亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        非水相酶法催化長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯反應(yīng)研究進(jìn)展

        2014-01-18 13:48:12辛嘉英陳林林
        食品科學(xué) 2014年3期
        關(guān)鍵詞:長(zhǎng)鏈水相酶法

        林 凱,辛嘉英,2,*,王 艷,陳林林

        (1.哈爾濱商業(yè)大學(xué) 黑龍江省高校食品科學(xué)與工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,黑龍江 哈爾濱 150076;2.中國(guó)科學(xué)院蘭州化學(xué)物理研究所 羰基合成與選擇氧化國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 甘肅 蘭州 730000)

        非水相酶法催化長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯反應(yīng)研究進(jìn)展

        林 凱1,辛嘉英1,2,*,王 艷1,陳林林1

        (1.哈爾濱商業(yè)大學(xué) 黑龍江省高校食品科學(xué)與工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,黑龍江 哈爾濱 150076;2.中國(guó)科學(xué)院蘭州化學(xué)物理研究所 羰基合成與選擇氧化國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 甘肅 蘭州 730000)

        長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯作為改性淀粉的一種重要類型具有廣泛的應(yīng)用前景。酶作為生物催化劑在非水相中可對(duì)淀粉和長(zhǎng)鏈脂肪酸進(jìn)行酯化,該反應(yīng)具有底物選擇性高、產(chǎn)物專一性強(qiáng)、條件溫和、產(chǎn)物可生物降解等優(yōu)點(diǎn)。本文從酶催化合成反應(yīng)的機(jī)理、酶法催化長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯的制備方法、取代度的測(cè)定方面進(jìn)行綜述。

        長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯;酶催化反應(yīng);非水相;取代度

        淀粉是一種大量存在的、廉價(jià)的、可再生的并且能夠被生物完全降解的天然多聚糖[1]。由于天然淀粉的結(jié)構(gòu)導(dǎo)致其反應(yīng)活力和反應(yīng)效率偏低,所以需要通過物理或者化學(xué)等方法對(duì)天然淀粉進(jìn)行改性,以滿足特定的需求[2]。長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯作為改性淀粉的一種重要類型已廣泛用于塑料工業(yè)、食品工業(yè)和生物醫(yī)學(xué)等領(lǐng)域 。由于淀粉中引入了長(zhǎng)鏈脂肪酸,使其具有不同于天然淀粉的特殊的熱塑性、乳化性、疏水性和抗拉伸等特性。但是通過物理或化學(xué)方法制備長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯的過程中,通常伴有副產(chǎn)物的產(chǎn)生,并且反應(yīng)條件苛刻。因此越來越多的研究者對(duì)非水相酶法催化長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯的合成進(jìn)行了研究。相比物理化學(xué)方法,非水相酶法催化對(duì)底物的選擇性強(qiáng)[3]、反應(yīng)條件溫和[4],并且抑制了依賴于水的副反應(yīng)的發(fā)生[5]。鑒于研究的不斷深入,本文就非水相酶法催化長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯的合成機(jī)理、方法以及取代度的測(cè)定進(jìn)行系統(tǒng)的分析和綜述。

        1 非水相酶法催化合成的反應(yīng)機(jī)理及其影響因素

        用于脂肪酸淀粉酯合成的酶主要為脂肪酶,來自于南極假絲酵母(Candida antarctica)、金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)、黑曲霉(Aspergillus niger)等[6]。在非水相中進(jìn)行的酶促反應(yīng),酯水解反應(yīng)向著酯合成反應(yīng)方向進(jìn)行,從而使酶法催化合成長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯成為可能[7]。脂肪酶多用于長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯的合成,其反應(yīng)機(jī)理為:酶的活性中心含有親核基團(tuán)(如絲氨酸的羥基、半胱氨酸的巰基、組氨酸的咪唑基),這些基團(tuán)都有共用的電子對(duì)作為電子的供體,與脂肪酸中羧基的碳原子即親電子基團(tuán)以共價(jià)鍵的方式結(jié)合,形成酰化酶中間產(chǎn)物,接著?;鶑闹虚g產(chǎn)物轉(zhuǎn)移到另一?;荏w淀粉分子中,形成脂肪酸淀粉酯。反應(yīng)歷程如下:

        式中:X為RCOO、OR、Cl、OH。

        在非水相中,酶的催化活性受到很多因素的影響,包括有機(jī)溶劑、反應(yīng)體系中水含量、利用酶的方式等[8]。在水相體系中,酶表面極性帶電荷的氨基酸側(cè)鏈能與水分子相互作用,使酶分子有較大的催化表面積,而在疏水性有機(jī)溶液中,這些氨基酸側(cè)鏈會(huì)轉(zhuǎn)向酶分子內(nèi)部,在酶分子表面高度包裹,減少酶分子的可溶表面積,降低酶催化的柔韌性,從而抑制了酶的催化活性[9]。在非水相酶催化反應(yīng)中水含量也是影響酶催化活性的重要因素,正是由于在微觀上酶分子表面這層微觀水的存在,才使得宏觀上非水相體系中酶具有催化活性。水分子的存在可以通過氫鍵、疏水鍵等作用力維持酶分子的催化構(gòu)象[10]。對(duì)于親水性的有機(jī)溶劑,會(huì)吸附酶分子表面的必須水,使得酶分子變?yōu)閯傂誀顟B(tài),失去酶催化構(gòu)象的柔韌性[11]。因此反應(yīng)體系中適當(dāng)?shù)乃渴潜仨毜摹M瑫r(shí),酶的利用形式也會(huì)影響其催化活性及耐受性。酶在非水相中的利用方式主要有3種方式:酶的化學(xué)修飾、酶的固定化以及酶的定點(diǎn)突變。酶的化學(xué)修飾是 利用戊二醛或聚乙二醇與酶進(jìn)行化學(xué)交聯(lián),得到交聯(lián)酶晶體,提高酶分子在有機(jī)相中的溶解性和穩(wěn)定性,同時(shí)能提高反應(yīng)活性[12];酶的固定化是用載體將酶固定在特定的區(qū)域,使得酶仍具有催化活性,并且可以重復(fù)利用。研究發(fā)現(xiàn),除了具有普通酶的性質(zhì)外,酶的固定化使其在有機(jī)溶劑中的穩(wěn)定性提高[13];酶的定點(diǎn)突變是用分子生物學(xué)的方法定向改造酶分子的結(jié)構(gòu),并通過高通量篩選出有機(jī)溶劑耐受性酶,提高酶在非水溶劑中活性和催化能力[14]。

        2 非水相酶法催化長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯的合成方法

        脂肪酶催化長(zhǎng)鏈脂肪酸與淀粉發(fā)生酯化是一個(gè)復(fù)雜的反應(yīng)體系,該反應(yīng)體系應(yīng)考慮長(zhǎng)鏈脂肪酸的疏水性、淀粉的親水性、酶在反應(yīng)體系中的催化活性這三方面因素。長(zhǎng)鏈脂肪酸、淀粉和脂肪酶在反應(yīng)體系中的狀態(tài)決定了酯化反應(yīng)能否發(fā)生。下面將以不同體系下非水相酶法催化長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯的合成分別加以論述。

        2.1 無溶劑體系

        若脂肪酸在室溫或在低溫加熱狀態(tài)下為液體,以脂肪酸為溶劑體系,脂肪酶可直接催化酯化反應(yīng)的發(fā)生。由于底物濃度高,該方法提高了反應(yīng)的轉(zhuǎn)化率。Horchania等[15]以CaCO3為載體對(duì)Staphylococcus aureus脂肪酶(SAL3)進(jìn)行固定化,以微波加熱的方式,通過液態(tài)酯化的方式合成油酸淀粉酯,并通過響應(yīng)面法對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行優(yōu)化。在淀粉/油酸質(zhì)量比為0.18,固定化脂肪酶單位為386 U條件下,44℃反應(yīng)4 h,制得取代度為2.86的油酸淀粉酯。經(jīng)α-淀粉水解酶實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),通過疏水化修飾后,油酸淀粉酯降解性降低。因?yàn)榈矸垲w粒由結(jié)晶區(qū)和無定形區(qū)組成,結(jié)晶區(qū)結(jié)構(gòu)致密,限制酶分子向淀粉內(nèi)部的滲透,導(dǎo)致其取代度和反應(yīng)效率降低。因此可以使用物理、化學(xué)和生物降解的方法對(duì)淀粉進(jìn)行預(yù)處理,破壞淀粉的結(jié)晶結(jié)構(gòu),從而提高反應(yīng)效率[2]。Xin Jiaying等[16]用NaOH/尿素對(duì)玉米淀粉進(jìn)行預(yù)處理,通過電鏡分析,與原淀粉相比,處理后的淀粉顆粒體積更小,表面粗糙并且疏松多孔。通過紅外光譜進(jìn)一步分析,原淀粉經(jīng)預(yù)處理后,在1 661~1 623 cm-1之間出現(xiàn)C=O的特征吸收峰,這是由于淀粉分子鏈的斷 裂從而導(dǎo)致羰基增多。同時(shí)在992 cm-1附近,D-吡喃葡萄糖環(huán)中C-O-C基團(tuán)上的C-O伸縮振動(dòng)峰發(fā)生紅移,這將會(huì)減輕淀粉分子間氫鍵的相互作用,使得淀粉鏈節(jié)發(fā)生斷裂[17]。淀粉分子結(jié)構(gòu)的變化使得酶分子與酯化劑更容易接近淀粉分子,從而提高催化效率。實(shí)驗(yàn)證明,在無溶劑體系下,以固定化脂肪酶Novozym 435為催化劑,以棕櫚酸和預(yù)處理淀粉為原料,合成了棕櫚酸玉米淀粉酯,通過氣相色譜(gas chromatography,GC)法測(cè)定其取代度為1.04。王艷等[18]也用NaOH/尿素對(duì)玉米淀粉進(jìn)行預(yù)處理,在無溶劑體系下制得了取代度為0.201的油酸淀粉酯。但采用無溶劑體系催化反應(yīng)合成時(shí)應(yīng)該考慮各反應(yīng)底物的含水量,防止該反應(yīng)體系向水解反應(yīng)方向進(jìn)行。同時(shí)淀粉不易溶于非極性溶劑,所以淀粉在該反應(yīng)體系中的擴(kuò)散及溶解程度也是影響催化效率的重要因素。由于無溶劑體系法沒有添加任何有機(jī)溶劑,反應(yīng)制得的產(chǎn)品可直接用于食品、醫(yī)藥等領(lǐng)域。

        2.2 反膠束體系

        反膠束體系是表面活性劑溶解于非極性溶液中,形成非極性環(huán)境圍繞極性核的反應(yīng)體系,即油包水型(W/O)微乳液[5]。該方法是在脂肪酶表面吸附少量的表面活性劑,表面活性劑的用量不應(yīng)將酶的表面全部覆蓋,形成脂肪酶-表面活性劑離子對(duì),增加了脂肪酶在以 有機(jī)溶劑為反應(yīng)體系中的溶解性,形成反膠束,催化酯化反應(yīng)的發(fā)生。Bruno等[19]在以異戊烷為有機(jī)溶劑的反應(yīng)體系中,加入通過相轉(zhuǎn)移法制成的枯草蛋白酶-2-乙基己基琥珀酸酯磺酸鈉(bis(2-ethylhexyl)sulfosuccinate sodium salt,AOT)離子對(duì),催化葵酸乙酯與淀粉的轉(zhuǎn)酯化反應(yīng)。通過熱重量分析法測(cè)定,制得的葵酸淀粉酯的取代度為0.15~0.32。通過光電子能譜發(fā)現(xiàn),酯化反應(yīng)優(yōu)先發(fā)生在淀粉顆粒的表面。研究進(jìn)一步發(fā)現(xiàn),使用未經(jīng)預(yù)處理的酶直接加入到該反應(yīng)體系時(shí),并沒有發(fā)生酯化反應(yīng)。Alissandrato等[20]利用脂肪酶-表面活性劑離子對(duì)在異戊烷有機(jī)相中,催化合成了末端帶有三鍵的己炔酸淀粉酯,并且通過末端的三鍵與帶有熒光的疊氮化物進(jìn)行環(huán)加成反應(yīng),生成具有熒光性的淀粉酯。通過熒光顯微鏡觀察到該熒光物質(zhì),進(jìn)一步證明了己炔酸淀粉酯的生成。Chakraborty等[21]將淀粉制成平均粒徑在40 μm的納米淀粉顆粒,并與?;w形成AOT-微乳液,以固定化脂肪酶Novozym 435為催化劑,在40℃條件下反應(yīng)48 h,制得取代度為0.8的硬脂酸淀粉酯。通過同位素比質(zhì)譜儀發(fā)現(xiàn),盡管固定化脂肪酶存在于大孔樹脂的內(nèi)部,但是納米淀粉顆粒還是與脂肪酶發(fā)生接觸,并成功催化了反應(yīng)的發(fā)生。

        2.3 有機(jī)溶劑體系

        淀粉不溶于絕大多數(shù)的液體,但是可溶于二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)、N,N-二甲基乙酰胺(N,N-dimethylacetamide,DMAc)和吡啶等強(qiáng)極性有機(jī)溶劑中。與淀粉的糊化作用不同,淀粉顆粒在DMSO中并未發(fā)生膨脹。淀粉鏈節(jié)的斷裂主要是由于DMSO是一種極強(qiáng)的氫鍵受體,能使淀粉分子內(nèi)部的氫鍵發(fā)生斷裂。但DMSO也會(huì)對(duì)酶分子的天然構(gòu)象產(chǎn)生不利影響,使得酶分子內(nèi)部的氫鍵發(fā)生斷裂,破壞其二級(jí)結(jié)構(gòu),使酶分子失去催化活性。同時(shí),DMSO也有較強(qiáng)的吸濕性,在反應(yīng)過程中應(yīng)控制體系中適當(dāng)?shù)乃疃?,維持酶分子具有催化活性所必需的構(gòu)象。在極性溶劑中可對(duì)酶進(jìn)行修飾,提高酶催化的穩(wěn)定性[22]。Ge Jun等[23]認(rèn)為在催化反應(yīng)的過程中酶分子應(yīng)受到保護(hù)。他們將脂肪酶包裹在聚丙烯酰胺納米凝膠中。通過分子仿真技術(shù)和結(jié)構(gòu)分析發(fā)現(xiàn):在DMSO溶劑中,聚丙烯酰胺納米凝膠有效地防止了酶分子中必需水的滲出,保持了酶分子的天然構(gòu)象。實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步通過電子熒光顯微鏡證實(shí),脂肪酶-納米凝膠在DMSO中也具有良好的分散性。Rajan等[24]在DMSO/DMF有機(jī)溶劑的反應(yīng)體系中,70℃反應(yīng)4 h,以脂肪酶為催化劑催化了木薯淀粉 和棕櫚酸的合成反應(yīng),通過皂化法測(cè)得取代度為1.05,并根據(jù)紅外光譜的測(cè)定證實(shí)了酯化反應(yīng)的發(fā)生。通過熱接重量實(shí)驗(yàn)分析和黏度的測(cè)定,隨著長(zhǎng)鏈棕櫚酸的引入,熱穩(wěn)定性和黏度與原淀粉相比增大。同時(shí)棕櫚酸的引入使得棕櫚酸淀粉酯具有熱塑性,可以廣泛地應(yīng)用于塑料工業(yè)。

        2.4 離子液體系

        與DMSO相似,離子液作為一種有機(jī)溶劑的替代品應(yīng)用廣泛。離子液在室溫下呈現(xiàn)液態(tài)的熔鹽,蒸汽壓低,不易揮發(fā)。在催化多糖類物質(zhì)如淀粉的酯化方面表現(xiàn)較高的活性[25]。Liu Qingbin等[26]研究發(fā)現(xiàn):脂肪酶在離子液中可保持催化活力,可以催化酯化反應(yīng)的發(fā)生,但是淀粉僅微溶于離子液,在實(shí)驗(yàn)中并沒有發(fā)生預(yù)想的反應(yīng)。同時(shí)由于離子液在室溫下呈現(xiàn)液態(tài)的熔融鹽,揮發(fā)性低,不利于產(chǎn)物的分離。為了克服離子液的這些缺點(diǎn),Lee等[27]研究了含有氯離子的離子混合液,由于這種離子混合液有極強(qiáng)的親水性,淀粉的溶解性增強(qiáng),卻抑制了酶的催化活性。因此使用新型離子液時(shí)應(yīng)考慮到淀粉的溶解性和酶的催化活力兩方面因素。離子液作為溶劑體系還有待于進(jìn)一步研究。

        3 取代度的測(cè)定

        長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯的理化性質(zhì)取決于取代度、脂肪鏈飽和度與碳鏈長(zhǎng)度及直鏈/支鏈淀粉酯的含量等。其中取代度的大小是長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯的理化性質(zhì)的主要因素。傳統(tǒng)測(cè)定取代度的方法是皂化-反滴定法,這種方法首先是由Genung等[28]提出的,滴定法的基本原理是:當(dāng)酯化改性淀粉在一定量的熱氫氧化鈉溶液中發(fā)生皂化反應(yīng)時(shí),酯鍵發(fā)生斷裂生成游離的?;?,游離的酰基與鈉離子形成?;c。當(dāng)用標(biāo)準(zhǔn)鹽酸溶液對(duì)皂化反應(yīng)物進(jìn)行反滴定時(shí),通過計(jì)算皂化反應(yīng)消耗的氫氧化鈉的量推導(dǎo)出發(fā)生酯化反應(yīng)的酰基的量?,F(xiàn)在這種方法仍被廣泛的應(yīng)用[29-33]。

        隨著現(xiàn)代儀器分析的發(fā)展,測(cè)定取代度準(zhǔn)確度也進(jìn)一步提升。目前,測(cè)定取代度的方法有氣相色譜法、核磁共振法和元素分析法。Alissandratos等[34]先將制得的脂肪酸淀粉酯溶于DMSO,然后加入甲醇鈉-甲醇溶液,冷凝回流,通過轉(zhuǎn)酯反應(yīng)生成脂肪酸甲酯,然后加入內(nèi)標(biāo)物,進(jìn)行GC分析。研究發(fā)現(xiàn),通過重復(fù)實(shí)驗(yàn),這種方法實(shí)驗(yàn)偏差低于3%,其中測(cè)定的一種脂肪酸淀粉酯的取代度可達(dá)到0.004 2±0.000 1。相比于傳統(tǒng)方法,GC法提供了一種重現(xiàn)性更好、準(zhǔn)確度更高、分析速度更快的方法。同時(shí)研究者還發(fā)現(xiàn),這種方法更適合測(cè)定中長(zhǎng)鏈的脂肪酸淀粉酯。核磁共振(nuclear magnetic resonance,NMR)法是通過測(cè)定脂肪鏈中-CH3上H和葡萄糖上質(zhì)子H在1H NMR圖譜上峰面積的特定比值從而確定脂肪酸淀粉酯的取代度。Elomaa等[35]在用NMR法測(cè)定時(shí)發(fā)現(xiàn),這種方法適用于取代度大于2的脂肪酸淀粉酯的測(cè)定。Forrest等[36]利用傅氏轉(zhuǎn)換紅外線光譜分析儀(fourier transform infrared spectroscopy,F(xiàn)TIR)測(cè)定了羥丙基淀粉的取代度,研究發(fā)現(xiàn)采用紅外光譜法測(cè)定取代度,樣品可以直接測(cè)定,提高準(zhǔn)確度,同時(shí)該方法對(duì)其他多糖類物質(zhì)的測(cè)定也適用。

        4 展 望

        近年來,長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯作為脂肪替代品、緩釋藥物載體和具有良好熱塑性的生物降解材料在各領(lǐng)域已有廣泛應(yīng)用。隨著研究的不斷深入,權(quán)衡淀粉、酶和長(zhǎng)鏈脂肪酸這三者的關(guān)系,找到一個(gè)適合的反應(yīng)條件,以及提高酶法催化長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯取代度問題都將成為未來的研究熱點(diǎn),并且隨著可利用的酶的種類增多,會(huì)使酶法催化長(zhǎng)鏈脂肪酸淀粉酯有更廣闊的發(fā)展空間。

        [1] SINGH J, KAUR L, MOCARTHY O J. Factors influencing the physico-chemical, morphological, thermal and rheological properties of some chemically modified starches for food applications: a review[J]. Food Hydrocolloids, 2007, 21(1): 1-22.

        [2] KAUR B, ARIFFIN F, BHAT R, et al. Progress in starch modification in the last decade[J]. Food Hydrocolloids, 2012, 26: 398-404.

        [3] KOBAYASHI S, MAKINO A. Enzymatic polymer synthesis: an opportunity for green polymer chemistry[J]. Chemical Reviews, 2009, 109(11): 5288-5353.

        [4] LEE C K, LE Q T, KIM Y H. Enzymatic synthesis and properties of highly branched rice starch amylose and amylopectin cluster[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2008, 56: 126-131.

        [5] 王李禮, 陳依軍. 非水相體系酶催化反應(yīng)研究進(jìn)展[J]. 生物工程學(xué)報(bào), 2009, 25(12): 1789-1794.

        [6] 黃振華, 劉晨光. 酶催化的多糖酯化反應(yīng)研究進(jìn)展[J]. 食品科學(xué), 2011, 32(21): 283-288.

        [7] 許志國(guó), 夏詠梅, 方云. 非水介質(zhì)酶促反應(yīng)中水的作用[J]. 香料香精化妝品, 2001(4): 34-36.

        [8] 戴清源, 朱秀靈. 非水相中脂肪酶催化合成糖酯類食品添加劑的研究進(jìn)展[J]. 食品工業(yè)科技, 2012, 33(10): 385-389.

        [9] TEJO B A, SALLEH A B, PLEISS J. Structure and dynamics of Candida rugosa lipase: the role of organic solvent[J]. Journal of Molecular Modeling, 2004, 10(5/6): 358-366.

        [10] XIA Xiaole, WANG Chen, YANG Bo, et al. Water activity dependence of lipases in non-aqueous biocatalysis[J]. Applied Biochemistry and Biotechnology, 2009, 159(3): 759-767.

        [11] KLIBANOY A M. Improving enzymes by using them in organic solvents[J]. Nature, 2001, 409: 241-246.

        [12] 閻金勇, 閆云君. 脂肪酶非水相催化作用[J]. 生命的化學(xué), 2008, 28(3): 268-271.

        [13] ZhANG Liping, SUN Shuzhen, XIN Zhong, et al. Synthesis and component confirmation of biodiesel from palm oil and dimethyl carbonate catalyzed by immobilized-lipase in solvent-free system[J]. Fuel, 2010, 89(12): 3960-3965.

        [14] MANSFELD J, ULBRICH-OFMANN R. The stablility of engineered thermostable neutral proteases from Bacillus stearothermophilus in organic solvents and detergents[J]. Biotechnology and Bioengineering, 2007, 97(4): 672-679.

        [15] HORCHANI H, CHAABOUNI M, GARGOURI Y, et al. Solventfree lipase-catalyzed synthesis of long-chain starch esters using microwave heating: optimization by response surface methodology[J]. Carbohydrate Polymers, 2010, 79(2): 466-474.

        [16] XIN Jiaying, WANG Yan, LIU Tie, et al. Biosysthesis of corn starch palmitate by lipase novozym 435[J]. Molecular Sciences, 2012, 13: 7226-7236.

        [17] HUANG Mingfu, YU Jiugao, MA Xiaofei. Studies on the properties of montmorillonite-reinforced thermoplastic starch composites[J]. Polymer, 2004, 45(20): 7017-7023.

        [18] 王艷, 辛嘉英, 劉鐵, 等. 無溶劑體系酶催化油酸淀粉酯的合成[J].中國(guó)糧油學(xué)報(bào), 2012, 27(11): 39-44.

        [19] BRUNO F F, AKKARA J A, AYYAGARI M, et al. Enzymatic modification of insoluble amylose in organic solvents[J]. Macromolecules, 1995, 28(26): 8881-8883.

        [20] ALISSANDRATOS A, BAUDENDISTEL N, HAUER B, et al. Biocompatible functionalisation of starch[J]. Chemical Communications, 2011, 47(2): 683-685.

        [21] CHAKRABORTY S, SAHOO B, TERAOKA I, et al. Enzymecatalyzed regioselective modification of starch nanoparticles[J]. Macromolecules, 2005, 38: 61-68.

        [22] HEGEDUS I, NAGY E. Improvement of chymotrypsin enzyme stability as single enzyme nanoparticles[J]. Chemical Engineering Science. 2009, 64(5): 1053-1060.

        [23] GE Jun, LU Diannan, WANG Jun, et al. Lipase nanogel catalyzed transesterification in anhydrous dimethyl sulfoxide[J]. Biomacromolecules, 2009, 10(6): 1612-1618.

        [24] RAJAN A, SUDHA J D, ABRAHAM T E. Enzymatic modification of cassava starch by fungal lipase[J]. Industrial Crops and Products, 2008, 27: 50-59.

        [25] MONIRUZZAMAN M, NAKASHIMA K, KAMIYA N, et al. Recent advances of enzymatic reactions in ionic liquids[J]. Biochemical Engineering Journal, 2010, 48(3): 295-314.

        [26] LIU Qingbin, JANSSEN M H A, van RANTWIJK F, et al. Roomtemperature ionic liquids that dissolve carbohydrates in high concentrations[J]. Green Chemistry, 2005, 7(1): 39-42.

        [27] LEE S H, HA S H, HIEP N M, et al. Lipase-catalyzed synthesis of glucose fatty acid ester using ionic liquids mixtures[J]. Journal of Biotechnology, 2008, 133(4): 486-489.

        [28] GENUNG L, MALLATT R. Analysis of cellulose derivatives: determination of total combined acyl in cellulose organic esters[J]. Industrial and Engineering Chemistry, 1941, 13(6): 369-374.

        [29] RAJAN A, PRASAD V S, ABRAHAM T E. Enzymatic esterification of starch using recovered coconut oil[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2006, 39: 265-272.

        [30] RAJAN A, ABRAHAM T E. Enzymatic modification of cassava starch by bacterial lipase[J]. Bioprocess and Biosystems Engineering, 2006, 29(1): 65-71.

        [31] MILADINOV V D, HANNA M A. Starch esterification by reactive extrusion[J]. Industrial Crops and Products, 2000, 11(1): 51-57.

        [32] CHI Hui, XU Kun, WU Xiuli, et al. Effect of acetylation on the properties of corn starch[J]. Food Chemistry, 2008, 106(3): 923-928.

        [33] SAARTRAT S, PUTTANLEK C, RUNGSARDTHONG V, et al. Paste and gel properties of low-substituted acetylated canna starches[J]. Carbohydrate Polymers, 2005, 61(2): 211-221.

        [34] ALISSANDRATOS A, BAUDENDISTEL N, FLITSCH S L, et al. Lipase-catalysed acylation of starch and determination of the degree of substitution by methanolysis and GC[J]. BMC Biotechnology, 2010, 10: 82.

        [35] ELOMAA M, ASPLUND T, SOININEN P, et al. Determination of the degree of substitution of acetylated starch by hydrolysis,1H NMR and TGA/IR[J]. Carbohydrate Polymers, 2004, 57(3): 261-267.

        [36] FORREST B. Identification and quantitation of hydroxypropylation of starch by FTIR[J]. Starch-St?rke, 1992, 44(5): 179-183.

        Recent Progress in Lipase-Catalyzed Synthesis of Long-Chain Fatty Acid Starch Esters in Non-Aqueous Phase

        LIN Kai1, XIN Jia-ying1,2,*, WANG Yan1, CHEN Lin-lin1
        (1. Key Laboratory of Food Science and Engineering, Harbin University of Commerce, Harbin 150076, China; 2. State Key Laboratory of Oxo Synthesis and Selective Oxidation, Lanzhou Institute of Chemical Physics, Chinese Academy of Sciences, Lanzhou 730000, China)

        Long-chain fatty acid starch esters, an important kind of modified starch products, have attractive application prospects. It is well known that the application of non-aqueous enzymatic catalysis in esterification of starch with long-chain fatty acids has the advantages of higher substrate selectivity, suppression of unwanted water-dependent side reactions, mild reaction conditions and biodegradability. In this review, the reaction mechanism and the currently available methods for lipase-catalyzed synthesis of starch esters with long-chain fatty acids in non-aqueous phase and the recent progress in the determination of degree of substitution are discussed.

        long-chain fatty acid starch esters; enzymatic catalysis; non-aqueous phase; degree of substitution

        TS231

        A

        1002-6630(2014)03-0276-04

        10.7506/spkx1002-6630-201403054

        2013-02-27

        黑龍江省杰出青年基金項(xiàng)目(jc201106);黑龍江省教育廳科技創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)計(jì)劃項(xiàng)目(2010td04)

        林凱(1989—),男,碩士研究生,研究方向?yàn)樯锎呋-mail:glklkk@126.com

        *通信作者:辛嘉英(1966—),男,教授,博士,研究方向?yàn)樯锎呋?。E-mail:xinjiayingvip@163.com

        猜你喜歡
        長(zhǎng)鏈水相酶法
        長(zhǎng)鏈非編碼RNA APTR、HEIH、FAS-ASA1、FAM83H-AS1、DICER1-AS1、PR-lncRNA在肺癌中的表達(dá)
        海上中高滲透率砂巖油藏油水相滲曲線合理性綜合分析技術(shù)
        更 正
        地下水流速與介質(zhì)非均質(zhì)性對(duì)于重非水相流體運(yùn)移的影響
        α-生育酚琥珀酸酯的酶法合成研究進(jìn)展
        酶法制備大豆多肽及在醬油發(fā)酵中的應(yīng)用
        Sn-2二十二碳六烯酸甘油單酯的酶法合成
        長(zhǎng)鏈磷腈衍生物的制備及其在聚丙烯中的阻燃應(yīng)用
        長(zhǎng)鏈非編碼RNA與腫瘤的相關(guān)研究進(jìn)展
        用三辛胺和磷酸三丁酯萃取、銨溶液反萃取鉬的研究
        濕法冶金(2014年3期)2014-04-08 01:04:51
        欧美最猛黑人xxxxx猛交| 极品夫妻一区二区三区| 亚洲国产熟女精品传媒| 国产大片内射1区2区| 黑人巨大无码中文字幕无码| 精品高潮呻吟99av无码视频| 太大太粗太爽免费视频| 久久色悠悠综合网亚洲| 开心五月天第四色婷婷| 天堂中文最新版在线中文| 亚洲av无码之日韩精品| 欧美精品高清在线xxxx| 亚洲精品久久麻豆蜜桃| 免费亚洲一区二区三区av| 久久精品国产精油按摩| 日本精品久久久久中文字幕| 久久久精品国产sm调教网站| 亚洲av无码成人精品区天堂| 亚洲不卡av不卡一区二区| 黑丝美腿国产在线观看| 亚洲αv在线精品糸列| 18女下面流水不遮图| 午夜视频网址| 漂亮人妻被强中文字幕乱码| 精品国产精品久久一区免费式| 成年女人a毛片免费视频| 欧美白人最猛性xxxxx| 国产精品三级av一区二区| 日本久久精品福利视频| 成 人 免 费 黄 色| 无码久久精品国产亚洲av影片 | 亚洲欧美日韩国产综合专区| 亚洲香蕉久久一区二区| 亚洲国产精品久久久婷婷| 体验区试看120秒啪啪免费| 日韩av精品国产av精品| 国产精品白浆视频免费观看| 在线久草视频免费播放| 欧美巨鞭大战丰满少妇| 久久水蜜桃亚洲av无码精品麻豆| 日韩在线观看网址|