被誘導(dǎo)表達(dá),并與相關(guān)蛋白組成組蛋白去乙酰化復(fù)合物HDAC特異的去乙?;疐LC的H3K9和H3K14阻止EFS對(duì)H3K4的甲基化,進(jìn)而阻斷PAF1復(fù)合物對(duì) FLC的轉(zhuǎn)錄[23-24]。在春化作用后,VIN3表達(dá)由于缺少春化作用的持續(xù)誘導(dǎo)而下調(diào),對(duì)FLC表達(dá)的抑制逐漸消失[23],但在此階段VRN1與VRN2會(huì)將促進(jìn)FLC中H3K9與H3K27的雙甲基化,是FLC異染色質(zhì)化,從而在春化作用后對(duì)FLC進(jìn)行持續(xù)性的抑制,促進(jìn)開花[25]。

        在2004年第一個(gè)組蛋白的去甲基化酶LSD1(lysine specific demethylase 1)被發(fā)現(xiàn)前,組蛋白的甲基化一直被認(rèn)為是不可逆的[26]。隨著組蛋白去甲基化酶的陸續(xù)發(fā)現(xiàn),完善了組蛋白甲基化修飾的調(diào)控機(jī)制,表明組蛋白的甲基化修飾是一種更為動(dòng)態(tài)的過(guò)程,為表觀遺傳學(xué)的研究提供了新的突破口。除了LSD家族,還存在具有更廣泛組蛋白去甲基化酶活性的JMJC家族的蛋白。在擬南芥中目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)了4種與LSD1同源的組蛋白去甲基化酶和21個(gè)JMJC家族成員[27],其中8個(gè)已被報(bào)道具有一定的生物功能。其中JMJC蛋白對(duì)開花的調(diào)控研究得相對(duì)較多。其中ELF6(Early Flowering 6)/JMJ11在光周期調(diào)控中起作用,抑制開花[28]。JMJ14催化開花抑開花途徑整合因子FT、AP、SOC1與LFY中H3K4的去甲基化,防止早花[29]。而REF6(Relative of Early Flowering 6)/JMJ12、JMJ15與JMJ18會(huì)抑制FLC的表達(dá)而促進(jìn)開花。其中JMJ15是H3K4me3的組蛋白去甲基化酶,JMJ18是H3K4me2/3的組蛋白去甲基化酶,均能下調(diào)FLC中 H3K4的甲基化程度[30-32]。

        4 擬南芥應(yīng)答機(jī)制中的其他一些表觀遺傳學(xué)調(diào)控機(jī)制

        在不同的生物中,H2A.Z與DNA的甲基化的分布在全基因組中呈負(fù)相關(guān)性[7,33],在擬南芥中也不例外[7]。這種明顯的負(fù)相關(guān)性,DNA甲基化與H2A.Z被認(rèn)為可能會(huì)相互排斥[7]。但在后續(xù)研究中發(fā)現(xiàn),全局性的DNA去甲基化會(huì)使H2A.Z在正常會(huì)被甲基化的基因中聚集,而全局性的破壞H2A.Z并不影響 DNA 的甲基化水平[7-8]。其中DNA去甲基化導(dǎo)致的H2A.Z的插入的原因還有待進(jìn)一步研究。

        與H3和H4的乙酰化相比,H3K4me3的甲基化在擬南芥對(duì)干旱的應(yīng)答反應(yīng)中,同樣隨著脅迫的出現(xiàn)而快速被誘導(dǎo)起作用,但在應(yīng)力消失后,乙?;杆倩謴?fù)到誘導(dǎo)前水平,而H3K4me3還會(huì)在一定時(shí)間內(nèi)維持一定的水平,發(fā)揮著轉(zhuǎn)錄記憶功能[34-37]。另外,H2B的單泛素化(H2Bub)在擬南芥光形態(tài)發(fā)生過(guò)程中促進(jìn)了應(yīng)答的快速反應(yīng)[38]。

        另外在擬南芥中,乙酰轉(zhuǎn)移酶復(fù)合物GCN5的異常會(huì)影響開花、結(jié)莢、及對(duì)鹽和低溫的耐受能力[39],而去乙?;笍?fù)合物 HDA6與HDA19均參與了對(duì)病原入侵的防御應(yīng)答和對(duì)鹽的應(yīng)答調(diào)控[40-43]。

        5 結(jié)語(yǔ)

        植物對(duì)外界刺激的應(yīng)答反應(yīng)是植物對(duì)不良反應(yīng)的適應(yīng)能力。在這些應(yīng)答反應(yīng)中,表觀遺傳調(diào)控這種高效、可塑的調(diào)控機(jī)制對(duì)于使植物可以在合適的時(shí)機(jī)進(jìn)行生殖生長(zhǎng),在資源有限的環(huán)境中充分利用資源以及防御災(zāi)害使植物的種族得以延續(xù)中是至關(guān)重要的。目前,應(yīng)答反應(yīng)中的表觀遺傳學(xué)研究才剛剛開始,許多機(jī)制的研究還不成系統(tǒng),更談不上把這些付諸應(yīng)用實(shí)踐。

        [1]PUTTERILL J,LAURIE R,MACKNIGHT R.It’s time to flower:the genetic control of flowering time [J].Bioessays,2004,26(4):363-373.

        [2]SPECTOR T.Identically Different:Why You Can Change Your Genes[M].London:Weidenfeld & Nicolson.:Orion,2012.

        [3]蔡祿,趙秀娟,劉國(guó)慶,等 .表觀遺傳學(xué)前沿 [M].北京:清華大學(xué)出版社,2012.

        [4]KUMAR SV,WIGGE PA.H2A.Z-containing nucleosomes mediate the thermosensory response in Arabidopsis [J].Cell,2010,140(1):136-147.

        [5]SMITH AP,JAIN A,DEAL RB,et al.Histone H2A.Z Regulates the Expression of Several Classes of Phosphate Starvation Response Genes But Not as a Transcriptional Activator [J].Plant Physiology,2010,152(1):217-225.

        [6]MARCH-DIAZ R,GARCIA-DOMINGUEZ M,LOZANOJUSTE J,et al.Histone H2A.Z and homologues of components of the SWR1complex are required to control immunity in Arabidopsis[J].Plant Journal,2008,53(3):475-487.

        [7]ZILBERMAN D,COLEMAN-DERR D,BALLINGER T,et al.Histone H2A.Z and DNA methylation are mutually antagonistic chromatin marks [J].Nature,2008,456(7218):125-129.

        [8]COLEMAN-DERR D,ZILBERMAN D.Deposition of Histone Variant H2A.Z within Gene Bodies Regulates Responsive Genes [J].Plos Genetics,2012,8(10).

        [9]CHINNUSAMY V,ZHU JK.Epigenetic regulation of stress responses in plants [J].Curr Opin Plant Biol,2009,12(2):133-139.

        [10]WOLLMANN H,HOLEC S,ALDEN K,et al.Dynamic deposition of histone variant H3.3accompanies developmental remodeling of the Arabidopsis transcriptome [J].PLoS Genet,2012,8(5):1002658.

        [11]JIN C,F(xiàn)ELSENFELD G.Nucleosome stability mediated by histone variants H3.3and H2A.Z [J].Genes Dev,2007,21(12):1519-1529.

        [12]JIN C,ZANG C,WEI G,et al.H3.3/H2A.Z double variantcontaining nucleosomes mark‘nucleosome-free regions’of active promoters and other regulatory regions [J].Nat Genet,2009,41(8):941-945.

        [13]徐龍勇,陳德桂 .組蛋白去甲基化酶研究進(jìn)展 [J].生命科學(xué),2010(2):109-114.

        [14]BANNISTER AJ,ZEGERMAN P,PARTRIDGE JF,et al.Selective recognition of methylated lysine 9on histone H3by the HP1chromo domain [J].Nature,2001,410(6824):120-124.

        [15]CAO R,WANG L,WANG H,et al.Role of histone H3lysine 27methylation in Polycomb-group silencing[J].Science,2002,298(5595):1039-1043.

        [16]HE YH,DOYLE MR,AMASINO RM.PAF1-complex-mediated histone methylation of FLOWERING LOCUS C chromatin required for the vernalization-responsive,winter-annual habit in Arabidopsis [J].Gene Dev,2004,18(22):2774-2784.

        [17]ZHAO Z,YU Y,MEYER D,et al.Prevention of early flowering by expression of FLOWERING LOCUS C requires methylation of histone H3K36 [J].Nat Cell Biol,2005,7(12):1256-1260.

        [18]SOPPE WJJ,BENTSINK L,KOORNNEEF M.The earlyflowering mutant efs is involved in the autonomous promotion pathway of Arabidopsis thaliana [J].Development,1999,126(21):4763-4770.

        [19]BASTOW R,MYLNE JS,LISTER C,et al.Vernalization requires epigenetic silencing of FLC by histone methylation[J].Nature,2004,427(6970):164-167.

        [20]AUSIN I,ALONSO-BLANCO C,JARILLO JA,et al.Regulation of flowering time by FVE,a retinoblastoma-associated protein [J].Nat Genet,2004,36(2):162-166.

        [21]KIM HJ,HYUN Y,PARK JY,et al.A genetic link between cold responses and flowering time through FVE in Arabidopsis thaliana [J].Nat Genet,2004,36(2):167-171.

        [22]KIM SY,HE YH,JACOB Y,et al.Establishment of the vernalization-responsive,winter-annual habit in Arabidopsis requires a putative histone H3methyl transferase [J].Plant Cell,2005,17(12):3301-3310.

        [23]SUNG SB,AMASINO RM.Vernalization in Arabidopsis thaliana is mediated by the PHD finger protein VIN3 [J].Nature,2004,427(6970):159-164.

        [24]SUNG SB,AMASINO RM.Vernalization and epigenetics:how plants remember winter [J].Current Opinion in Plant Biology,2004,7(1):4-10.

        [25]GENDALL AR,LEVY YY,WILSON A,et al.The VERNALIZATION 2gene mediates the epigenetic regulation of vernalization in Arabidopsis[J].Cell,2001,107(4):525-535.

        [26]SHI Y,LAN F,MATSON C,et al.Histone demethylation mediated by the nuclear amine oxidase homolog LSD1 [J].Cell,2004,119(7):941-953.

        [27]LU F,LI G,CUI X,et al.Comparative analysis of JmjC domain-containing proteins reveals the potential histone demethylases in Arabidopsis and rice [J].J Integr Plant Biol,2008,50(7):886-896.

        [28]YU X,LI L,GUO M,et al.Modulation of brassinosteroidregulated gene expression by Jumonji domain-containing proteins ELF6and REF6in Arabidopsis [J].Proc Natl Acad Sci U S A,2008,105(21):7618-7623.

        [29]SEARLE IR,PONTES O,MELNYK CW,et al.JMJ14,a JmjC domain protein,is required for RNA silencing and cellto-cell movement of an RNA silencing signal in Arabidopsis[J].Gene Dev,2010,24(10):986-991.

        [30]NOH B,LEE SH,KIM HJ,et al.Divergent roles of a pair of homologous jumonji/zinc-finger-class transcription factor proteins in the regulation of Arabidopsis flowering time [J].Plant Cell,2004,16(10):2601-2613.

        [31]YANG H,MO H,F(xiàn)AN D,et al.Overexpression of a histone H3K4demethylase,JMJ15,accelerates flowering time in Arabidopsis[J].Plant Cell Rep,2012,31(7):1297-1308.

        [32]YANG H,HAN Z,CAO Y,et al.A companion cell-dominant and developmentally regulated H3K4demethylase controls flowering time in Arabidopsis via the repression of FLC expression [J].PLoS Genet,2012,8(4):e1002664.

        [33]ZEMACH A,MCDANIEL IE,SILVA P,et al.Genome-wide evolutionary analysis of eukaryotic DNA methylation [J].Science,2010,328(5980):916-919.

        [34]ALVAREZ-VENEGAS R,AL ABDALLAT A,GUO M,et al.Epigenetic control of a transcription factor at the cross section of two antagonistic pathways [J].Epigenetics,2007,2(2):106-113.

        [35]JASKIEWICZ M,CONRATH U,PETERHANSEL C.Chromatin modification acts as a memory for systemic acquired resistance in the plant stress response [J].Embo Reports,2011,12(1):50-55.

        [36]DING Y,F(xiàn)ROMM M,AVRAMOVA Z.Multiple exposures to drought‘train’transcriptional responses in Arabidopsis[J].Nat Commun,2012,3:740.

        [37]KIM JM,TO TK,ISHIDA J,et al.Transition of chromatin status during the process of recovery from drought stress in Arabidopsis thaliana [J].Plant Cell Physiol,2012,53(5):847-856.

        [38]BOURBOUSSE C,AHMED I,ROUDIER F,et al.Histone H2Bmonoubiquitination facilitates the rapid modulation of gene expression during Arabidopsis photomorphogenesis[J].PLoS Genet,2012,8(7):e1002825.

        [39]VLACHONASIOS KE,THOMASHOW MF,TRIEZENBERG SJ.Disruption mutations of ADA2band GCN5transcriptional adaptor genes dramatically affect Arabidopsis growth,development,and gene expression [J].Plant Cell,2003,15(3):626-638.

        [40]ZHOU CH,ZHANG L,DUAN J,et al.HISTONE DEACETYLASE19is involved in jasmonic acid and ethylene signaling of pathogen response in Arabidopsis [J].Plant Cell,2005,17(4):1196-1204.

        [41]WU K,ZHANG L,ZHOU C,et al.HDA6is required for jasmonate response,senescence and flowering in Arabidopsis[J].J Exp Bot,2008,59(2):225-234.

        [42]CHEN LT,LUO M,WANG YY,et al.Involvement of Arabidopsis histone deacetylase HDA6in ABA and salt stress response [J].J Exp Bot,2010,61(12):3345-3353.

        [43]CHEN LT,WU K.Role of histone deacetylases HDA6and HDA19in ABA and abiotic stress response [J].Plant Signal Behav,2010,5(10):1318-1320.

        猜你喜歡
        春化擬南芥表觀
        擬南芥:活得粗糙,才讓我有了上太空的資格
        春化過(guò)程中2個(gè)時(shí)鐘蛋白CCA1和LHY通過(guò)不同順式元件激活VIN3的轉(zhuǎn)錄
        蔬菜(2022年1期)2022-11-11 01:08:01
        光照對(duì)小麥的春化效應(yīng)及其機(jī)制初探
        綠盲蝽為害與赤霞珠葡萄防御互作中的表觀響應(yīng)
        河北果樹(2021年4期)2021-12-02 01:14:50
        鋼結(jié)構(gòu)表觀裂紋監(jiān)測(cè)技術(shù)對(duì)比與展望
        上海公路(2019年3期)2019-11-25 07:39:28
        例析對(duì)高中表觀遺傳學(xué)的認(rèn)識(shí)
        春化有效積溫對(duì)結(jié)球甘藍(lán)春化相關(guān)物質(zhì)的影響
        尿黑酸對(duì)擬南芥酪氨酸降解缺陷突變體sscd1的影響
        不同春化和授粉前處理對(duì)不結(jié)球白菜抽薹及種子產(chǎn)量的影響
        兩種LED光源作為擬南芥生長(zhǎng)光源的應(yīng)用探究
        久久99热只有频精品8国语| 美女胸又www又黄的网站| 亚洲欧美日韩中文v在线| 国产在线精品亚洲视频在线| 精品一区二区三区a桃蜜| 亚洲在线视频免费视频| 亚洲熟妇少妇任你躁在线观看无码| 国产成人精品日本亚洲| 国产精品久久久一本精品| 午夜一区二区在线视频| 亚洲av迷人一区二区三区| 亚洲av首页在线| 色伦专区97中文字幕| 日本高清不在线一区二区色| 久久精品国产白丝爆白浆| 亚洲国产成人久久精品不卡| 亚洲中文字幕无码不卡电影| 国产96在线 | 欧美| 久久婷婷是五月综合色狠狠| 亚洲福利视频一区二区三区| 亚洲美女av一区二区在线| 377p日本欧洲亚洲大胆张筱雨| 亚洲性无码av在线| 精品一区二区三区中文字幕在线 | 视频区一区二在线观看| 午夜精品久久久久久久久| 欧美一区二区三区激情| 无遮挡中文毛片免费观看| 国产精品亚洲av无人区二区 | 50岁退休熟女露脸高潮| 色999欧美日韩| 肉丝高跟国产精品啪啪| 人妻少妇精品专区性色anvn| 好吊妞无缓冲视频观看| 国产亚洲精品第一综合麻豆| 国产亚洲av人片在线播放| 久久99国产综合精品女同| 午夜时刻免费入口| 国产露脸精品产三级国产av| 亚洲高清在线观看免费视频| 亚洲国产精品悠悠久久琪琪|