朱再滿,華田苗,周鴻銘,潘群皖,李 晶,李 敏
藥物成癮(drug addiction)是一種心理和身體依賴性的慢性復(fù)發(fā)性疾?。?]。目前認(rèn)為藥物成癮的主要神經(jīng)基礎(chǔ)是腦內(nèi)獎(jiǎng)賞系統(tǒng),中腦腹側(cè)被蓋區(qū)(VTA)、伏隔核(NAc)、前額葉皮質(zhì)(PFC)、底外側(cè)杏仁核(BLA)等構(gòu)成的中腦邊緣多巴胺系統(tǒng),與藥物成癮密切相關(guān)[2]。Olds[3]提出的“VTA-NAc-PFC獎(jiǎng)賞環(huán)路中,VTA及其投射區(qū)NAc是其主要的神經(jīng)解剖結(jié)構(gòu),天然的獎(jiǎng)賞性刺激都是通過作用于中腦邊緣多巴胺系統(tǒng),引起NAc內(nèi)多巴胺(dopamine,DA)釋放增多而產(chǎn)生獎(jiǎng)賞效應(yīng)。故NAc是產(chǎn)生獎(jiǎng)賞效應(yīng)的關(guān)鍵核團(tuán),在阿片類藥物依賴形成機(jī)制中起著重要作用。
時(shí)間--頻率分析顯示,持續(xù)的新異刺激可導(dǎo)致人NAc腦電頻譜發(fā)生變化,以θ波、β波變化最為顯著[4]。麻醉和睡眠時(shí)相亦會(huì)影響大鼠NAc腦電活動(dòng)頻率的分布[5]。藥物依賴個(gè)體NAc胞外腦電生理記錄研究較少,且方法僅為動(dòng)物麻醉狀態(tài)的有線在體記錄,海洛因依賴個(gè)體清醒活動(dòng)狀態(tài)NAc放電的無線遙測未見報(bào)道。本研究采用腦電無線遙測技術(shù),結(jié)合條件性位置偏愛(conditioned place preference,CPP)系統(tǒng),胞外記錄海洛因誘導(dǎo)CPP大鼠NAc腦電活動(dòng)對海洛因的電生理反應(yīng)性,探討其與大鼠位置偏愛及其覓藥行為之間的聯(lián)系。
成年清潔級SD大鼠(南京市江寧區(qū)青龍山動(dòng)物繁殖場提供,合格證號(hào):scxk蘇2007-0001)20只,體重290~320 g,雌雄不拘,常規(guī)飼養(yǎng)(室溫24℃±2℃,12 h光照,配備充足的嚙齒類飼料及飲用水)。
1.2.1 大鼠NAc電極埋藏 1%戊巴比妥鈉腹腔注射(ip,50mg/kg體重),行雙側(cè) NAc電極埋藏手術(shù),術(shù)中篩選顱骨前囟至人字縫距離大于9 mm的大鼠做電極埋藏。根據(jù)Paxinos大鼠腦立體定位圖譜[6],于顱骨表面(A:2.0mm,L:1.7mm,H:6.9mm)牙科鉆鉆孔,雙側(cè)置入鎳鉻絲電極。人字縫前兩側(cè)固定細(xì)螺桿,頭皮下組織埋藏接地電極,自凝牙科水泥固封。術(shù)后恢復(fù)5 d,前3天連續(xù)肌注40萬單位青霉素以防感染。實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,大鼠麻醉、取腦,作快速冷凍組織切片,檢查埋藏電極的位置,如位置偏離NAc則舍去所得數(shù)據(jù)。
1.2.2 海洛因誘導(dǎo)CPP大鼠模型制作、確認(rèn)及海洛因戒斷 大鼠埋藏電極后,設(shè)置海洛因誘導(dǎo)組和對照組各10只,分別編號(hào)。實(shí)驗(yàn)前將大鼠放入CPP系統(tǒng)黑白箱中自由習(xí)服,每天上午9∶00開始,持續(xù)45 min,連續(xù)3 d。習(xí)服結(jié)束后,做CPP測試,每只大鼠測試5次,每次15min,間隔1 h,觀察大鼠在CPP系統(tǒng)中的運(yùn)動(dòng)情況,用JLBehv條件性位置偏愛視頻分析系統(tǒng)(上海吉量軟件科技有限公司)記錄大鼠運(yùn)動(dòng)軌跡數(shù)據(jù),統(tǒng)計(jì)每只大鼠黑、白箱中的停留時(shí)間、百分比及活動(dòng)度。本實(shí)驗(yàn)中大鼠普遍偏愛黑箱,故選白箱為伴藥箱,偏愛黑箱(在黑箱中平均停留時(shí)間超過540 s,即總時(shí)間900 s的60%以上)的大鼠進(jìn)入下一階段實(shí)驗(yàn)。
將海洛因誘導(dǎo)組大鼠趕至CPP系統(tǒng)白箱(伴藥箱)中給予海洛因(安徽省公安廳提供)SC,第1天總量0.5 mg/kg,以后每天注射 2次(AM 9∶00,PM 3∶00),每次均遞增 0.25 mg/kg。給藥后,將大鼠置于伴藥箱中45 min。自第2天開始,每天上午給藥前,測定海洛因誘導(dǎo)組CPP相關(guān)數(shù)據(jù),每次15 min。對照組注射等體積生理鹽水,方法同海洛因誘導(dǎo)組。
大鼠連續(xù)注射藥物5 d后,每日將測得的大鼠伴藥箱停留時(shí)間與給藥前數(shù)據(jù)個(gè)體自身對照分析,伴藥箱停留時(shí)間超過給藥前50%為位置偏愛建模成功。
1.2.3 大鼠戒斷癥狀觀察 造模結(jié)束并完成即刻狀態(tài)NAc腦電記錄后,停止注射海洛因和NS,使大鼠進(jìn)入自然戒斷狀態(tài),觀察大鼠的戒斷癥狀。連續(xù)4 d,應(yīng)用柳田知司評分標(biāo)準(zhǔn)[7],對大鼠的戒斷癥狀進(jìn)行評分。間斷咬牙及輕度煩躁各0.5分,觸碰激惹、間斷性意向性震顫、輕度流涎各1分,異常姿勢、靠近激惹、連續(xù)性意向性震顫、明顯流涎各2分,流淚、軟便各4分,腹瀉、大便不成形8分,體重減輕2%~4%為5分、減輕4%~6%為10分、減輕6%~8%為15分。計(jì)算每只大鼠戒斷癥狀的分值總和。
1.2.4 大鼠兩側(cè)NAc腦電活動(dòng)的無線遙測 通過BW-200生理無線遙測系統(tǒng)(成都泰盟科技有限公司),記錄各組大鼠兩側(cè)NAc的腦電活動(dòng)。將微型無線遙測發(fā)射端子固定于大鼠背部,打開發(fā)射端子磁開關(guān),輸入電極分別連接地電極和左、右側(cè)NAc埋藏電極,發(fā)射端子自動(dòng)采集和發(fā)射NAc腦電活動(dòng)活動(dòng),經(jīng)智能接收機(jī)解碼,經(jīng)網(wǎng)絡(luò)中心機(jī)輸送至電腦,利用系統(tǒng)服務(wù)軟件記錄和處理腦電信號(hào)。給藥前狀態(tài)為造模前大鼠于白箱中記錄,即刻狀態(tài)為CPP建模成功大鼠給藥10 min后白箱中記錄,戒斷狀態(tài)取CPP大鼠戒斷癥狀評分最高、戒斷癥狀明顯時(shí)記錄。
大鼠CPP數(shù)據(jù)通過CPP系統(tǒng)軟件記錄,并繪制大鼠運(yùn)行軌跡圖。NAc腦電活動(dòng)遙測記錄和快速傅里葉分析通過BW-200無線遙測系統(tǒng)軟件完成,原始遙測腦電時(shí)間軸壓縮20倍,間隔隨機(jī)取樣,自動(dòng)生成各頻率腦電百分比,腦電頻率為δ波(0.5~4)Hz,θ波(4~8)Hz,α1波(8~11)Hz,α2波(11~13)Hz,β1波(13~18)Hz,β2波(18~30)Hz,分段統(tǒng)計(jì)各頻率腦電百分比。所得數(shù)據(jù)用均值±標(biāo)準(zhǔn)差(ˉx±s)表示,采用SPSS 11.5軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,不同狀態(tài)下NAc腦電頻率比例顯著性檢驗(yàn)用單因素方差(ANOVA)分析,并做方差齊性檢驗(yàn),兩兩比較用t檢驗(yàn)。
習(xí)服后的大鼠分別做CPP測試,每只大鼠測試5次,每次15 min,記錄大鼠黑白箱停留時(shí)間及百分比,描繪運(yùn)行軌跡。已編號(hào)的海洛因誘導(dǎo)組大鼠和對照組分別與實(shí)驗(yàn)前比較,以白箱停留時(shí)間較給藥前大于50%為標(biāo)準(zhǔn)。結(jié)果顯示海洛因誘導(dǎo)組大鼠白箱給藥5 d后,部分大鼠即可產(chǎn)生CPP,給藥8 d后,大鼠白箱CPP顯著;部分大鼠10 d以后才出現(xiàn)。軌跡圖顯示CPP大鼠白箱中活動(dòng)時(shí)間明顯延長,活動(dòng)范圍增大(圖1),其中左箱為黑箱,右箱為白箱(伴藥箱)。本研究所采用的海洛因劑量能使所有模型組大鼠都產(chǎn)生依賴性,且未發(fā)生過量中毒死亡情況。對照組大鼠未出現(xiàn)白箱CPP。
Fig.1 Trajectory of rats in the CPP system A:Before drug;B:Four days after drug;C:Eight days after drug
海洛因依賴建模之前,大鼠均未出現(xiàn)戒斷癥狀。建模成功后突然停止注射海洛因和NS,模型組大鼠出現(xiàn)煩躁不安、異常姿勢、意向性震顫、激惹、咬牙、流涎、流淚、腹瀉等戒斷癥狀;對照組未出現(xiàn)上述戒斷癥狀。戒斷第1~4天時(shí),模型組大鼠戒斷癥狀評分明顯高于對照組(P<0.01)。與建模前相比,模型組大鼠戒斷癥狀評分顯著增加(P<0.01),其中戒斷第2天時(shí)戒斷癥狀最為顯著(表1)。大鼠海洛因戒斷癥狀評分比較的結(jié)果進(jìn)一步證實(shí)了本實(shí)驗(yàn)動(dòng)物模型的可靠性。**P<0.01 vs control group;##P<0.01 vs beforemodeling
Tab.1 Evaluating on heroin withdrawal symptoms of rats(ˉx±s,n=10)
2.3.1 大鼠NAc腦電活動(dòng)腦電圖描記 在白箱中分別記錄海洛因誘導(dǎo)組大鼠NAc給藥前、給藥后即刻和藥物戒斷3個(gè)時(shí)期的自發(fā)腦電(圖2),每個(gè)腦電圖按時(shí)間軸壓縮20倍截選10 s。記錄的腦電圖波形穩(wěn)定,無干擾波,周期明顯。腦電圖顯示,給藥后即刻期腦電波(圖2B)頻率明顯低于給藥前期和戒斷期,且腦電波時(shí)程較長,波幅較大。
Fig.2 EEG of the NAc in different stages A:EEG recorded before drug;B:EEG recorded immediately after drug;C:EEG in withdrawal stage
2.3.2 大鼠NAc腦電活動(dòng)頻率分析 記錄的NAc腦電經(jīng)快速傅立葉變換后,獲取各頻段腦電百分比(圖3)。結(jié)果顯示,各期δ波百分比最大,α2波百分比最小,各期不同頻段腦電的分布梯度相同。大鼠即刻狀態(tài)NAc腦電發(fā)放較給藥前明顯變化,δ波比例顯著增大(P<0.01),β1波、β2波比例顯著減?。≒<0.01);戒斷狀態(tài)與給藥前比較,δ波比例增大(P<0.05),α1波比例減?。≒<0.01),其余頻段無顯著差異;即刻狀態(tài)較戒斷狀態(tài)δ波(P<0.05)、α1波(P<0.01)比例較大,β1波、β2波比例明顯較低(P<0.01);即刻狀態(tài)的δ波、β1波、β2波較其他狀態(tài)皆有顯著差異,其中δ波比例顯著增大,β1波、β2波比例顯著減?。≒<0.01),即刻狀態(tài) NAc腦電總體趨勢是低頻腦電比例較大,高頻腦電比例較小。
Fig.3 Frequency spectrum of rat NAc EEG(ˉx±s,n=10)*P<0.05,**P<0.01 vs immediately after drug; #P<0.05,##P<0.01 vs before drug;△P<0.01 vs before drug
2.3.3 大鼠NAc腦電波幅 對無線遙測系統(tǒng)記錄的NAc自發(fā)腦電幅度進(jìn)行統(tǒng)計(jì)發(fā)現(xiàn),給藥前自發(fā)腦電平均波幅最小,且和其余各組差異顯著(P<0.01),即刻狀態(tài)平均波幅較高,且明顯高于戒斷狀態(tài)(P<0.01,圖 4)。
Fig.4 Wave amplitude of rat NAc EEG**P<0.01 vs before drug;##P<0.01 vs immediately after drug
腦內(nèi)獎(jiǎng)賞系統(tǒng)中,阿片類藥物通過增強(qiáng)NAc中DA能神經(jīng)元的功能活動(dòng),引起NAc內(nèi)DA釋放增加,亦可降低VTA中GABA能神經(jīng)元活性,減弱其對NAc內(nèi)DA能神經(jīng)元的緊張性抑制,從而產(chǎn)生獎(jiǎng)賞效應(yīng)[8,9]。毀損伏隔核可減輕嗎啡依賴大鼠的戒斷癥狀和位置偏愛效應(yīng)[10],向伏隔核內(nèi)注入阿片受體激動(dòng)劑可使伏隔核內(nèi)DA含量升高,并產(chǎn)生位置偏愛效應(yīng)[11],提示NAc是參與阿片類藥物依賴形成的重要核團(tuán),但藥物依賴不同時(shí)期內(nèi)NAc神經(jīng)元腦電活動(dòng)的變化尚不清楚。
本實(shí)驗(yàn)采用腦電無線遙測技術(shù),觀察到大鼠在海洛因給藥前、即刻狀態(tài)、戒斷狀態(tài)的NAc腦電活動(dòng)頻率分布及波幅存在差異,提示海洛因?qū)Υ笫驨Ac腦電活動(dòng)形態(tài)會(huì)產(chǎn)生影響。本實(shí)驗(yàn)采用的植入式無線遙測EEG記錄技術(shù),最大優(yōu)勢在于可以同步監(jiān)測動(dòng)物的EEG、活動(dòng)度和行為學(xué)指標(biāo)的變化,從而可以對EEG與行為進(jìn)行同步研究,減少了動(dòng)物受束縛的限制,可以使動(dòng)物的應(yīng)激狀態(tài)最小化,能更好地反映動(dòng)物的真實(shí)狀態(tài)。植入式遙測EEG記錄技術(shù)減少了動(dòng)物在急性和慢性研究中受金屬絲感染的機(jī)率,提高了EEG的質(zhì)量,且持續(xù)記錄的可控性強(qiáng),可從幾分鐘至幾個(gè)月,尤其適用于慢性動(dòng)物實(shí)驗(yàn)[12]。
本研究利用CPP系統(tǒng),成功建立海洛因誘導(dǎo)CPP大鼠模型,因位置偏愛箱為相對封閉狀態(tài),大鼠的行為數(shù)據(jù)皆可實(shí)時(shí)被記錄和分析,模型可信度較高。大鼠位置偏愛出現(xiàn)時(shí)間從5 d到10 d,顯示不同個(gè)體產(chǎn)生藥物依賴的差異性。各狀態(tài)腦電的頻率分布均呈現(xiàn)相同梯度,其中δ波比例皆最大,α2波比例皆最小,表明了腦電信號(hào)的相對穩(wěn)定性。有報(bào)道認(rèn)為大鼠急性給予嗎啡后,嗎啡依賴組大鼠伏隔核放電平均頻率降至2 Hz甚至2 Hz以下[13],與本研究中大鼠給藥后即刻期δ波比例較給藥前顯著升高(達(dá)45.58%)的結(jié)果一致,表明給藥后有較多的NAc神經(jīng)元出現(xiàn)同步化活動(dòng),與慢波睡眠期大鼠NAc的腦電活動(dòng)特征相似[5]。戒斷期的β2、β2波比例與給藥后即刻期有顯著差異,即低頻腦電波比例減少,而高頻腦電波比例又出現(xiàn)回升,并與給藥前的無顯著差異,提示海洛因戒斷期大鼠伏隔核神經(jīng)元活動(dòng)的去同步化增強(qiáng)。因此,NAc神經(jīng)元活動(dòng)的同步化程度可能與海洛因依賴具相關(guān)性,這種同步化活動(dòng)是否與NAc內(nèi)DA或GABA遞質(zhì)系統(tǒng)的調(diào)節(jié)有關(guān)有待后續(xù)進(jìn)一步研究。
治療藥物成癮和依賴是當(dāng)前醫(yī)學(xué)界面臨的一大難題。本研究發(fā)現(xiàn),海洛因依賴伏隔核神經(jīng)元放電形式、頻率發(fā)生了改變,表明海洛因依賴對大鼠伏隔核神經(jīng)元活動(dòng)有影響。有形態(tài)學(xué)研究表明,電鏡下海洛因依賴大鼠伏隔核神經(jīng)元可見變性、凋亡,海洛因依賴可使伏隔核神經(jīng)元超微結(jié)構(gòu)發(fā)生變化[14]。海洛因依賴對腦內(nèi)獎(jiǎng)賞系統(tǒng)的相關(guān)遞質(zhì)的表達(dá)可能也有影響,尤其是VTA-NAc-PFC環(huán)路中相關(guān)遞質(zhì)的表達(dá)有待進(jìn)一步研究。鑒于NAc在藥物依賴中的重要作用,有研究用伏隔核毀損術(shù)毀損伏隔核的核心部以抑制大鼠海洛因自我給藥的建立[15,16],并有顯著的效果。但因靶點(diǎn)毀損是不可逆的,伏隔核本身又與自然獎(jiǎng)賞等人類本能行為密切相關(guān),毀損后的心理學(xué)改變及長期影響亦需要研究。所以,我們擬借鑒電針對海洛因成癮大鼠的行為干預(yù)[17]及腦深部電刺激(deep brain stimulation,DBS)在治療癲癇[18]、帕金森癥[19]等疾病中的應(yīng)用,利用 NAc植入電極電刺激回輸技術(shù),探索治療藥物依賴的新途徑。
[1] Shalev U,Grimm JW,Shaham Y.Neurobiology of relapse to heroin and cocaine seeking:a review[J].Pharmacol Rev,2002,54(1):1-42.
[2] Wang X,Zhou X,Liao Y,et al.Brain function of heroin addicts afterwithdrawal[J].JCent South University(Medical Sciences),2011,36(8):733-738.
[3] Olds ME.Reinforcing effects ofmomhine in the nucleus accumbens[J].Brain Res,1982,237(2):429-440.
[4] Zaehle T,Bauch EM,Hinrichs H,et al.Nucleus accumbens activity dissociates different forms of salience:evidence from human intracranial recordings[J].J Neurosci,2013,33(20):8764-8771.
[5] HuntMJ,Matulewicz P,Gottesmann C,etal.State-dependent changes in high-frequency oscillations recorded in the rat nucleus accumbens[J].Neurosci,2009,164(2):380-386.
[6] PaxionsG,Watson C.The ratbrain in stereotaxic coordinates[M].sixth edition.Elsevier Academic Press,2005:62-72.
[7] 高幸玲,莫志賢,邱軼漢.清風(fēng)膠囊對嗎啡依賴大鼠戒斷后焦慮行為的影響[J].中國藥物依賴性雜志,2007,16:(6)430-434.
[8] Koob GF.Drugs ofabuse:anatomy,pharmacology and function of reward pathways[J].Trends Pharmacol Sci,1992,13(5):177-184.
[9] Zarrindast MR,Khalifeh S,Rezayof A,et al.Involvement of rat dopaminergic system of nucleus accumbens in nicotineinduced anxiogenic-like behaviors[J].Brain Res,2012,1460(1):25-32.
[10]EsmaeiliMH,SahraeiH,Ali-Beig H,etal.Transient inactivation of the nucleus accumbens reduces both the expression and acquisition ofmorphine-induced conditioned place preference in rats[J].Pharmacol Biochem Behav,2012,102(2):140-l56.
[11]Huda A,Meng F,Devine DF,et al.Molecular and neuroanatomical properties of the endogenous opioid system:implications for treatment of opiate addiction[J].Seminars in Neuroscience,1997,9(3):70-83.
[12]White AM,Williams PA,F(xiàn)erraro DJ,etal.Efficientunsupervised algorithms for the detection of seizures in continuous EEG recordings from rats after brain injury[J].J Neuros Methods,2006,152(1):255-266.
[13]王 建,王慶豐,胡三覺.嗎啡依賴大鼠伏隔核與海馬腹側(cè)下托放電頻率的改變[J].中國藥物依賴性雜志,2006,15(4):280-283.
[14]周 燕,葉 竣,韋獻(xiàn)良,等.海洛因成癮復(fù)吸大鼠中腦腹側(cè)被蓋區(qū)、伏隔核神經(jīng)元超微結(jié)構(gòu)和全腦多巴胺遞質(zhì)含量變化的研究[J].廣西醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2005,22(2):185-188.
[15]Hutchson DI,Parkinson JA,Robbins TW.The effects ofnucleus accumbens core and shell lesions on intravenous heroin self-administration and the acquisition of drug-seeking behaviour under a second-order schedule of heroin reinforcement[J].Psychopharmacol,2001,153(4):464-472.
[16]Alderson HL,Parkinson JA,Robbins TW.The effeets of excitotoxic lesions of the nucleus accumbens core or shell regions on intravenous heroin self-administration in rats[J].Psychopharmacol,2001,153(4):455-463.
[17]金 寰,潘貴書,陳遠(yuǎn)壽,等.電針對海洛因成癮大鼠PAG的NPY表達(dá)的影響[J].中國應(yīng)用生理學(xué)雜志,2010,26(4):485-488.
[18]Kahane P,Depaulis A.Deep brain stimulation in epilepsy:what is next[J].Curr Opin Neurol,2010,23(2):177-182.
[19] McDonald LM,Page D,Wilkinson L,et al.Deep brain stimulation of the subthalamic nucleus improves sense ofwellbeing in Parkinson’s disease[J].MovementDisorders,2012,27(3):372-378.