覃 瑞,賴娟娟,李作洲,滿玉萍,王彥昌,*
(1中南民族大學 生命科學學院,武漢 430074;2中國科學院 武漢植物園, 植物種質(zhì)創(chuàng)新與特色農(nóng)業(yè)重點實驗室,武漢430074)
軟棗獼猴桃(Actinidiaarguta)為獼猴桃屬多年生木質(zhì)藤本植物[1],是該屬下進化地位較為原始的一個物種.其果實小,果面光滑無毛,富含多種人體必要的氨基酸、礦物質(zhì)和維生素,除可用于鮮食外,還是果汁、罐頭、果脯及釀酒的優(yōu)質(zhì)原料[1,2].我國和其他東北亞地區(qū)是軟棗獼猴桃野生資源的主要分布區(qū)[3],該種是獼猴桃屬下分布范圍最廣的物種,野外變異極為豐富.研究野生軟棗獼猴桃的遺傳多樣性對了解不同地區(qū)軟棗獼猴桃起源、進化、種植收集利用與保存均具有重要意義.
目前對該物種的遺傳多樣性了解有限,尤其對各分布區(qū)野生居群的遺傳評價較少.路文鵬[4]、黃岳等[5]利用RAPD技術(shù)對長白山小范圍分布的少量樣本進行了初步研究,但涉及取樣范圍小,不能代表一個地區(qū)整體或不同區(qū)域間的資源遺傳分化.而近年DNA標記技術(shù)的迅速發(fā)展為獼猴桃屬植物的系統(tǒng)關(guān)系等研究提供了手段,其中SSR(簡單重復序列)標記在植物的品種和親緣關(guān)系鑒定等方面得到了廣泛的應(yīng)用.SSR比其他分子標記具有位點豐富、共顯性、簡便易操作、重復性和穩(wěn)定性好等顯著優(yōu)勢[6].在主要栽培種中華獼猴桃中,已開發(fā)了大量SSR引物,但適用于野生軟棗獼猴桃居群遺傳多樣性評價的SSR引物還較缺乏,在我們前期篩選的軟棗獼猴桃引物基礎(chǔ)上[7],本研究進一步優(yōu)化擴增條件,篩選出了多態(tài)性較好適合軟棗野生居群分析的SSR引物,為該物種大格局遺傳多樣性研究提供了有效的分子工具.
從來自陜西眉縣、戶縣、吉林露水河、天全縣二郎山、陜西安康等5個軟棗獼猴桃(Actinidiaarguta)野生居群中隨機選擇8份樣本作為擴增篩選的樣品.引物篩選完成后,從天全縣二郎山選取15個樣品對篩選出的引物進行驗證分析,樣本分布的地理位置:經(jīng)度在29°54′54.65″~29°57′30.44″,緯度在 102°22′51.34″~102°24′32.61″,海拔高度在1316.7~1463.9m之間.
PCR擴增儀[TC-96/G/H(b)A,杭州博日科技有限公司],電泳儀(DYCZ-20E型,DYY-12型,北京六一儀器廠),離心機(eppendorf centrifuge5810),恒溫水浴鍋(普瑞斯機械有限公司),成像凝膠系統(tǒng)(Tanon 2500R),高壓滅菌鍋(HIRAYAMA),電子天平(上海浦春計量儀器有限公司).
1.2.1 DNA提取
取0.2 g軟棗獼猴桃葉片放入事先預冷的研缽中,加入液氮快速研磨后用經(jīng)典CTAB法[8]加以改進提取DNA.加入100 μL TE緩沖液于4℃下溶解DNA -20℃?zhèn)溆?
1.2.2 引物選擇
從來自于中華獼猴桃二倍體基因組SSR中選擇65對SSR引物[9]用于野生軟棗獼猴桃的SSR篩選.
1.2.3 PCR反應(yīng)
PCR反應(yīng)采用10 μL反應(yīng)體系,50~100 ng模板DNA 2 μL,10×buffer緩沖液1μL, MgCl20.6 μL,4×dNTPs 0.2 μL,SSR引物上游引物和下游引物各0.1 μL, Taq DNA 聚合酶0.1μL.用降落PCR進行擴增,反應(yīng)程序為:①95℃預變性5 min;②94℃變性50 s;③61℃退火50 s;④72℃延伸1 min;②~④5個循環(huán),每個循環(huán)中退火溫度降1℃;⑤94℃變性50 s;⑥56℃退火50 s;⑦72℃延伸1min;⑤~⑦35個循環(huán);⑧72℃保溫8min;⑨4℃保存樣品.
1.2.4 電泳檢測
通過瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物,通過凝膠成像系統(tǒng)觀察,將沒有擴增出來或者擴增率低于60%的引物剔除,將擴增率高于60%的引物在6%聚丙烯酰胺非變性凝膠上電泳分離1.5 h(恒定功率55W),銀染檢測.
1.2.5 群體驗證
從天全二郎山選取15個樣品對即將篩選出的引物進行驗證分析,將每對引物分別對應(yīng)該15個樣品進行SSR-PCR擴增,在6%聚丙烯酰胺非變性凝膠上電泳分離1.5h(恒定功率55W),讀取帶型.
1.2.6 SSR數(shù)據(jù)分析
所有材料各SSR位點的不同等位變異在聚丙烯酰胺凝膠上均表現(xiàn)為譜帶的有或無,將“有”賦值為“1”,將“無”賦值為“0”,構(gòu)建15對SSR引物擴增結(jié)果的數(shù)據(jù)庫,參考Korkovelos等的數(shù)據(jù)分析方法[10].通過treev32軟件進行個體聚類NJ數(shù)的構(gòu)建.
對所有樣品進行瓊脂糖檢測,結(jié)果見圖1.圖1中顯示為一條完整的清晰帶,沒有明顯的拖尾,也未見RNA條帶,說明DNA提取質(zhì)量高.完整性好[11],可用于SSR引物的篩選分析和其他相關(guān)試驗.
M) DNA Marker;1~18) 依次為:MQL-1,MQL-15,HQL-12,LSH-4,DBS-1,TYA-1,TYA-3 T,TYA-5、8~11、13、15~19
將65對選定的引物對來自不同群體的8個DNA樣品進行PCR擴增,擴增結(jié)果通過1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測,剔除未擴增出條帶的引物,結(jié)果見圖2、圖3.如圖2所示,引物UDK-125對應(yīng)的8個樣品均能擴增出來,引物UDK-131和引物UDK-158中有1~2個樣品未擴增出產(chǎn)物,選擇的引物進入第二輪篩選;如圖3所示,引物UDK-127,UDK-132,UDK-154對應(yīng)的8個樣品只有0~3個能擴增出來,故剔除.最終選出32對擴增產(chǎn)物較好的引物.
M) DNA Marker; 1~8)依次為:MQI-1、16,HQL-12、25,TYA-1、18,LSH-13,DBS-20;A~C依次為:UDK-125,131,158
M) DNA Marker; 1~8)依次為:MQI-1、16,HQL-12、25,TYA-1、18,LSH-13,DBS-20;A~C依次為:UDK-127,132,157
將選出的32對引物進行聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測(見圖4),8個樣品中擴增率大于等于38%的引物可用,擴增率低于38%的引物剔除.引物UDK-125、UDK-128、UDK-131擴增率均大于80%,而引物UDK-126擴增率則低于38%,故剔除.結(jié)果發(fā)現(xiàn)其中15對引物有擴增,3對引物的擴增率88%,3對引物擴增率75%,5對引物擴增效率為62%,2對引物擴增效率為50%,2對引物擴增效率為40%,其中1對引物擴增出的帶型為單一條帶即為單態(tài)性,其它14對均為多態(tài)性.篩選出的引物信息如表1.
M) 25bp ladder;125,126,128,131)依次為:UDK-125,UDK-126,UDK-128,UDK-131
表1 軟棗獼猴桃SSR分子標記可用引物序列和退火溫度
用篩選出的15對引物對二郎山軟棗獼猴桃的15個單株樣品進行SSR分析(見表2),每對引物都能擴增,總共擴增141個等位基因,平均等位基因數(shù)為9.4個,2對引物中有亞等位基因,擴增的等位基因數(shù)最多的18個,最少的2個,平均PIC值為0.745.引物UDK-125擴增的片段最長,引物UDK-099擴增的片段最短.同一個樣品在不同的引物中,等位基因數(shù)變變異較大,最低有5個不同的等位數(shù),最多8個不同等位基因數(shù);而同一個引物在不同樣品中,等位基因數(shù)變化范圍較小.
表2 二郎山15個樣品的SSR分析
篩選出的15對引物通過treev32軟件對天全二郎山15個個體作個體聚類NJ樹(見圖5),可將雅安天全二郎山15個個體分成三大組;TYA-11、1、8、5可聚為第一組,TYA-13、17、15、3、10、20、19可聚為第二組,TYA-6、18、9、16可聚為第三組;在第一組中TYA-8與TYA-5距離較近,第二組中的TYA-17與TYA-15,TYA-3與TYA-10,TYA-20與TYA-19之間的距離較近,第三組中TYA-6與TYA-18,TYA-9與TYA-16之間的距離較近;可推測這些距離較近的個體間親緣關(guān)系較近.
圖5 二郎山15個個體的聚類NJ樹
由于軟棗獼猴桃葉片中含有較多的糖分,用傳統(tǒng)的CTAB法不能提取高質(zhì)量的DNA.本文在傳統(tǒng)CTAB提取DNA的過程中有所改進,在研磨樣品以后不直接加入CTAB,而是先加入山梨醇洗液,盡量將葉片中釋放的糖分去掉,之后再加入CTAB裂解液,再回到傳統(tǒng)的步驟上[8].改進后提取的軟棗獼猴桃基因組DNA條帶清晰,沒有明顯拖尾,后期做SSR擴增反應(yīng)過程中,效果較好.
Testolin 等[9]利用中華獼猴桃基因組篩選出一批SSR引物最初用于遺傳作圖.根據(jù)前期已經(jīng)報道的從中華獼猴桃到軟棗獼猴桃SSR引物具有較高的通用性.本研究從來自不同地理居群中的少量樣本提取DNA,利用Testolin等[9]開發(fā)的中華獼猴桃65對SSR引物進行擴增,用瓊脂糖膠篩選出在多數(shù)樣本中有擴增條帶的引物32對,再利用6%的聚丙烯酰胺凝膠電泳進行篩選,得到有效引物引物15對,其中2對引物中有亞等位基因,1對引物具有單態(tài)性.本研究獲得的數(shù)據(jù)顯示,從中華獼猴桃到軟棗獼猴桃,基因組SSR引物的通用性為23%,而在Man等[7]研究得出兩個物種間SSR引物通用性可達到42%,該差異可能是由于軟棗獼猴桃野生居群的遺傳差異或者各自檢測的SSR在基因組上的分布差異所致. 篩選出的15對引物通過treev32軟件對天全二郎山15個個體作個體聚類NJ樹,可將這些個體分成三大組及六個不同的小組,從而清楚的得出個體與個體之間的親緣關(guān)系.在軟棗獼猴桃基因組還未測序的前提下,可使用目前已經(jīng)公布的中華獼猴桃EST庫和新近公布的“紅陽”基因組序列[9],開發(fā)出大量可用于軟棗獼猴桃資源評價及遺傳鑒定的可用標記.
本文在二郎山群體測試的平均PIC值為0.745,甚至高于Korkovelos等[10]在不同物種水平的PIC值,這可能是由于后者研究選擇的引物少(8對)所致,某些SSR片段屬于基因組中變異極高的區(qū)段,即使在物種內(nèi)居群水平上也具有很高的多態(tài)性,故選擇不同引物也必然會導致多態(tài)性變化.
由黃岳等[5]對長白山局部取樣的軟棗獼猴桃的RAPD分析可知,長白山地區(qū)的軟棗獼猴桃多樣性較高[5].本文利用SSR標記對四川天全二郎山地區(qū)的野生軟棗獼猴桃進行分析,獲得的多樣性指數(shù)較高,說明我國東北地區(qū)和西南地區(qū)軟棗獼猴桃資源的遺傳多樣性均較高,但由于采用的標記不同,無法平行比較,需要對跨區(qū)域居群樣本進一步統(tǒng)一分析,才能了解各地區(qū)軟棗獼猴桃資源遺傳多樣性水平.此外,對我國軟棗獼猴桃資源的遺傳評價研究中還需要進一步擴大居群數(shù)量和取樣范圍,以獲得更準確的結(jié)論.
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