尹儉儉,李秀景,鄭叢龍
(大連大學(xué)醫(yī)學(xué)院,遼寧大連116622)
副流感病毒(parainfluenza virus,PIV)屬于副黏病毒科,為負(fù)單鏈RNA病毒,主要存在于呼吸道分泌物內(nèi),是引發(fā)嬰幼兒呼吸道感染的重要病原體。其中,3型副流感病毒(PIV-3)僅次于呼吸道合胞病毒,能夠引發(fā)6個月以下嬰幼兒肺炎、支氣管炎[1]。當(dāng)感染PIV時,體內(nèi)可產(chǎn)生局部抗體和血清抗體,但這樣獲得的免疫力較差,且嬰幼兒抗體應(yīng)答能力相對較弱,持續(xù)時間短,容易反復(fù)感染。對此,國內(nèi)外還沒有特別有效的抗PIV治療藥物。因此,需要研發(fā)有效的藥物應(yīng)對PIV的潛在威脅。納米銀是將納米技術(shù)與金屬銀本身的抗菌防腐作用相結(jié)合而成的,已廣泛應(yīng)用于生物傳感、食品工業(yè)、化妝品和醫(yī)療設(shè)備[2],在醫(yī)學(xué)臨床領(lǐng)域,也具有較好的抗菌效果[3]。近些年來,有關(guān)納米銀抗病毒作用已有報道,其對人類免疫缺陷病毒、乙肝病毒和流感病毒等有明顯的抑制作用[4-6]。有關(guān)納米銀抗PIV作用及機(jī)制的研究報道較少,本文主要應(yīng)用MTT法、透射電鏡技術(shù),神經(jīng)氨酸酶活性抑制實驗和小鼠體內(nèi)實驗來初步探討納米銀抗PIV3的可能機(jī)制。
1.1.1 細(xì)胞株和病毒株 傳代細(xì)胞:狗腎細(xì)胞(MDCK)用于分離和培養(yǎng)PIV,購于大連市疾病預(yù)防和控制中心,經(jīng)本實驗室傳代后保存,并用含10%胎牛血清的DMEM傳代培養(yǎng)。病毒株:PIV3(血凝效價為1∶1 024),購自中國科學(xué)研究院武漢病毒研究所,經(jīng)本實驗室接種后凍存。
1.1.2 實驗動物 清潔級ICR小鼠40只,雌雄各半,體質(zhì)量18~22 g,由大連醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心提供,動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(遼)2008-0002。
1.1.3 主要試劑和試劑盒 DMEM:美國Gibco公司;納米銀溶液:由大連大學(xué)醫(yī)學(xué)院病原生物學(xué)研究組應(yīng)用化學(xué)還原法制得,質(zhì)量濃度為400 mg/L,顆粒平均粒徑約為10 nm,室溫保存6個月無沉積現(xiàn)象發(fā)生;四甲基偶氮唑藍(lán)(MTT):美國Sigma;二甲基亞砜(DMSO):上海生工;免疫熒光試劑盒:英國Dako Cytomation;神經(jīng)氨酸酶活性檢測試劑盒:江蘇碧云天;2%磷鎢酸負(fù)染液(pH=6.5):北京中鏡科儀;乙醚:北京化工廠分析純(純度≥99.5%)。
1.1.4 主要儀器 酶標(biāo)儀:瑞士TECAN;NU-5500E二氧化碳培養(yǎng)箱:NUAIR;BCN-1360B生物潔凈工作臺:北京東聯(lián)哈爾儀器制造有限公司;CKX44倒置顯微鏡、熒光顯微鏡:日本Olympus。
1.2.1 PIV3毒力測定 用DMEM細(xì)胞維持液將PIV3依次作 10 倍系列稀釋,配制得 10-1、10-2、10-3、10-4、10-55 個不同梯度的病毒液。按 100 μL/孔分別加至已鋪滿單層MDCK細(xì)胞的96孔板中,每個劑量設(shè)置6個復(fù)孔,同時設(shè)正常細(xì)胞對照,將其置于37℃ 5%CO2孵箱培養(yǎng)2 h,棄去上清,PBS吹洗3遍,補加細(xì)胞維持液100 μL/孔繼續(xù)培養(yǎng),倒置顯微鏡下每日觀察,連續(xù)觀察6 d,培養(yǎng)結(jié)束棄去上清,PBS洗滌3次,按25 μL/孔加 MTT,放置在37℃,5%CO2孵箱培養(yǎng)4 h,棄上清后加入DMSO 150 μL/孔,置入酶標(biāo)儀中,內(nèi)部震蕩混勻15 min后測光密度D(492 nm),實驗重復(fù)3次。計算各組細(xì)胞存活率,根據(jù)Reed-Muench法,距離比例=(高于50%病變率的百分?jǐn)?shù)-50%)/(高于50%病變率的百分?jǐn)?shù)-低于50%病變率的百分?jǐn)?shù)),lg半數(shù)感染劑量(TCID50)=距離比例×稀釋度對數(shù)之間的差+高于50%病變率的稀釋度的對數(shù),計算PIV3的TCID50。
1.2.2 不同途徑下納米銀體外對PIV3感染MDCK的抑制作用
1.2.2.1 納米銀對PIV3的直接滅活作用(直接滅活組) 先將25 mg/L的納米銀與等體積100 TCID50的PIV3液充分混合作用2 h,取混合液按100 μL/孔加至長滿單層MDCK的培養(yǎng)板,37℃,5%CO2孵育2 h,棄上清,PBS吹洗3次,加細(xì)胞維持液100 μL/孔繼續(xù)培養(yǎng),觀察細(xì)胞形態(tài)變化。細(xì)胞存活率檢測方法同上。
1.2.2.2 納米銀對PIV3吸附和侵入MDCK的阻斷作用(預(yù)防給藥組) 將25 mg/L納米銀按100 μL/孔加至長滿單層MDCK的培養(yǎng)板,孵育2 h,棄上清,PBS吹洗3次;然后將100 TCID50的 PIV3液按100 μL/孔加入上述處理的培養(yǎng)板,37℃,5%CO2吸附2 h,棄上清,PBS吹洗3次,最后加細(xì)胞維持液100 μL/孔繼續(xù)培養(yǎng),觀察細(xì)胞形態(tài)變化。當(dāng)病毒對照組細(xì)胞形態(tài)變化達(dá)75%以上時,采用MTT法檢測各組細(xì)胞的存活率。
1.2.2.3 納米銀對PIV3子代病毒體增殖的抑制作用(治療給藥組) 將100 TCID50的PIV3液按100 μL/孔加至長滿單層MDCK的培養(yǎng)板,充分吸附2 h,棄病毒液,PBS吹洗3次,再將25 mg/L的納米銀溶液按100 μL/孔加入上述處理的培養(yǎng)板中,37℃,5%CO2孵育2 h,棄上清,PBS吹洗3次,補加維持液100 μL/孔繼續(xù)培養(yǎng),觀察細(xì)胞形態(tài)變化。細(xì)胞存活率檢測方法同上。
同時設(shè)正常細(xì)胞組、病毒對照組、納米銀對照組,每個質(zhì)量濃度設(shè)置6個復(fù)孔,MTT法檢測細(xì)胞存活率,實驗重復(fù)3次。
1.2.3 免疫熒光法檢測納米銀在MDCK內(nèi)對PIV3的抑制作用 待MDCK在附有蓋玻片的6孔培養(yǎng)板中長至75%左右時,按照上述3種不同途徑處理MDCK后進(jìn)行免疫熒光檢測。當(dāng)病毒對照組細(xì)胞形態(tài)顯示明顯病變時(達(dá)75%以上),取出蓋玻片,用冰浴上的PBS吹洗3次,4℃預(yù)冷丙酮固定30 min,PBS吹洗3次,滴加30 μL免疫染色封閉液,37℃孵育30 min,PBS吹洗3次,然后再滴加30 μL用FITC標(biāo)記的抗體于各蓋玻片上,37℃孵育30 min,取下蓋玻片,PBS吹洗3次,用濾紙吸干薄片邊緣液體,封片液封片,置于熒光顯微鏡下觀察并拍照記錄。
1.2.4 神經(jīng)氨酸酶活性抑制實驗 PIV3的神經(jīng)氨酸酶活性可以通過神經(jīng)氨酸酶抑制實驗來檢測[7]。按照試劑盒要求操作,病毒液在室溫條件下分別與75 mg/L和37.5 mg/L的納米銀作用30 min和60 min,同時設(shè)陽性對照和陰性對照,加入熒光酶作用底物充分混勻,37℃ 孵育10 min。設(shè)定激發(fā)波長和發(fā)射波長分別為355 nm和460 nm,測定熒光強度值,并計算神經(jīng)氨酸酶活性的抑制百分率。
1.2.5 透射電鏡負(fù)染色法觀察納米銀對PIV3粒子的破壞作用 將150 mg/L納米銀與PIV3液等體積混合,兩者充分作用30,60和120 min;鑷子夾住銅網(wǎng)邊緣并浸沒于上述樣品中靜置20 min;夾出,用濾紙將銅網(wǎng)邊緣吸去懸液,自然晾干至肉眼看不到殘留液后,將銅網(wǎng)浸沒于磷鎢酸負(fù)染液中靜置3~5 min;干燥后用透射電鏡觀察。
1.2.6 納米銀對小鼠PIV感染治療的作用效果
1.2.6.1 分組 將小鼠隨機(jī)分成5組:正常對照組、陽性對照組、納米銀對照組、病毒對照組和納米銀治療組(納米銀質(zhì)量溶度為400 mg/L),每組8只,雌雄各半,分籠飼養(yǎng)。
1.2.6.2 納米銀治療組動物模型的建立和肺組織病理學(xué)檢查 小鼠經(jīng)乙醚麻醉,當(dāng)進(jìn)入麻醉狀態(tài)且用鼻呼吸急促時,迅速進(jìn)行滴鼻。正常對照組和納米銀對照組滴鼻40 μL生理鹽水,陽性對照組、病毒對照組和納米銀治療組滴鼻40 μL PIV3液。滴病毒液4 h后進(jìn)行治療:病毒照組和正常對照組滴生理鹽水40 μL,納米銀治療組和納米銀對照組滴納米銀40 μL,陽性對照組采用利巴韋林口服藥灌胃,此為第1次治療。此后每隔24 h按此操作進(jìn)行1次治療,總計3次。4 d后無菌剖取肺組織,用10%甲醛固定作病理切片,于光學(xué)顯微鏡下觀察病理變化。
采用SPSS 17.0統(tǒng)計學(xué)軟件處理數(shù)據(jù),計量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示。多組間均數(shù)比較采用單因素方差分析,進(jìn)一步兩兩比較采用LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
納米銀對MDCK作用的最大無毒質(zhì)量濃度(TC0)為 25 mg/L[8],PIV3 對 MDCK 細(xì)胞作用的TCID50為10-1.35/mL。當(dāng)納米銀濃度大于 25 mg/L后,則開始抑制MDCK生長。納米銀對MDCK的毒性作用主要表現(xiàn)為細(xì)胞顆粒增多,大小不均,增殖緩慢,細(xì)胞回縮、變圓、成串脫落死亡。納米銀對細(xì)胞的毒性作用隨著納米銀溶液質(zhì)量濃度的降低而降低,細(xì)胞存活率相應(yīng)增加。
結(jié)果表明,納米銀處理組(直接滅活組,預(yù)防給藥組,治療給藥組)的細(xì)胞存活率與病毒對照組相比,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。見表1。
表1 不同組MTT檢測結(jié)果的比較±sTab 1 Comparison of MTT assay results in different groups
表1 不同組MTT檢測結(jié)果的比較±sTab 1 Comparison of MTT assay results in different groups
a:P <0.01,與病毒對照組比較
組別 MTT值 細(xì)胞存活率/%直接滅活組 0.8273 ±0.04 94.81 ±0.02a預(yù)防給藥組 0.8120 ±0.04 93.05 ±0.05a治療給藥組 0.7882 ±0.01 90.32 ±0.02a正常細(xì)胞組 0.8727±0.04 —病毒對照組 0.2470 ±0.05 25.50 ±0.06納米銀對照組 0.8308 ±0.03 95.21 ±0.04 F 值 361.542 332.327 P值 <0.01 <0.01
待MDCK在置有蓋玻片的6孔培養(yǎng)板上鋪滿單層后,將納米銀和PIV3作不同的處理,封片,于倒置顯微鏡下觀察。如圖1所示,正常MDCK組未見特異性黃綠色熒光,細(xì)胞形態(tài)正常;病毒對照組和溶劑對照組(溶劑與PIV3混合組)中,MDCK均出現(xiàn)了很強的特異性黃綠色熒光,細(xì)胞腫脹變圓、間隙增大、細(xì)胞死亡或脫落;預(yù)防用藥組、直接滅活組、治療用藥組的細(xì)胞內(nèi)特異性熒光均很少見,細(xì)胞形態(tài)變化不大,細(xì)胞稍微回縮,但形態(tài)基本正常。
圖1 不同組細(xì)胞的免疫熒光法檢測結(jié)果Fig 1 Immunofluorescence analysis of cells in different groups
MTT和免疫熒光的結(jié)果表明,納米銀能明顯抑制PIV3的復(fù)制和子代病毒的合成,對PIV3的侵入有一定的阻斷作用,對PIV3及其吸附有破壞作用。
不同質(zhì)量濃度的納米銀(75 mg/L和37.5 mg/L)分別與PIV3相互作用30 min和60 min,再孵育10 min,納米銀對PIV3神經(jīng)氨酸酶活性的抑制率均高于80%,而病毒對照組和溶劑對照組的抑制率均低于20%(圖2)。神經(jīng)氨酸酶催化唾液酸與糖蛋白之間糖苷鍵的水解,協(xié)助病毒顆粒穿過呼吸道黏液和促進(jìn)子代病毒體脫離于感染細(xì)胞[9]。上述結(jié)果表明,納米銀可以通過作用于PIV3神經(jīng)氨酸酶藥物靶點來阻斷病毒對細(xì)胞的感染。
PIV3液經(jīng)透射電鏡負(fù)染色后,可觀察到正常PIV3顆粒,自外而內(nèi)可見清晰的包膜和基質(zhì),符合PIV3的形態(tài)特征。PIV3與納米銀相互作用30 min后,其形態(tài)部分缺損;相互作用60 min,結(jié)構(gòu)完全被破壞;作用120 min,病毒被破壞成更小的碎片,形態(tài)已無法觀察。見圖3。結(jié)果表明,納米銀顆??赡苤苯悠茐腜IV3的形態(tài)和結(jié)構(gòu)。
圖2 不同組神經(jīng)氨酸酶活性的抑制率Fig 2 The inhibition rate of neuraminidase activity in different groups
圖3 3型副流感病毒的形態(tài)結(jié)構(gòu)(透射電鏡負(fù)染×200 000)Fig 3 Transmission electron microscope negative staining of parainfluenza virus 3(PIV3)
2.6.1 一般生理狀況 正常對照組ICR小鼠毛發(fā)光滑,活動敏捷,飲食、飲水正常,體質(zhì)量持續(xù)增加;病毒對照組滴病毒后3 d,活動減少,毛色不光澤,開始出現(xiàn)戰(zhàn)栗,飲食和飲水減少,體質(zhì)量減輕。病毒對照組體質(zhì)量與納米銀治療組比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義。
2.6.2 肺指數(shù) 肺指數(shù)用來表示肺病變的嚴(yán)重程度。PIV3感染小鼠后引起肺部炎性細(xì)胞浸潤、水腫、充血,導(dǎo)致肺重量增加,肺指數(shù)增大。病毒對照組小鼠肺指數(shù)高于正常對照組,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義;肉眼觀,肺組織部分充血,水腫,顏色暗紅。納米銀治療組的小鼠肺組織與正常對照組比較接近,顏色呈粉紅,無差異。
2.6.3 肺組織病理變化 無菌剖取小鼠肺組織,可見正常對照組和納米銀對照組小鼠肺呈粉紅色,體積較小;病毒對照組小鼠肺充血水腫,顏色部分暗紅,體積增大;納米銀治療組小鼠肺體積大小與正常小鼠相近,但部分部位有充血現(xiàn)象。光鏡下結(jié)果顯示(圖4),正常對照組和納米銀對照組小鼠肺組織的形態(tài)結(jié)構(gòu)完整,肺泡大小均一,肺泡壁厚度正常,外周未見有炎性細(xì)胞浸潤;病毒對照組小鼠肺組織的形態(tài)結(jié)構(gòu)消失,肺泡壁增厚,組織間可見大量紅細(xì)胞,肺泡腔有炎性細(xì)胞浸潤;納米銀治療組小鼠肺組織的病變明顯減輕,肺組織形態(tài)結(jié)構(gòu)較為完整,肺泡腔中炎性細(xì)胞浸潤較少。
圖4 各組小鼠肺組織病理形態(tài)(HE染色×200)Fig 4 Pathological images of lung tissues in different mouse groups
副流感病毒包膜表面突出有2種重要的糖蛋白:HN糖蛋白和F糖蛋白。HN糖蛋白通過與宿主細(xì)胞膜上的唾液酸受體結(jié)合,主要協(xié)助病毒表面蛋白和宿主細(xì)胞包膜之間的相互融合,促進(jìn)病毒進(jìn)入細(xì)胞,與病毒的裝配釋放有關(guān)[10]。F糖蛋白具有使細(xì)胞融合劑溶解紅細(xì)胞的作用[1],是病毒與宿主細(xì)胞融合所必需的,能夠促進(jìn)病毒核衣殼進(jìn)入并感染宿主細(xì)胞。銀有很強的殺菌能力,在古代人們就認(rèn)識到銀制品具有抗菌防腐作用,并將其用于實際生活中。納米銀在較低濃度下可對細(xì)菌和真菌產(chǎn)生抑制作用[2],主要通過與菌體中酶蛋白的巰基(-SH)相結(jié)合,使酶失活,導(dǎo)致病原菌不能代謝而死亡[11]。此外,納米銀易通過化學(xué)鍵與外來原子結(jié)合,具備吸附病毒的能力[12]。
本實驗探討了納米銀對PIV3的抑制作用及其機(jī)制。MTT結(jié)果顯示,3種不同給藥方式下的納米銀處理組與PIV3對照組相比,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);熒光實驗結(jié)果顯示,病毒對照組細(xì)胞內(nèi)部的免疫熒光強度明顯強于各實驗組,說明納米銀在體外對PIV3有抑制作用,其作用機(jī)制可能是納米銀與細(xì)胞表面受體結(jié)合,改變膜表面蛋白的構(gòu)象,導(dǎo)致對PIV3敏感的細(xì)胞變?yōu)椴幻舾械募?xì)胞;或者封閉細(xì)胞和病毒膜上的受體,阻止病毒的吸附,使其不能進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)復(fù)制。納米銀作用組的神經(jīng)氨酸酶活性明顯降低(抑制率高于80%),說明納米銀破壞或抑制了PIV3膜上的血凝素——神經(jīng)氨酸酶蛋白,即破壞或抑制了神經(jīng)氨酸酶的生物活性。透射電鏡顯示,與PIV3形態(tài)相比,納米銀與病毒作用30,60,120 min后,對病毒形態(tài)結(jié)構(gòu)的破壞作用隨著時間的延長而增加,說明納米銀能直接破壞PIV3的形態(tài)和結(jié)構(gòu),進(jìn)而可能影響某些相關(guān)蛋白的表達(dá)和遺傳物質(zhì)的復(fù)制。
動物實驗結(jié)果顯示,納米銀治療組、陽性對照組和正常對照組3組小鼠生理狀態(tài)沒有差異,而病毒對照組小鼠出現(xiàn)飲食飲水下降,毛色變暗,沒有光澤;從病理切片上看,納米銀治療組小鼠的肺組織接近正常小鼠,而病毒對照組小鼠的肺組織有充血,水腫,炎性浸潤等明顯的病變。在PIV3感染的ICR小鼠動物模型中,病毒對照組小鼠體質(zhì)量3~5 d出現(xiàn)一過性降低,之后回升。5 d后解剖小鼠,比較小鼠生理狀態(tài)、肺組織切片等指標(biāo),差異均有統(tǒng)計學(xué)意義,但小鼠體質(zhì)量、死亡率、肺指數(shù)等指標(biāo)差異無統(tǒng)計學(xué)意義;結(jié)果表明,納米銀對小鼠PIV3有一定的治療作用。小鼠體質(zhì)量、死亡率、肺指數(shù)等指標(biāo)差異無統(tǒng)計學(xué)意義的原因可能因為ICR小鼠對PIV3產(chǎn)生了免疫作用,從而掩蓋了納米銀的部分治療作用。進(jìn)一步實驗應(yīng)該選擇和建立更敏感的動物模型,或縮短動物感染后檢測時間,檢測鼠肺中病毒滴度及動物發(fā)病率和死亡率。
納米銀對小鼠毒理安全性的研究本實驗室已報道,證實其低毒性對黏膜和皮膚無刺激性[13]。有研究[14]顯示,連續(xù)吸入60 nm的納米銀顆粒28 d,其呼吸系統(tǒng)和血液生化指標(biāo)沒有顯著變化。Stebounova等[15]研究發(fā)現(xiàn),小鼠暴露在納米銀的環(huán)境中(3.3 mg/m3)連續(xù)吸入40 h,誘導(dǎo)的肺部毒性和炎癥反應(yīng)非常低;與暴露在新鮮空氣環(huán)境中的小鼠比較,其肺功能、死亡率、臨床觀察、食物攝入量、體質(zhì)量等指標(biāo)沒有明顯差異[16]。納米銀的低毒性、無耐藥性以及廣譜抗病毒和抗菌特性,在呼吸道病毒感染的預(yù)防和治療中具有獨特的價值,值得深入研究。本研究中納米銀確切的抗PIV3機(jī)制還需作進(jìn)一步探討,如通過反轉(zhuǎn)錄PCR、實時定量PCR等技術(shù)可探討納米銀對PIV3核酸的影響作用;通過蛋白印跡技術(shù)可探討納米銀對宿主細(xì)胞信號通路傳導(dǎo)的影響,解釋納米銀間接抗病毒的作用和機(jī)制。
[1] Henrickson KJ.Parainfluenza viruses[J].Clin Microbiol Rev,2003,16(2):242-264.
[2] You C,Han C,Wang X,et al.The progress of silver nanoparticles in the antibacterial mechanism,clinical application and cytotoxicity[J].Mol Biol Rep,2012,39(9):9193-9201.
[3] 王冬梅,莫遺盛,江曉筠.納米銀臨床應(yīng)用研究進(jìn)展[J].中國藥房,2007,18(5):386-387.
[4] Sun RW,Chen R,Chung NP,et al.Silver nanoparticles fabricated in Hepes buffer exhibit cytoprotective activities toward HIV-1 infected cells[J].Chem Commun(Camb),2005(40):5059-5061.
[5] Lu L,Sun RW,Chen R,et al.Silver nanoparticles inhibit hepatitis B virus replication[J].Antivir Ther,2008,13(2):253-262.
[6] 向冬喜,蔣曉婷,李秀景,等.納米銀體外抗H3N2流感病毒作用及其機(jī)制初步探討[J].華西醫(yī)學(xué),2011,26(1):4-7.
[7] Gubareva LV.Molecular mechanisms of influenza virus resistance to neuraminidase inhibitors[J].Virus Res,2004,103(1/2):199-203.
[8] 裘紅梅,于舒,苗迎秋,等.納米銀抑制副流感病毒的研究[J].實用醫(yī)學(xué)雜志,2010,26(14):2473-2476.
[9] Kim SH,Subbiah M,Samuel AS,et al.Roles of the fusion and hemagglutinin-neuraminidase proteins in replication,tropism,and pathogenicity of avian paramyxoviruses[J].J Virol,2011,85(17):8582 -8596.
[10] Sealy R,Surman S,Hurwitz JL,et al.Antibody response to influenza infection of mice:different patterns for glycoprotein and nucleocapside antigens[J].Immunology,2003,108(4):431-439.
[11] Wilkinson LJ,White RJ,Chipman JK.Silver and nanoparticles of silver in wound dressings:a review of efficacy and safety[J].J Wound Care,2011,20(11):543-549.
[12] Elechiguerra JL,Burt JL,Morones JR,et al.Interaction of silve nanoparticles with HIV-1[J].J Nanobiotechnology,2005,3(6):1-10.
[13] 向冬喜,陳娜娜,裘紅梅,等.納米銀毒理學(xué)安全性研究[J].實用醫(yī)學(xué)雜志,2010,26(11):1906-1908.
[14] Ji JH,Jung JH,Kim SS,et al.Twenty-eight-day inhalation toxicity study of silver nanoparticles in Sprague-Dawley rats[J].Inhal Toxicol,2007,19(10):857 -871.
[15] Stebounova LV,Adamcakova-Dodd A,Kim JS,et al.Nanosilver induces minimal lung toxicity or inflammation in a subacute murine inhalation model[J].Part Fibre Toxicol,2011,8(1):1 -12.
[16] Sung JH,Ji JH,Song KS,et al.Acute inhalation toxicity of silver nanoparticles[J].Toxicol Ind Health,2011,27(2):149-154.