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        決明子生品及炮制品的抗氧化活性研究

        2014-01-09 07:38:34孔祥密王培卿康文藝
        關(guān)鍵詞:生品決明子浸膏

        孔祥密,王培卿,康文藝

        河南大學中藥研究所,開封 475004

        決明子為豆科草本植物決明(Cassia obtusifolia L.)或小決明(Cassia tora L.)的干燥成熟種子。其味甘、苦、咸,性微寒,歸肝、腎、大腸經(jīng),具有清肝明目、潤腸通便的功效[1]。在中國傳統(tǒng)醫(yī)學上用于保護肝臟[2],此外還用于治療目赤腫痛、羞明淚多、頭痛頭暈、大便秘結(jié)?,F(xiàn)代藥理學研究證明,決明子具有降血壓、降血脂、抗氧化、抗菌等活性[3],是一種被廣泛應用的藥用同源的植物?;瘜W研究表明,萘并吡喃酮類和蒽醌類化學物質(zhì)是決明子的主要藥效成分[4]。至今研究顯示決明子提取物可以抑制活性氧自由基活性,消除羥自由基,在細胞和細胞膜中與脂類結(jié)合而有效抑制脂質(zhì)的氧化過程[5]。鄭榮波,黃曉丹等[6]研究了決明子提取物對鏈脲佐菌素誘發(fā)糖尿病小鼠晶狀體氧化應激狀態(tài)的影響,發(fā)現(xiàn)決明子提取物可以通過清除自由基和抑制脂質(zhì)過氧化過程改善STZ 誘導糖尿病小鼠晶狀體內(nèi)的過氧化狀態(tài),說明決明子具有一定的抗氧化能力。本課題組采用DPPH、ABTS 和FRAP 三種方法對決明子及其炮制品的抗氧化活性進行了綜合考察,以評價不同炮制方法對決明子抗氧化作用的影響。

        1 儀器、材料與試劑

        1.1 主要儀器

        UV-2000 型紫外可見分光光度計(上海尤尼可儀器有限公司);旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(日本東京理化公司);電子天平(美國Mettler-Toledo 儀器有限公司);Multiskan MK3 酶標儀(美國Thermo Electron 公司)。

        1.2 材料

        決明子購于開封樂仁堂總店,經(jīng)河南大學中藥研究所李昌勤副教授鑒定為豆科草本植物決明(Cassia obtusifolia L.)或小決明(Cassia tora L.)的干燥成熟種子,標本存于河南大學中藥研究所。

        1.3 試劑

        DPPH(日本東京化成工業(yè)株式會社);[2,2'-連氨-(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二氨鹽](ABTS,美國Fluka 公司);Fe3+-三吡啶三啞嗪(tripyridyl-triazine,TPTZ;比利時Acrosorganics 公司);6-羥基-2,5,7,8-四甲基苯并二氫吡喃-2-羧酸(Trolox,美國Aldrich 公司);二丁基羥基甲苯(BHT,比利時Acros organics 公司);其他試劑均為分析純。

        2 實驗方法

        2.1 決明子炮制及浸膏提取

        決明子生品:決明子原藥材除去雜質(zhì),洗凈后干燥;炒決明子:取凈決明子500 g,置于鍋內(nèi)用中火,炒至顏色加深,斷面淺黃色,爆鳴聲減弱并有香氣溢出是,取出放涼;鹽決明子:取凈決明子500 g,加鹽水(2 kg/100 kg),拌勻悶透,置于鍋內(nèi)用文火加熱,炒至表面棕褐色,微鼓起,有香氣溢出,取出放涼;酒炙決明子:取凈決明子500 g,加入適量黃酒浸泡過夜,置于鍋內(nèi)用文火炒干,取出放涼;醋炙決明子:取凈決明子500 g,加入適量米醋浸泡過夜,置于鍋內(nèi)用文火炒干,取出放涼;酒蒸決明子:取凈決明子500 g,加入適量黃酒浸泡過夜,恒溫55 ℃蒸2 h,取出放涼。

        各取決明子生品、炒決明子、鹽決明子、酒炙決明子、醋炙決明子和酒蒸決明子200 g,用甲醇冷浸提取三次,回收溶劑,得甲醇總浸膏。甲醇總浸膏用10%甲醇水分散,依次用石油醚、乙酸乙酯和正丁醇萃取,得到?jīng)Q明子生品及5 種炮制品各石油醚部位、乙酸乙酯部位和正丁醇部位。

        2.2 抗氧化活性篩選

        2.2.1 DPPH 法

        按照文獻[7]的方法,在515 nm 波長處測定樣品及對照品BHT 對DPPH 自由基的清除能力。計算清除率及半數(shù)抑制率IC50值。

        2.2.2 ABTS 法

        按照文獻[8]的方法,在734 nm 波長處測定樣品及陽性對照BHT 對ABTS 自由基的清除能力。計算清除率及半數(shù)抑制率IC50值。

        2.2.3 FRAP 法

        按照文獻[9]的方法,在593 nm 波長處測定樣品及陽性對照BHT 還原Fe3+的能力,結(jié)果以Trolox 當量表示。當C(Trolox)=25~400 mol/L 時,有良好的線性關(guān)系(r=0.9996)。

        3 結(jié)果與分析

        3.1 對DPPH 自由基的清除能力

        表1 顯示,除酒炙、酒蒸和鹽蒸決明子EA 部位外其他決明子生品及其炮制品提取物均無清除DPPH 自由基的作用,酒炙、酒蒸和鹽蒸決明子EA 部位清除DPPH 自由基的能力(IC50分別為94.4、93.8 和104.6 μg/mL)遠弱于陽性對照BHT(IC50為23 μg/mL)。

        注:BHT 為陽性對照品。Note:BHT was used as positive control.

        圖1 炒決明子(A)、醋炙決明子(B)、酒蒸決明子(C)、酒炙決明子(D)、決明子生品(E)及鹽蒸決明子(F)各部位對ABTS自由基的影響Fig.1 Scavenging activities of different concentrations of fried(A),vinegar fried(B),wine steamed(C),wine fired(D),raw(E)and salt steamed(F)C.obtusifolia on ABTS free radical

        3.2 對ABTS 自由基的清除作用

        決明子及其炮制品提取部位的質(zhì)量濃度對ABTS 自由基的清除率的影響見圖1(A)~(F)。結(jié)果顯示,決明子生品及其炮制品各提取部位對ABTS自由基的清除率隨著質(zhì)量濃度的增加而增大。除炒決明子ME 總浸膏、醋炙決明子各提取部位、酒蒸決明子PE 部位、酒炙決明子PE 及ME 部位、決明子生品BU 及PE 部位和鹽蒸決明子ME 總浸膏外,其他部位當達到一定濃度后,再繼續(xù)增加濃度,抑制率變化不大,即抗氧化活性接近飽和。

        由表1 可以看出,決明子及其炮制品清除ABTS自由基的能力都弱于陽性對照BHT(IC50為2.3 μg/mL)。炒決明子、醋炙決明子和酒炙決明子PE 部位清除ABTS 自由基的能力(IC50分別為11.1、43.1 和47.1 μg/mL)強于決明子生品PE 部位(IC50為60.7 μg/mL);酒炙決明子和鹽蒸決明子EA 部位清除ABTS 自由基能力(IC50分別為8.1 和9.7 μg/mL)均強于決明子生品EA 部位(IC50為10.5 μg/mL);炒決明子、酒炙決明子、酒蒸決明子和鹽蒸決明子清除ABTS 的能力(IC50分別為11.7、13.7、15.3 和9.7 μg/mL)均強于決明子生品BU 部位(IC50為29.9 μg/mL)。

        3.3 對Fe3+的還原能力

        表1 顯示,決明子生品及炮制品各提取部位還原Fe3+的能力均弱于陽性對照BHT,炮制后的決明子ME 部位還原Fe3+的能力均降低;炒決明子、醋炙決明子和酒炙決明子PE 部位Fe3+的還原能力(TEAC 分別為208.85、50.3 和69.47 μmol/g)強于決明子生品PE 部位(TEAC=28.88 μmol/g);酒炙、酒蒸和鹽蒸決明子EA 部位Fe3+的還原能力(TEAC 分別為319.22、298.49 和290.92 μmol/g)強于決明子生品EA 部位(TEAC=195.59 μmol/g);炒炙、醋炙、酒炙、酒蒸及鹽蒸決明子BU 部位Fe3+的還原能力(TEAC 分別為120.96、47.87、152.88、175.23 和217.56 μmol/g)強于決明子生品BU 部位(TEAC=44.89 μmol/g)。

        4 結(jié)論

        本文首次采用DPPH、ABTS 和FRAP 3 種抗氧化方法,對決明子及其5 種炮制品不同提取部位進行研究,結(jié)果表明,決明子及其炮制品的抗氧化活性較弱,均低于陽性對照BHT。與生品相比,經(jīng)炮制后的決明子的抗氧化能力均發(fā)生了變化,此外,各部位的活性均與濃度呈正相關(guān)性,具有一定的濃度依賴性。

        1 China Pharmacopoeia Committee(國家藥典委員會).Pharmacopoeia of People's Republic of China(中華人民共和國藥典).Beijing:Chemical Industry Press,2005.98.

        2 Kang WY,Yu HL,Wang JX.α-Glucosidase inhibitory compounds from seeds of Cassia obtusifolia.Chem Nat Comp,2012,48:465-466.

        3 Mei QX(梅全喜).Modern Pharmacology and Clinical Application Manual(現(xiàn)代中藥藥理與臨床應用手冊),Beijing:China Press of Traditional Chinese Medicine,2008.232-233.

        4 Zhang QW(張啟偉),Yin J(陰健),Zhang J(張俊).Comparison of contents of some active components between crude and processed seeds of Cassia tora and their decoctions by HPLC.Chin Tradit Herb Drugs(中草藥),1996,27(2):79-81.

        5 Ju MS,Kim HG,Choi JG,et al.Cassiae semen,a seed of Cassia obtusifolia,has neuroprotective effects in Parkinson's disease models.Food Chem Toxicol,2010,48:2037-2044.

        6 Zheng RB(鄭榮波),Huang XD(黃曉丹),He RR(何榮榮),et al.Effects of Cassia obtusifolia extract on oxidative stress status in STZ-induced diabetic mice.Chin J Exp Tradit Med Form(中國實驗方劑學雜志),2012,18:233-237.

        7 Kang WY,Li CF,Liu YX.Antioxidant phenolic compounds and flavonoids of Mitragyna rotundifolia(Roxb.)Kuntze in vitro.Med Chem Res,2010,19:1222-1232.

        8 Kang WY,Wang JM.In vitro antioxidant properties and in vivo lowering blood lipid of Forsythia suspense leaves.Med Chem Res,2010,19:617-628.

        9 Zhao WE(趙文恩),Li QQ(李茜倩).Determination of total antioxidant capacity of red pigments from Chinese iujube peel by the ferric reducing/antioxidant power assay.J Zhengzhou Univ,Eng Sci(鄭州大學學報,工學版),2011,32(3):28-30,35.

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