蒼晶,姜曉娟,徐志超,林忠平,杜娟
(1.東北農(nóng)業(yè)大學生命科學學院,哈爾濱 150030;2.北京大學蛋白質(zhì)工程及植物基因工程國家重點實驗室,北京 100871)
乙酰乙酰輔酶A還原酶基因phbB克隆及其表達初探
蒼晶1,姜曉娟1,徐志超2,林忠平2,杜娟2
(1.東北農(nóng)業(yè)大學生命科學學院,哈爾濱 150030;2.北京大學蛋白質(zhì)工程及植物基因工程國家重點實驗室,北京 100871)
從真養(yǎng)產(chǎn)堿桿菌(Alcaligenes eutrophus)中克隆得到PHB合成的關鍵酶基因,NADPH依賴性的乙酰乙酰輔酶A還原酶基因phbB(GenBank ID:KC191672),其DNA長度為741 bp,編碼246個氨基酸(aa),與GenBank數(shù)據(jù)庫中的entrophusPhbB(FJ897462.1)的同源性為70.99%。屬于膜蛋白或分泌蛋白,推測該蛋白可能定位在細胞膜上。成功構建原核表達載體pET28a(+)-phbB-HE。經(jīng)SDS-PAGE電泳檢測獲得phbB基因表達蛋白,其分子質(zhì)量為31 ku,為研究乙酰乙酰輔酶A還原酶活性及后期蛋白功能鑒定奠定基礎。
聚-β-羥基丁酸酯;重組表達;基因克??;純化;表達載體
塑料廢棄物造成的環(huán)境污染日益嚴重,日常生活和工業(yè)上廣為應用的塑料均是以石油為原料經(jīng)化學合成的石化產(chǎn)品。研制開發(fā)可降解塑料以減少環(huán)境污染具有重要意義[1-3]。自1962年以來,研究人員將目光投向聚-β-羥基丁酸酯(Poly-β-hydroxylbutyrate,PHB),它是一種理想的生物可降解塑料,以其良好的生物降解性和生物組織親合性受到關注,其分解產(chǎn)物在自然條件下可被一些微生物完全分解利用,對環(huán)境無任何污染,對人體無傷害[4]。雖應用前景廣闊,但因成本高于化工塑料而難以推廣[5-7]。隨著重組DNA技術的發(fā)展,為此轉基因植物生產(chǎn)生物可降解塑料開辟了新途徑。
PHB生物合成由3種性質(zhì)不同的酶共同催化:3-酮硫解酶、依賴NADPH的乙酰乙酰CoA還原酶和PHB合酶,分別由phbA、phbB和phbC基因編碼。Poirier等在擬南芥細胞質(zhì)中定向合成PHB[8];Nawrath等通過農(nóng)桿菌介導法對phbA、phbB和phbC基因進行修飾構建3個表達載體,通過雜交使3個關鍵酶基因共轉化在同一株擬南芥中成功表達[9];Houmei等從堿桿菌分離得到3個編碼PHB關鍵酶基因(phbA、phbB和phbC),用種子特異啟動子代替35S啟動子,在油菜種子中成功表達[10]。在馬鈴薯、甜菜等植物中相應獲得成功[11-14]。
本文以真氧產(chǎn)堿桿菌(Alcaligenes eutrophus)為材料獲得PHB生物合成關鍵酶基因phbB,并構建原核表達系統(tǒng)。實現(xiàn)PHB合成基因在大腸桿菌中的表達以及PHB積累。為研究乙酰乙酰CoA還原酶的生化特性奠定基礎。
1.1 質(zhì)粒與菌株
原核表達載體pET28a、大腸桿菌(Escherichia coli)DH5α由本實驗室保存;真養(yǎng)產(chǎn)堿桿菌(Alcaligenes eutrophus)由中國科學院微生物所提供;pMD18-T載體購自TaKaRa公司(大連)。
1.2 試劑與設備
質(zhì)粒純化試劑盒、T4DNA連接酶、DNA限制性內(nèi)切酶HindⅢ和EcoRⅠ、pMD18-T載體購自TaKaRa公司(日本);N,N'-亞甲雙丙烯酰胺、考馬斯亮藍R-250丙烯酰胺由北京拜爾迪生物技術有限公司提供;引物合成及測序由上海生工生物有限公司完成;臺式冷凍離心機均為Thermo公司產(chǎn)品;金屬浴與PCR儀為Eppendorf生產(chǎn)。
1.3 phbB基因的克隆及測序
采用優(yōu)化的CATB裂解法提取真養(yǎng)產(chǎn)堿桿菌基因組DNA[15],根據(jù)Alcaligenes eutrophusPhbB(FJ897462.1)基因編碼區(qū)(CDs)設計特異引物F:5'ATGACTCAGCGCATTGCGTATGTGACC 3',R:5'TCAGCCCATATGCAGGCCGCCGTTGAG 3'。取2 μL DNA作為模板,PCR反應擴增條件:95℃5 min,95℃30 s,55℃30 s,72℃1 min 30 s,共35個循環(huán),72℃延伸10 min。將回收產(chǎn)物連接在pMD18-T載體上,16℃連接過夜,轉化大腸桿菌(Escherichia coli)DH5α,涂布于含Kan+的LB固體平板,37℃倒置培養(yǎng)過夜,1.2%瓊脂糖凝膠電泳檢測,陽性菌株送至上海生工生物公司測序。
1.4 原核表達載體構建
在引物兩端引入HindⅢ/EcoRⅠ酶切位點:F:5'CCCAAGCTTTCAGCCCATATG 3',R:5'CC GGAATTCATGACTCAGCGC 3'。目的片段與pMD18-T載體連接后構建pMD18T-phbB質(zhì)粒,轉化工程菌E.coliDH5α。將純化的pMD18T-phbB質(zhì)粒和空的pET28a質(zhì)粒分別由HindⅢ/EcoRⅠ37℃雙酶切3 h左右,得到帶有相同粘性末端的pET28a和目的基因片段,回收的大小片段用T4DNA連接酶16℃下連接過夜,經(jīng)1.2%瓊脂糖凝膠電泳進行鑒定。
1.5 phbB基因蛋白在E.coli的誘導表達
挑取正確的重組質(zhì)粒和陰性對照空載體以1:50比例,加入含Kan+的LB液體培養(yǎng)基中,37℃震蕩培養(yǎng)2~3 h至OD值達0.6~0.8,加入IPTG(終濃度為0.5 mmol·L-1)分別在不同溫度30和16℃下誘導6和24 h,10 000 r·min-1離心1 min,沉淀樣品用200 μL冰預冷的磷酸緩沖液(PBS)懸浮,10 000 r·min-1離心1 min,棄上清。加入30 μL PBS和10 μL 4×SDS上樣緩沖液,劇烈振蕩,沸水浴中保持5 min,立即冰浴冷卻,12 000 r·min-1離心1 min,加入200 μL 1×SDS PAGE Loading buffer,15% SDS-PAGE檢測參照Schagger等方法[16]。
2.1 phbB基因片段的克隆及序列分析
以真養(yǎng)產(chǎn)堿桿菌(Alcaligenes eutrophus)DNA為模板,擴增得到一條約750 bp的DNA片段且條帶清晰(見圖1)。通過NCBI上的軟件ORF Finder(http: //www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf/orfig.cgi)分析,phbB基因全長為741 bp,編碼246個氨基酸(aa),與GenBank上收錄的eutrophus phbB(FJ897462.1)序列比對同源性達70.99%(見圖2),多序列比對和系統(tǒng)進化樹分析表明該基因?qū)儆贜ADB-Rossmann超家族。并在GenBank數(shù)據(jù)庫進行登陸,登錄號為:KC191672。
圖1 PCR擴增的phbB基因序列Fig.1phbB gene sequence using PCR method
圖2 phbB基因與eutrophus phbB核酸序列比對Fig.2 Comparison among phbB gene sequence and eutrophus phbB
2.2 編碼蛋白信號肽和亞細胞定位分析
SignalP軟件對phbB基因編碼蛋白進行信號肽預測該蛋白屬于膜蛋白或分泌蛋白,在N-末端具有指導蛋白質(zhì)跨膜轉移(定位)的信號肽(見圖3)。PSORT(http://psort.hgc.jp/form.html)對phbB編碼的蛋白進行亞細胞定位,其中定位于質(zhì)膜和外部空間的平均分值分別為0.64和0.428(見圖4),從而推斷該蛋白可能定位在細胞膜上。
2.3 phbB蛋白三級結構預測
為更進一步了解phbB蛋白的特征,使用SWISS-MODEL方法,得到phbB蛋白的三維模型(見圖5A),它以N端一個α-螺旋開始,這個α-螺旋可能含有胞內(nèi)的定位信號。該蛋白含有>45%的α折疊,<5%的β折疊,和>30%α/β折疊。其等電點(pI)為7.79,N末端下游211~232氨基酸處有一個強信號的跨膜螺旋。該蛋白的晶體結構(見圖5B)顯示一個與氧化還原酶作用的β片層形式堆疊結構,在N末端含有能夠與ND(P)H結合的TGxxxGxG結構,和一個輔助因子TGXXGXXG。這可能是phbB基因表達的乙酰乙酰CoA還原酶的活性中心。
圖3 phbB編碼蛋白信號肽預測Fig.3Signal peptide prediction of phbB protein
圖4 蛋白的亞細胞定位預測Fig.4 Subcellular localization prediction of protein
圖5 三維結構和晶體結構預測Fig.5 Three-dimensional structure and crystal structure prediction
2.4 pET28a(+)-phbB-HE質(zhì)粒構建和分析
以T7作為啟動子,選擇HindⅢ和EcoRⅠ為酶切位點設計特異性引物。經(jīng)DNA測序,證明兩個酶切位點已成功引入該片段(見圖6A)。將已得到phbB基因連接到經(jīng)同樣限制性內(nèi)切酶雙酶切的pET-28a載體(見圖7),轉化至E.coliBL21(DE3)。PCR檢測結果顯示質(zhì)粒pET28a(+)-phbB-HE已完全轉入E.coliBL21(DE3)(見圖5)。最終通過對陽性克隆的測序,證明phbB基因已正確連接到pET32a(+)表達載體上,并且核苷酸序列未發(fā)生任何堿基突變,即質(zhì)粒pET28a(+)-phbB-HE構建與連接成功(見圖6B)。
圖6 PhbB基因序列(A)和重組質(zhì)粒pET28a(+)-phbB-HE構建圖Fig.6 PhbB gene sequence(A)and construction of recombinant plasmid pET28a(+)-phbB-HE(B)
圖7 重組質(zhì)粒pET28a(+)-phbB-HE的酶切鑒定Fig.7 Enzyme identification of recombinant plasmid pET28a(+)-phbB-HE
2.5 phbB基因表達蛋白在E.coli的誘導表達
含重組表達質(zhì)粒pET28a(+)-phbB-HE的工程菌E.coliBL21(DE3)在含Kan+的LB培養(yǎng)液中,37℃搖床培養(yǎng)至OD值達0.6~0.8。經(jīng)0.5 mmol·L-1IPTG誘導后,在37℃培養(yǎng)12 h后,分別對IPTG誘導前后的菌體和上清液處理。
經(jīng)SDS-PAGE檢測顯示,與誘導前對照樣品比較,該工程菌株誘導后的樣品在約31 ku處條帶明顯(見圖9),其分子質(zhì)量和理論值吻合,而在陰性對照組中無任何表達,說明成功表達phbB基因蛋白。另外,使用(終濃度為0.5 mmol·L-1)IPTG對含pET28a(+)-phbB-HE重組質(zhì)粒的E.coliBL21(DE3)菌株進行不同條件下處理,并選出最佳誘導條件為30℃/6 h。
圖8 質(zhì)粒pET28a(+)-phbB-HE轉入E.coli BL21(DE3)結果Fig.8 Plasmid pET28a(+)-phbB-HE transformed into E.coli BL21(DE3)result
圖9 重組質(zhì)粒在E.coli BL21(DE3)表達蛋白的SDS-PAGE檢測Fig.9 SDS-PAGE analysis for proteins expressed in E.coli BL21(DE3)
PHB是一種自然界中存在的可降解性高分子聚合物,由其合成途徑可知,兩個乙酰輔酶A分子在β-酮硫解酶作用下縮合成乙酰乙酰輔酶A,在乙酰乙酰輔酶A還原酶作用下生成β-羥丁酰輔酶A,最后經(jīng)PHB合成酶合成聚-β-羥基丁酸。因此,編碼β-酮硫解酶、乙酰乙酰輔酶A還原酶及PHB合成酶的基因phbA、phbB和phbC在PHB生物合成途徑起到至關重要作用[17-18]。本文以真養(yǎng)產(chǎn)堿桿菌(Alcaligenes eutrophus)DNA為模板,參考GenBank上收錄的eutrophus phbB(FJ897462.1)全長DNA序列,成功克隆獲得編碼乙酰乙酰輔酶A還原酶的phbB基因序列,同源性比對及系統(tǒng)進化樹分析表明該基因?qū)儆贜ADB-Rossmann超家族。該研究為最終實現(xiàn)商品化生產(chǎn)PHB提供可能。但該基因的表達蛋白乙酰乙酰輔酶A還原酶的生物學活性及其導入植物反應器后對聚-β-羥基丁酸酯(PHB)合成的調(diào)控作用,有待進一步研究。
為驗證該基因功能,本文選擇pET28a(+)作為表達質(zhì)粒,它所攜帶的T7啟動子是一種專一性很強的啟動子,完全受控于T7RNA聚合酶。大腸桿菌作為外源性基因表達的宿主菌,是獲得大量重組蛋白較為理想的表達系統(tǒng)[19-21]。其本身不含T7RNA聚合酶,在IPTG誘導下,溶源菌體內(nèi)的lacUV5啟動子解阻遏,生成T7RNA多聚酶能快速轉錄外源基因,在一定情況下可大量表達相應的靶蛋白,高活性的T7RNA聚合酶合成mRNA的速度比大腸桿菌RNA聚合酶快5倍。因此,通過控制誘導條件控制T7RNA聚合酶量,可實現(xiàn)調(diào)控phbB基因在大腸桿菌中的產(chǎn)物表達量。在本試驗條件下,篩選出最佳誘導條件為30℃/6 h,但此條件下的phbB蛋白表達量并未達到理想水平,仍有待對誘導條件和菌株作進一步的摸索和純化,為最終實現(xiàn)商品化生產(chǎn)PHB奠定基礎。
[1]劉西文,楊中文.植物合成生物降解塑料的研究進展[J].塑料制造,2007(12):90-94.
[2]梁世強,傅和青.生物降解包裝塑料研究進展[J].包裝工程, 2006,27(2):16-17.
[3]于浩強,張艷梅.生物降解塑料的研究現(xiàn)狀與發(fā)展前景[J].上海塑料,2012(1):1-5.
[4]胡曉蘭,梁國正.生物降解高分子材料研究進展[J].化工新型材料,2002(3):7-10.
[5]Poirier Y.Production of polymeric compounds in plants[J].Curr Opin Biotechnol,1999,10(2):181-185.
[6]Scheller J,Conrad U.Plant-based material,protein and biodegradable plastic[J].Curr Opin Plant Biol,2005(8):188-196.
[7]Poirier Y,Nawrath C,Somerville C.Production of polyhydroxyalkanoates,a family of bioegradable plastics and elastomers inbacteria and plants[J].Bio Technology,1995,13:142-150.
[8]Poirier Y,Dennis D E,Klomparens K,et al.Perspectives on the production of polyhydroxyalkanoates inplants[J].FEMS Microbiol Rev,1992,103:237-246.
[9]Nawrath C,Poirier Y,Somerville C.Targeting of the polyhydroxybutyrate biosynthetic pathway to theplastids of Arabidopsis thaliana results in higher levels of polymer accumulation[J].Proc Natl Acad,1994,91:12760-12764.
[10]Houmiel K L,Slater S,et al.Poly(β-hydroxybutyrate)production in oil seed leukoplasts of Brassica-napus[J].Planta,1999,209 (4):547-550.
[11]John M E,Keller G.Metaqbolie pathway engineering in cotton: Biosynthesis of polydroxybutyrate in fiber cell[J].Proc Natl Acad sel USA,1996,93:12768-12773.
[12]Zhang J Y,Ye L,Song Y R.Obtainment of transgenic tobacco harboring phbA,phbB and phbC genes by twice transformation [R].Acta Bot Sin,2001,43(1):59-62.
[13]Menzel G,Harloff H J,Jung C.Expression of bacterial poly (3-hydroxybutyrate)synthesis genes in hairy roots of sugar beet (Beta vulgaris L.)[J].Applied Microbiology and Biotechnology, 2003,60(5):571-576.
[14]謝安勇,崔曉江,宋艷茹,等.phbB、phbC基因克隆、序列分析及植物表達載體的構建[J].植物學報,1995,37(8):581-588.
[15]薩姆布魯克.分子克隆實驗指南[M].第2版.金冬雁等譯.北京:科學出版社,1992:1647-1653.
[16]Schagger H,Von Jagow G.Tricine-sodium dodecyl sulfatepolyacrylamidegel electrophoresis for the separation of protein inthe range from 1 to 100 ku[J].Analytical Biochemistry,1987,166: 368-379.
[17]Ye L,Li C,Song Y R.Cloning and sequencing of phbA gene of poly-β-hydroxybuty rate synthesis and its expression analysis[J]. Chin Sci Bull,1999,15(44):398-402.
[18]路子顯,魏曉麗.一種簡單有效的T7RNA聚合酶調(diào)控的植物基因表達系統(tǒng)[J].自然科學進展,2002(7):32-37.
[19]Der F W,Rosenberg A H,Dunn.use of T7RNA polymerase to direct expression of cloned genes[J].Methods Enzymol,1990,185: 60-89.
[20]聶新民,肖炳一,李小玲,等.新克隆的硝基還原酶基因NOR1的表達及其產(chǎn)物的純化[J].癌癥,2003,22(2):136-139.
[21]高閃電,常惠蕓,獨軍政,等.一種高效、穩(wěn)定的可溶性原核表達載體的構建及應用[J].華北農(nóng)學報,2009,24(6):46-49.
CANGJing1,JIANGXiaojuan1,XUZhichao2,LIN Zhongping2,DU Juan2(1.School of Life Sciences,Northeast Agricultural University,Harbin 150030, China;2.National Laboratory of Protein Engineering and Plant Genetic Engineering,Peking University,Beijing 100871,China)
The full-length cDNA sequence of NADPH-dependent acetyl-CoA enzyme reductase gene namedphbB(GenBank ID:KC191672)as the key enzymes of PHB synthase gene were cloned fromAlcaligenes faecalis(Alcaligenes eutrophus).According toentrophusPhbB(FJ897462.1)sequences that has been speculated.The gene homology was 70.99%,with the length of 740 bp encoded 246 aminoacids(aa).The recombinant plasmid named pET28a(+)-phbB-HE were constructed successfully.The products were identified by SDS-PAGE analysis,it confirmed that high efficiency expression of the phbB protein fragments(ca.31 ku)were demonstrated.It laid a solid foundation for further study of phbBgene activity and late protein identification.
poly-β-hydroxyl butyrate;recombinant expression;gene clone;purification;expression vector
Q785
A
1005-9369(2014)05-0037-07
2013-03-04
國家863計劃項目(2008AA05Z402)
蒼晶(1963-),女,教授,博士,博士生導師,研究方向為植物生理生化。E-mail:cangjing2003@163.com
時間2014-5-19 11:25:10[URL]http://www.cnki.net/kcms/detail/23.1391.S.20140519.1125.004.html
蒼晶,姜曉娟,徐志超,等.乙酰乙酰輔酶A還原酶基因phbB克隆及其表達初探[J].東北農(nóng)業(yè)大學學報,2014,45(5):37-43.
Cang Jing,Jiang Xiaojuan,Xu Zhichao,et al.Molecular cloning and primary expressed exploration of acetoacetyl-CoA reductase gene(phbB)[J].Journal of Northeast Agricultural University,2014,45(5):37-43.(in Chinese with English abstract)
Molecular cloning and primary expressed exploration of acetoacetyl- CoA reductase gene(phbB)