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        半胱亞磺酸脫羧酶在Ishikawa細胞中的表達與檢測

        2014-02-09 01:13:15范晶晶鄭秋闿
        實驗室研究與探索 2014年6期
        關鍵詞:實驗教學生物蛋白

        范晶晶, 鄭秋闿

        (1. 山東省高校生物化學與分子生物學重點實驗室(濰坊學院), 山東 濰坊 261061;2. 濰坊學院 a. 生物與農業(yè)工程學院; b. 化學化工與環(huán)境工程學院, 山東 濰坊 261061)

        0 引 言

        “生物技術大實驗”是生物技術專業(yè)重要的一門綜合實驗課程,內容涉及分子生物學、基因工程、微生物發(fā)酵、細胞和組織培養(yǎng)等[1]。在多年來的實驗教學過程中發(fā)現存在的最大問題:雖然實驗涉及的內容比較全,但各實驗相互獨立,缺乏內在的聯系性;另外受到傳統(tǒng)教學方式的束縛,學生主動參與實驗設計少,創(chuàng)新性少,導致學生學習熱不高,教學效果不理想[2-4]。為適應生物技術迅猛發(fā)展的要求,提高實驗教學的效果,將該門實驗進行了改革:調整成為期1周的集中綜合大實驗,教師結合自己主持的課題項目列出實驗題目,由學生自己查找文獻設計實驗方案,以科研論文形式提交實驗報告。改革后的實驗課程設計的思想是兼顧基礎和前沿,把科研中成熟的先進方法和技術充實到教學中,實現了傳統(tǒng)的驗證性實驗向設計性、研究性、綜合性實驗模式的轉變。

        本實驗選擇了人子宮內膜癌Ishikawa細胞系為實驗材料,體外易培養(yǎng),生長速度快,探索半胱亞磺酸脫羧酶(CSD)[5-6],在子宮癌細胞中是否有表達,有何作用。

        1 材料與方法

        1.1 實驗材料

        Trizol RNA提取試劑盒(Invitrogen公司), M-MLV Reverse Transcriptase試劑盒(Promega公司),BCA蛋白定量試劑盒(北京普利萊生物公司),Taq酶、DNA Marker、蛋白Marker(北京天根生化科技有限公司)。引物由上海生工合成。CSD一抗為兔源多克隆抗體,由法國Prof. Tappaz教授(Directeur de Recherche CNRS, INSERM U 433, France)贈送,其余抗體購自北京中杉金橋生物技術有限公司。試劑為國產分析純。

        1.2 實驗儀器

        倒置顯微鏡(Nikon, 美國),顯微攝影系統(tǒng)(Olympus,日本),凝膠成像系統(tǒng)(AlphaImager,美國),低溫離心機(Eppendorf,德國),CO2培養(yǎng)箱(Thermo,美國),垂直電泳槽和蛋白轉印(BioRad, 美國)。

        1.3 方 法

        1.3.1Ishikawa細胞培養(yǎng)與傳代

        用含10%胎牛血清,100U/ml的青霉素及鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng),置于37℃、5%CO2、飽和濕度的培養(yǎng)箱內培養(yǎng)Ishikawa細胞。取對數生長期的Ishikawa細胞待用。細胞傳代用PBS洗兩遍,加入1ml 0.25%胰酶-0.53mmol/L EDTA,37℃消化3 min,加入3 mL有血清培養(yǎng)液終止消化,并計數細胞,按1×105/mL接種細胞到培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿,每周傳代2次。

        1.3.2免疫細胞化學檢測CSD在Ishikawa細胞中的表達

        培養(yǎng)的Ishikawa細胞用預冷的PBS漂洗2次,4%多聚甲醛固定30 min,3%的H2O2封閉30 min,用10%羊血清濕盒內封閉40 min,添加CSD一抗工作液(1∶1 500),置于濕盒內4℃孵育過夜。次日取出用生物素標記的羊抗兔的IgG(GAR-B,1∶150)孵育2 h,加稀釋好的辣根過氧化物酶標記的鏈酶親和素(SP-HRP,1∶200)孵育2 h,最后用DAB顯色,蘇木精進行復染,中性樹脂封片,每次滴加抗體前都用PBS漂洗3次。鏡下見胞質為棕黃色者為陽性染色。陰性對照一抗為兔血清,對照組和實驗組處理過程相同,顯微成像系統(tǒng)拍照。

        1.3.3RT-PCR檢測CSD在Ishikawa細胞中表達

        參照《精編分子生物學實驗指南》中的方法[8]。吸掉細胞培養(yǎng)液,每個60 mm培養(yǎng)皿加入1 mL Trizol試劑,按照RNA提取說明書進行操作,紫外分光光度計測定RNA濃度。用Oligo dT合成cDNA第一條鏈,特異性引物用于PCR。取2 μg RNA樣本,加入Oligo dT(Promega,美國)2 μL,用DEPC水補至10 μL。65℃水浴5 min,冰上驟冷2~5 min后短暫離心,依次加入M-MLV 5×buffer 5 μL,dNTP 4 μL,RNAsin 1 μL,M-MLV 1 μL,加滅菌DEPC水4 μL終體積為25 μL,用槍頭小心混勻,42℃水浴60 min,-20℃保存待用。取3 μL反轉錄產物cDNA加至PCR反應體系中,引物(見表1)各1 μL,10×buffer 5 μL,dNTP 4 μL,Taqase 1 μL,H2O 35 μL,反應總體積為50 μL。PCR反應體系為:10 ×Buffer 5 μL;dNTP 4 μL;Taq DNA聚合酶1 μL;cDNA第一鏈3 μL;上游引物1 μL;下游引物1 μL;ddH2O 35 μL。條件為:94℃,5 min,然后進入35個循環(huán),每個循環(huán)包括:94℃變性30 s,52℃退火20 s,72℃延伸30 s。循環(huán)后,72℃延伸10 min。PCR產物用0.8%瓊脂糖凝膠電泳分離,EB染色,AlphaImager凝膠成像系統(tǒng)拍照分析。內標基因選擇β-actin,小鼠肝臟組織擴增產物為CSD陽性對照。

        表1 RT-PCR基因擴增引物

        1.3.4WesternBlot檢測CSD在Ishikawa細胞中的表達

        參照《冷泉港蛋白質組學實驗手冊》中的方法[9]。胰酶消化收集Ishikawa細胞,每個60 mm培養(yǎng)皿加入100 μL TEDGM細胞裂解液,勻漿后液氮反復凍融3次,4℃, 13 000 r/min離心5 min,收集上清。蛋白定量按BCA試劑盒說明書操作。將提取到的蛋白按200 μg總蛋白/泳道上樣,進行SDS-PAGE電泳。依據預染蛋白Marker所示范圍切取凝膠。將膠上已分離開的蛋白按電轉印的標準方法轉移到PVDF膜。轉膜后用5%脫脂奶封閉。將一抗CSD和內參GAPDH作1∶5 000和1∶20 000稀釋后分別與膜在4℃條件下孵育過夜。用堿性磷酸酶標記的羊抗兔IgG和羊抗鼠IgG(1∶5 000)分別與CSD和GAPDH(內參)膜在常溫下育孵2 h后,用5 mL堿性磷酸酶的底物NBT/BCIP進行顯色約10 min,用自來水沖洗終止反應。小鼠肝臟組織為CSD陽性對照。

        2 結果與分析

        2.1 細胞培養(yǎng)結果

        用倒置顯微鏡觀察Ishikawa細胞,培養(yǎng)的細胞形狀不規(guī)則,大小不等,核比例大,呈單層貼壁、生長,排列緊密,密度增加時見堆積現象(見圖1)。

        圖1 Ishikawa細胞培養(yǎng)結果

        2.2 免疫細胞化學檢測結果

        免疫細胞化學結果顯示CSD在Ishikawa細胞中有表達,CSD在陽性細胞的細胞漿中表達(圖2(a)),呈棕褐色,但在有些細胞中只有微弱的表達。陰性對照(圖2(b))中,用未免疫的兔血清代替一抗,呈陰性反應。

        (a)棕色為陽性表達;蘭色為細胞核復染結果(b)對照PBS代替一抗免疫染色

        圖2 CSD在Ishikawa細胞的免疫細胞化學檢測結果

        2.3 PCR擴增結果

        RT-PCR電泳結果(見圖3)顯示,從Ishikawa細胞中獲得的CSD PCR產物和預期擴增產物大小一致,約279bp,與肝臟中擴增片段大小一樣。從這個結果可以得出,Ishikawa細胞和肝臟一樣都有CSD mRNA表達,但表達量低于肝臟中。

        1-DNA Marker, 2-Ishikawa細胞CSD擴增產物,3-肝臟擴增產物(陽性對照)圖3 PCR電泳檢測結果

        2.4 Western Blot檢測結果

        Western Blot結果顯示,Ishikawa細胞和肝臟(陽性對照)中檢測到了CSD蛋白,都得到了預期的大小為53 kDa的蛋白條帶(見圖4),但表達量肝臟高于Ishikawa細胞。

        圖4 Western Blot 分析CSD蛋白在Ishikawa細胞中的表達

        3 結 語

        生物技術是21世紀最具發(fā)展前景和活力的學科之一[10],《國家中長期科學和技術發(fā)展規(guī)劃綱要(2006—2020年)》將其列為需要大力發(fā)展的前沿技術[11],在《“十二五”生物技術發(fā)展規(guī)劃》中,也將生物技術產業(yè)提到了戰(zhàn)略性新興產業(yè)的歷史新高度[12]。在生物技術呈現迅猛發(fā)展,新理論、新技術層出不窮的背景下,實驗教學培養(yǎng)出的人才質量越發(fā)重要。

        生物技術大實驗經過改革,將原有由不同課程間“孤立式”單一的驗證性實驗教學方法轉換為“鏈接式”綜合實驗的新模式[13]。在實驗內容上涉及細胞工程、免疫細胞化學、SDS-Page、Western Blot、RNA提取、RT-RCR等,是學生3年所學的基礎和專業(yè)知識綜合應用的檢驗。這種實驗教學模式很好的培養(yǎng)了他們的創(chuàng)新意識、團隊協(xié)作精神和嚴謹的科學態(tài)度[13-15]。

        本實驗涉及CSD基因在Ishikawa細胞中的表達與檢測,在實驗過程中學生還發(fā)現很多值得研究的內容,如:CSD基因在Ishikawa細胞表達量不一致,在癌細胞與正常細胞中的表達量差異分析,酶活性差異分析等。所以,本實驗還有很多的研究空間。學生可以根據自身的學習興趣和專業(yè)發(fā)展需求,繼續(xù)設計不同的后續(xù)實驗方案,并在此過程中逐步培養(yǎng)其科學探究精神。

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