曹國珍,陸 棟,張苗苗,王菊芳,馬 良,李 欣,李文建*
(1.中國科學(xué)院近代物理研究所,甘肅蘭州 730000;2.蘭州大學(xué)藥學(xué)院,甘肅蘭州 730000)
釀酒酵母基因組的完整性經(jīng)常面臨著來自環(huán)境物質(zhì)導(dǎo)致的DNA損傷的挑戰(zhàn),DNA損傷可引起釀酒酵母表型的突變,也可以造成受損基因在表達(dá)上的定量變化。然而,在長期的進(jìn)化過程中,釀酒酵母形成了完備 DNA損傷應(yīng)答(DNA damage response,DDR)體系,DDR由一系列對(duì)DNA損傷進(jìn)行識(shí)別、信號(hào)傳導(dǎo)和修復(fù)的蛋白組成[1]。一旦DNA損傷被機(jī)體感知,則發(fā)生以下效應(yīng):(1)通過停滯細(xì)胞周期來應(yīng)對(duì)DNA損傷,為DNA修復(fù)爭(zhēng)取時(shí)間;(2)通過信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)激活DDR體系;(3)通過誘導(dǎo)活性直接逆轉(zhuǎn)、切除損傷或?qū)NA損傷產(chǎn)生耐受[2,3]。如果損傷得不到有效的修復(fù),則會(huì)誘導(dǎo)細(xì)胞程序性死亡。當(dāng)釀酒酵母DNA發(fā)生多種形式的損傷時(shí),細(xì)胞就會(huì)啟動(dòng)相應(yīng)修復(fù)途徑,包括:同源重組修復(fù)(homologous recombination repair,HRR)、堿基錯(cuò)配修復(fù)(mismatch repair,MMR)、堿基切除修復(fù)(base excision repair,BER)以及核苷酸切除修復(fù)(nucleotide excision repair,NER)等。
重離子輻照對(duì)生物體的作用主要是通過能量沉積、質(zhì)量沉積以及動(dòng)量傳遞等過程實(shí)現(xiàn)的。由于其作用過程的復(fù)雜性決定了自身的特點(diǎn),如:具有高的傳能線密度(linear energy transfer,LET),從而使生物介質(zhì)產(chǎn)生高密度的電離和激發(fā)事件;在射程的末端有尖銳的能量損失峰,即Bragg峰;Bragg峰區(qū)域具有較高的相對(duì)生物學(xué)效應(yīng)(relative biological effectiveness,RBE);輻射效應(yīng)受組織中的含氧量影響很小,即氧增比(oxygen enhancement ratio,OER)低;輻射敏感性受細(xì)胞周期的影響較小;與生物介質(zhì)作用時(shí)具有較大的損傷截面;產(chǎn)生的DNA損傷是非隨機(jī)分布的成簇?fù)p傷(clustered damage,CD)等。由于重離子輻照的眾多特點(diǎn),使之一直是輻射研究的熱點(diǎn)問題。當(dāng)重離子輻照釀酒酵母時(shí),其關(guān)鍵靶分子DNA將發(fā)生各種形式的損傷;具體包括:DNA單鏈斷裂(single-strand break,SSB)、雙 鏈 斷 裂 (double-strand break,DSB)、堿基插入或丟失以及DNA氧化損傷等單位點(diǎn)損傷,同時(shí)也伴隨單位點(diǎn)損傷的復(fù)合,即成簇?fù)p傷。一般來講單位點(diǎn)損傷相對(duì)容易修復(fù),成簇?fù)p傷的修復(fù)涉及到眾多環(huán)節(jié),多是幾種修復(fù)機(jī)制的結(jié)合,對(duì)于這類損傷,修復(fù)系統(tǒng)往往不能兼顧且容易出現(xiàn)差錯(cuò),再者修復(fù)酶也會(huì)因重離子輻照導(dǎo)致部分失活,從而不能完全激活修復(fù)系統(tǒng)。所以重離子輻照誘導(dǎo)的成簇?fù)p傷對(duì)釀酒酵母的影響較大。對(duì)于這類損傷,釀酒酵母中主要發(fā)揮修復(fù)作用的是HRR、MMR和BER途徑,這三條途徑相互協(xié)調(diào)、相互配合,形成龐大的監(jiān)控網(wǎng)絡(luò),共同發(fā)揮對(duì)相應(yīng)損傷的修復(fù)作用,從而在重離子輻照的環(huán)境下維持基因組的穩(wěn)定性[4]。
重離子輻照對(duì)釀酒酵母的直接損傷引起DNA的鏈斷裂,包括DSB和SSB,其中最為嚴(yán)重的生物學(xué)后果是DSB。對(duì)于DNA的鏈斷裂,主要由HRR途徑進(jìn)行修復(fù),HRR是在多個(gè)蛋白分子或蛋白復(fù)合體嚴(yán)格有序的調(diào)控下運(yùn)行的[5]。像BER和NER途徑多發(fā)生在DNA復(fù)制之前,統(tǒng)稱為復(fù)制前修復(fù)(pre-replication repair);然而,當(dāng)DNA開始復(fù)制時(shí)還未修復(fù)的損傷部位也可以先復(fù)制后修復(fù),但這樣會(huì)影響復(fù)制酶系的作用,結(jié)果子鏈DNA在損傷對(duì)應(yīng)處留下缺口,這種子代DNA遺傳信息的缺損可以通過遺傳重組加以彌補(bǔ),即從同源DNA的母鏈上將相應(yīng)核苷酸序列移至子鏈缺口處,然后通過新合成的序列來填補(bǔ)母鏈的空缺,此過程就是HRR,因多發(fā)生在復(fù)制之后,故稱為復(fù)制后修復(fù)(post-replication repair)[6]。
HRR的分子機(jī)制最早在大腸桿菌(E.coli)和酵母(S.cerevisiae)中被闡明,在哺乳動(dòng)物中高度保守。在真核生物基因組中,大量的重復(fù)序列為DSB通過非等位基因的重復(fù)序列之間進(jìn)行HRR提供了充足的機(jī)會(huì)。HRR途徑修復(fù)DSB時(shí),需要在受損DNA和未受損DNA之間存在相同序列,以未受損DNA分子作為模板,其中首選是姐妹染色單體,然后利用同源重組對(duì)DSB進(jìn)行修復(fù)。HRR的過程為:(1)DNA損傷位點(diǎn)的加工[7];MRE11/RAD50/NXS2(MRN)三元復(fù)合物中的MRE11對(duì)DNA斷裂末端進(jìn)行5'→3'方向的切割,使3'單鏈DNA末端充分暴露,然后與RAD52結(jié)合。RAD52是一個(gè)大分子七聚體,可以保護(hù)伸出的DNA末端不被降解,再與復(fù)制蛋白A(replication protein A,RPA)分子結(jié)合,形成穩(wěn)定的單鏈前體物[8]。(2)鏈侵入和修復(fù)性合成;在此階段發(fā)揮重要作用的是HRR核心蛋白R(shí)AD51,在它的催化作用下,進(jìn)行同源序列的尋找、鏈配對(duì)以及鏈交換等過程,RAD51與3'單鏈DNA上的RPA分子結(jié)合形成復(fù)合物,為Holliday聯(lián)結(jié)(Holliday junction)的形成做準(zhǔn)備[9]。(3)Holliday聯(lián)結(jié)的形成與解離;上述復(fù)合物識(shí)別同源DNA模板并催化DNA鏈的配對(duì)、延伸,形成Holliday聯(lián)結(jié),完成鏈交換過程,然后Holliday聯(lián)結(jié)經(jīng)核酸酶切割以后,再由連接酶連接,從而使Holliday聯(lián)結(jié)解體,得到完整的雙鏈 DNA 分子[7,9](如圖1)。第二個(gè)損傷鏈可以由二次重組來修復(fù),也可以以被替換的受體鏈為模版合成新的互補(bǔ)鏈。
圖1 釀酒酵母DNA同源重組修復(fù)過程Fig.1 The process of DNA homologous recombination repair in Saccharomyces cerevisiaes
Rad52上位顯相組(epistasis groups)包括Rad50-57、Rad59、Mre11和 Xrs2共11個(gè)基因,其中保守性最高的是Rad51和Rad54,Mre11、Rad52和Rad50的主要序列中也存在保守區(qū)域。Rad52上位顯相組基因主要序列的保守性表明對(duì)應(yīng)蛋白的功能也具有保守性。釀酒酵母中,Rad52上位顯相組基因在DNA的DSB修復(fù)及遺傳重組過程發(fā)揮著重要作用,HRR途徑也主要依賴于這類基因。
RAD51作為HRR中的核心蛋白,對(duì)于它的研究最為廣泛,它在鏈侵入和修復(fù)性合成過程中發(fā)揮關(guān)鍵作用。RAD52、RAD54、RAD55、RAD57 及 RPA 能促進(jìn)RAD51的鏈交換活性,其中RAD55、RAD57與RAD51的氨基酸序列具有較高的相似性,故稱RAD55與RAD57為RAD51的同系物,RAD51與其同系物RAD55和RAD57形成雜合二聚體,該二聚體具有保守的ATP結(jié)合域和催化ATP水解的能力,從而可以促進(jìn)RAD51發(fā)揮鏈轉(zhuǎn)移功能,但RAD55及RAD57蛋白質(zhì)均不表現(xiàn)出自身相互作用[10]。RAD51除了可以介導(dǎo)鏈侵入和修復(fù)性合成以外,還對(duì)于電離輻照等引起的DNA雙鏈斷裂在得不到適當(dāng)修復(fù)時(shí)導(dǎo)致的染色體移位有抑制作用。MANTHEY G M等[11]研究認(rèn)為RAD51作為DNA雙鏈斷裂修復(fù)所必需的蛋白,可以介導(dǎo)解離重復(fù)序列的基因轉(zhuǎn)化,也可以通過單鏈退火效應(yīng)抑制染色體轉(zhuǎn)位的形成;這說明RAD51可以通過抑制染色體移位來減輕或消除DNA雙鍵斷裂帶來的損傷。另外,RAD51與腫瘤相關(guān)基因具有一定的作用,它表達(dá)水平的失調(diào)可導(dǎo)致腫瘤的發(fā)生、發(fā)展,因而對(duì)于RAD51的研究還具有重要的臨床意義。如杜利清等[12]研究發(fā)現(xiàn)RAD51蛋白在人體骨肉瘤組織肌細(xì)胞中高表達(dá),然而這種高表達(dá)極有可能參與了骨肉瘤的化療抵抗。不僅在HRR中Rad52上位顯相組發(fā)揮著重要作用,而且非同源重組也主要由它來調(diào)控。釀酒酵母中,Mre11、Rad50和Xrs2突變使得非同源重組途徑對(duì)DSB的修復(fù)能力較野生型釀酒酵母明顯降低,這一過程不受 Rad51、Rad52、Rad54和 Rad57突變的影響[13],這就說明 MRE11/RAD50/XRS2蛋白復(fù)合物同時(shí)在同源重組和非同源重組中都起重要作用。
HRR過程中,介導(dǎo)DSB修復(fù)的蛋白也參與無損傷的正常細(xì)胞生命活動(dòng)中所發(fā)生的DNA重組。因此,DSB修復(fù)缺陷不僅造成對(duì)DNA損傷劑的敏感,而且影響正常生物機(jī)能,如會(huì)影響有絲分裂的重組、接合型轉(zhuǎn)換及抗原受體基因的重排等[14],因而對(duì)DNA重組及DSB修復(fù)的研究具有重要的實(shí)際意義。
非同源末端連接(non-homologous end joining,NHEJ)在重離子輻照導(dǎo)致的DSB的修復(fù)中也發(fā)揮著重要作用。由于NHEJ不需要同源序列,只需要蛋白-DNA復(fù)合體把DNA末端連接起來,因而NHEJ可發(fā)生在整個(gè)細(xì)胞周期中[15],而HRR需要同源DNA模板的存在,所以主要發(fā)生在姐妹染色單體已經(jīng)形成的S期和G2期。至于選擇NHEJ還是HRR修復(fù)DSB,除了取決于細(xì)胞所處的周期外,還取決于損傷產(chǎn)生的DNA末端以及主要參與NHEJ和HR的兩種蛋白Ku70/80和RAD52在DNA末端的結(jié)合能力[16]。一般認(rèn)為高等真核生物中DSB的修復(fù)是以NHEJ起主導(dǎo)作用的,而對(duì)于釀酒酵母這樣較為低等的真核生物則主要依靠HRR,而NHEJ相對(duì)較少,故不再詳細(xì)介紹。
DNA在復(fù)制過程中出現(xiàn)的序列錯(cuò)誤主要來自兩方面:一是DNA復(fù)制時(shí)插入若干個(gè)與模板堿基不配對(duì)的核苷酸;二是外界環(huán)境因素,如重離子輻射等造成的序列錯(cuò)誤。在正常細(xì)胞分裂時(shí),堿基配對(duì)出現(xiàn)錯(cuò)誤的概率僅約為 1/1010-1/109[17],而在外界刺激作用下,出錯(cuò)幾率明顯提高,這對(duì)生物體的正常生命活動(dòng)極為不利。MMR是一個(gè)從細(xì)菌到真核生物皆保守的DNA修復(fù)途徑,它能夠修復(fù)各種因素所導(dǎo)致的DNA堿基錯(cuò)配、片段插入或缺失、環(huán)形成等形式的DNA損傷以及DNA的結(jié)構(gòu)異常,使DNA整體復(fù)制的保真度增加50-1000倍,從而維持生物體基因組結(jié)構(gòu)穩(wěn)定、降低基因突變、增強(qiáng)抵抗不良環(huán)境因素的能力。另外,MMR也被認(rèn)為是BER途徑的一個(gè)重要的候補(bǔ)修復(fù)途徑[18]。
MMR途徑是在一系列相關(guān)蛋白的嚴(yán)格調(diào)控下對(duì)錯(cuò)配DNA進(jìn)行修復(fù),基本過程如下:(1)損傷位點(diǎn)的識(shí)別;MutS蛋白是MMR途徑的識(shí)別成分,它首先辨認(rèn)錯(cuò)配或未配對(duì)堿基并與之結(jié)合,然后在MutL參與下形成MutL-MutS-DNA復(fù)合物,同時(shí)增強(qiáng)MutSDNA復(fù)合體的穩(wěn)定性[19]。(2)錯(cuò)配位點(diǎn)的剪切;MutL-MutS-DNA復(fù)合體激活核酸內(nèi)切酶的活性,在錯(cuò)配位點(diǎn)附近對(duì)新合成的一股DNA鏈進(jìn)行切割,然后在DNA解旋酶和單鏈DNA結(jié)合蛋白(SSS)的共同作用下使單鏈DNA被核酸外切酶將錯(cuò)配位點(diǎn)整段切除[20,22]。(3)DNA 修復(fù)合成;在 DNA 聚合酶Ⅲ及DNA連接酶的作用下,根據(jù)模板鏈的序列,填補(bǔ)新鏈被切除的部分,包括錯(cuò)配或未配對(duì)的堿基,從而完成整個(gè)錯(cuò)配修復(fù)過程(如圖2)。由于切口與錯(cuò)配核苷酸相距較遠(yuǎn),故這種修復(fù)系統(tǒng)是一種長片段修復(fù)(long-patch repair),在整個(gè)過程中,錯(cuò)配的核苷酸只是其堿基與母鏈在配對(duì)上出現(xiàn)了問題,而核苷酸的基本結(jié)構(gòu)是正確的,因此只需對(duì)錯(cuò)配堿基進(jìn)行切除后再重新配對(duì)即可[21,22]。
圖2 釀酒酵母DNA錯(cuò)配修復(fù)過程Fig.2 The process of DNA mismatch repair in Saccharomyces cerevisiaes
MMR是在多種蛋白相互協(xié)調(diào)和配合下進(jìn)行的。在大腸桿菌中,MMR途徑包括 MutS、MutL和 MutH修復(fù)蛋白,稱作MutHSL系統(tǒng)。該系統(tǒng)主要依賴于MutS、MutL、MutH、4 個(gè)核酸外切酶、SSB、DNA 解旋酶Ⅱ、DNA聚合酶Ⅲ和DNA連接酶在內(nèi)的11個(gè)相關(guān)蛋白[23]。在釀酒酵母中,MMR途徑和大腸桿菌的MutHSL系統(tǒng)極為類似,具有相似的機(jī)制和同源的關(guān)鍵蛋白。在釀酒酵母的MMR系統(tǒng)中,發(fā)揮重要作用的蛋白有6個(gè) MutS同源物,分別為:MSH1、MSH2、MSH3、MSH4、MSH5、MSH6,4 個(gè) MutL 同源物分別為:PMS1,MLH1,MLH2,MLH3,但 MutH 同源物還沒有在釀酒酵母中發(fā)現(xiàn)[24]。其中MSH1在線粒體錯(cuò)配修復(fù)中發(fā)揮關(guān)鍵作用,維持線粒體DNA復(fù)制的高保真度[25]。MSH2識(shí)別配錯(cuò)堿基并與相應(yīng)序列結(jié)合形成MSH2-DNA復(fù)合物,從而啟動(dòng)修復(fù)過程,該復(fù)合物再與MLH1和PMS1所形成的異二聚體結(jié)合形成四聚體,引發(fā)錯(cuò)誤核苷酸的切除。MSH3除了能與MSH2形成二聚體,在錯(cuò)配修復(fù)過程中起識(shí)別作用外,還具有維持簡(jiǎn)單重復(fù)序列穩(wěn)定性的作用。盡管MSH4和MSH5是MutS的同源基因,但并不參與錯(cuò)配修復(fù)活動(dòng),而是參與減數(shù)分裂重組事件。當(dāng)有錯(cuò)配發(fā)生時(shí),MSH2分別于 MSH6、MSH3結(jié)合形成Mutsα和 Mutsβ復(fù)合物,MSH4和 MSH5結(jié)合形成Mutsr復(fù)合物。其中,Mutsα復(fù)合物的主要作用是修復(fù)單堿基和大片段的插入/缺失;Mutsβ復(fù)合物的主要功能是修復(fù)插入/錯(cuò)配環(huán)。Mutsα復(fù)合物具有ATP酶的活性,這對(duì)于它修復(fù)錯(cuò)配DNA是必須的,ATP水解作用表現(xiàn)出對(duì)于MutS二聚體、DNA和其他蛋白之間相互作用的調(diào)節(jié)能力。ANTONY E等[26]在對(duì)于MutS二聚體是如何利用ATP的研究中發(fā)現(xiàn)MSH6類似于S1亞基,快速水解ATP,而MSH2類似于S2亞基,對(duì)ATP的水解較慢。MLH1可以和PMS2、PMS1、MLH3形成 Mutlα、Mutlβ 和 Mutlr復(fù)合物,這些復(fù)合物具有識(shí)別配錯(cuò)堿基,插入或刪除片段的修復(fù)以及避免突變的功能。與原核生物不同的是MutS和MutL均為異源二聚體,因此真核生物的MMR過程中鏈的識(shí)別和缺口的產(chǎn)生與原核生物有所不同。
在龐大的蛋白體系中,不同的損傷形式所需的蛋白種類也有所差異。STONE J E等[24]研究發(fā)現(xiàn),對(duì)于堿基配錯(cuò)和單個(gè)堿基的插入或刪除的修復(fù)主要需要 MSH2、MSH6、MLH1、PMS1 復(fù)合物,而 MSH3、MSH4、MSH5、MLH2、MLH3 卻不是必需要的;對(duì)于由1-14堿基形成小環(huán)而造成的損傷主要由MSH2、MSH3、MLH1、PMS1 復(fù)合物修復(fù),而 Mutlβ 和 Muls在DNA移碼突變修復(fù)中作用很小。
還有一些其他參與MMR的相關(guān)物質(zhì),如核酸內(nèi)切酶(除了核酸外切酶Ⅰ)、復(fù)制蛋白、復(fù)制因子和DNA聚合酶Ⅲ、DNA連接酶、單鏈結(jié)合蛋白等已經(jīng)被證實(shí),但是否還包含一些像DNA解旋酶Ⅱ和除了核酸外切酶Ⅰ以外的其他核酸酶還不太清楚[23]。同時(shí)還有一些新的成果不斷出現(xiàn),如鐘天映等[27]通過建立易錯(cuò)PCR隨機(jī)突變的方法對(duì)MutS進(jìn)行功能研究,發(fā)現(xiàn)了新的功能位點(diǎn)A272,該位點(diǎn)在MutS結(jié)合錯(cuò)配DNA時(shí)起著重要的作用,為MutS的功能與結(jié)構(gòu)研究提供了新的信息。
總之,在重離子束輻照釀酒酵母造成DNA堿基插入、丟失或錯(cuò)配的損傷修復(fù)中,MMR增強(qiáng)DNA復(fù)制的忠實(shí)性,降低自發(fā)突變率,誘導(dǎo)DNA損傷細(xì)胞凋亡而消除由突變細(xì)胞可能帶來的不良后果,防止了錯(cuò)誤累積從而維持基因組的穩(wěn)定性,保障基因組復(fù)制的高精確性等方面的意義是不言而喻的。
由于重離子輻照對(duì)釀酒酵母的間接生物學(xué)效應(yīng),引起DNA氧化損傷,該類損傷的修復(fù)主要由BER 途徑來完成[28,29]。一般情況下,氧化 DNA 損傷會(huì)產(chǎn)生 AP位點(diǎn)(apurinic/apyrimidinic sites,AP位點(diǎn)),AP位點(diǎn)的產(chǎn)生有兩種方式,一種是通過N-糖苷鍵的自發(fā)水解作用而形成;另一種是通過DNA N-糖基化酶切除損傷或不適合位點(diǎn)而形成的。這類損傷會(huì)潛在的引起DNA復(fù)制和轉(zhuǎn)錄過程的突變,更嚴(yán)重的會(huì)導(dǎo)致致死性損傷的發(fā)生,因而會(huì)影響基因組的穩(wěn)定性。另外,COOKE M S等[30]研究發(fā)現(xiàn),與細(xì)胞核DNA(nDNA)相比,線粒體DNA(mtDNA)具有更高的不穩(wěn)定性和氧化損傷敏感性,BER途徑對(duì)nDNA和mtDNA損傷都有效。
盡管在釀酒酵母和哺乳動(dòng)物細(xì)胞中BER過程很相似,但還是存在一些顯著的不同,作為真核生物,它們?cè)谝恍┫嚓P(guān)修復(fù)蛋白上存在著很高同源性。真核生物BER的機(jī)制為:(1)發(fā)生變化的堿基從脫氧核糖-磷酸鹽鏈上水解下來,形成AP位點(diǎn);在這個(gè)過程中,需要DNA糖苷酶的催化作用,這些只具有切割功能的糖苷酶即為單功能糖苷酶,還有一些DNA糖苷酶除了可以促進(jìn)N-糖苷鍵的斷裂,還具有AP裂解酶的活性,有利于DNA骨架的斷裂,這些DNA糖苷酶即為雙功能糖苷酶[28]。(2)在AP核酸內(nèi)切酶(AP Endonuclease,APE)的作用下,識(shí)別和切除 AP位點(diǎn);由于APE的作用使得脫氧核苷酸鏈發(fā)生單鏈斷裂(SSB)而產(chǎn)生5'-脫氧核糖核酸(5'-dRP)末端。(3)通過DNA聚合酶β激活5'-dRP酶從而使5'-dRP釋放出來,或者是在交叉DNA單鏈內(nèi)切酶FEN1的切除作用下使5-dRP釋放出來,結(jié)果產(chǎn)生了一個(gè)或多個(gè)核苷酸缺口。(4)這些缺口通過DNA聚合酶的作用而填充,同時(shí)一連串的DNA鏈通過DNA連接酶而連接起來;在這個(gè)過程中DNA聚合酶β的作用十分重要,陳月琴等[31]研究發(fā)現(xiàn)DNA聚合酶β的162位發(fā)生 Val→Ala突變,使得 DNA聚合酶 β在BER中的能力顯著減弱,充分說明DNA聚合酶β在BER中具有重要的作用。
在釀酒酵母中,首先AP位點(diǎn)也可以通過APE識(shí)別和切除,隨后在分叉DNA單鏈內(nèi)切酶RAD27的作用下切除5'-dRP形成核苷酸缺口,緊接著是DNA聚合酶β對(duì)DNA的修復(fù)合成以及CDC2對(duì)缺口的連接步驟[32]。由于釀酒酵母缺乏擁有AP裂解酶活性的DNA聚合酶,故在此階段,3種DNA N-糖基化酶賦予了AP裂解酶的活性,這3種糖基化酶分別是NTG1、NTG2和OGG1,這些AP裂解酶也可以識(shí)別和切除AP位點(diǎn),使磷酸二酯鍵發(fā)生單鏈斷裂而產(chǎn)生3'-脫氧核糖核酸(3'-dRP)末端,從而進(jìn)入修復(fù)過程的下一步,它們主要參與了氧化DNA損傷的修復(fù)過程(如圖3)。
圖3 釀酒酵母中AP位點(diǎn)的堿基切除修復(fù)[36]Fig.3 Base excision repair of AP sites in Saccharomyces cerevisiaes
在釀酒酵母中,APE是BER途徑的限速酶,它由APE1和APE2兩個(gè)異構(gòu)體組成[33]。APE1和 APE2分別是由基因APN1和APN2編碼,而在線粒體中,主要是由基因APN1編碼的APE1蛋白發(fā)揮作用[34]。DNA N-糖基化酶NTG1、NTG2和OGG1具有AP裂解酶的活性,這些酶是釀酒酵母所特有的。RAD27作為哺乳動(dòng)物細(xì)胞中交叉DNA單鏈內(nèi)切酶FEN1的同源物,在5'-dRP的切除形成核苷酸缺口的過程中發(fā)揮著重要的作用。
3.2.1 AP 核酸內(nèi)切酶 APNl和 APN2 APN1 是由Apn1基因編碼的,該基因位于釀酒酵母的Ⅺ染色體上,處于 Rad27基因的下游[32]。APN1是由367個(gè)氨基酸組成的單分子酶,其分子量約為41.4 kDa,包含了3個(gè)鋅原子,鋅原子的存在對(duì)于該酶的催化活性具有決定性的作用。另外,VONGSAMPHANH R等[35]研究發(fā)現(xiàn)APN1在轉(zhuǎn)移到線粒體的過程中需要APN1與PIR1相互作用。APN1具有多個(gè)催化活性[36]:(1)具有AP核酸內(nèi)切酶的活性,該活性作用是在突變產(chǎn)生的AP位點(diǎn)的5'端切開DNA鏈;(2)具有3'-磷酸二酯酶的活性,其作用是切除3'-dRP末端;(3)具有核酸內(nèi)切酶的活性,作用是在5'-端切除氧化作用造成的DNA堿基損傷。因此,APNl是一個(gè)功能強(qiáng)大的酶,它具有多重活性,可以保護(hù)細(xì)胞核和線粒體免受由于內(nèi)源性、外源性氧化和烷化劑對(duì)DNA的損傷。
APN2是哺乳動(dòng)物細(xì)胞APE1的同源物,Apn2基因位于釀酒酵母的Ⅱ染色體上,對(duì)應(yīng)的APN2蛋白是由520個(gè)氨基酸組成的蛋白,其分子量為59.4 kDa;APN2具有雙重作用[37]:(1)催化 AP位點(diǎn)在5-端水解磷酸二酯骨架,由單鏈的斷裂而產(chǎn)生3'-羥基和3'-dRP,這個(gè)作用和APN1相似。(2)具有3'到5'核酸外切酶的活性,可以切除多個(gè)核苷酸。
3.2.2 AP裂解酶NTG1、NTG2和OGG1 在釀酒酵母中,存在著3種AP裂解酶,分別是NTG1、NTG2和OGG1,它們的作用是主要修復(fù)由于氧化作用造成的DNA損傷。Ntg1、Ntg2、Ogg1基因分別位于Ⅰ、XIV和XIII染色體上,編碼的蛋白的分子量大約都為40 kDa左右。Ntg1和Ogg1同時(shí)存在于細(xì)胞核和線粒體中,而Ntg2主要是在細(xì)胞核中,它們的作用是在AP位點(diǎn)的3'端切除磷酸二酯骨架,從而產(chǎn)生3'-dRP末端,在APN1蛋白缺乏的釀酒酵母細(xì)胞中,AP裂解酶NTG1、NTG2和OGG1的作用顯得更為重要。YOU H J等[38]研究表明 Ntg1、Ntg2、Ogg1 基因同時(shí)缺失的菌株,DNA對(duì)于烷化劑的敏感程度比Apn1基因單缺失菌株更加強(qiáng),這說明AP位點(diǎn)的大量累積在Ntg1、Ntg2、Ogg1基因缺失菌株中得不到有效地清除。張遵真等[39]在對(duì)OGG1的研究中發(fā)現(xiàn),在眾多的DNA氧化損傷中,8-羥基鳥嘌呤(8-oxoguanine,8-oxoG)形成頻率最高、致突變性最強(qiáng),可導(dǎo)致G:C→T:A顛換,體內(nèi)特異性識(shí)別8-oxoG并將其切除修復(fù)的酶就是OGG1。因此,NTG1、NTG2和OGG1發(fā)揮的AP裂解酶的作用對(duì)于釀酒酵母清除AP位點(diǎn)十分有利,特別是對(duì)于APN1缺乏和APN1和APN2同時(shí)缺乏的細(xì)胞顯得尤為明顯。
3.2.3 分叉DNA單鏈內(nèi)切酶RAD27 在釀酒酵母BER途徑中,AP位點(diǎn)主要是通過APN1識(shí)別和切除的,這樣往往產(chǎn)生單鏈斷裂的5'-dRP末端,在隨后的5'-dRP催化切除中需要哺乳動(dòng)物細(xì)胞FEN1的同源物RAD27核酸內(nèi)切酶的作用。RAD27是一種結(jié)構(gòu)特殊的分叉DNA單鏈內(nèi)切酶,它屬于RAD2核酸酶家族成員,該類酶都具有5'到3'核酸外切酶的活性[40]。RAD27可以修復(fù)1個(gè)到5個(gè)核苷酸缺口,WU X等[32]研究發(fā)現(xiàn)在Rad27基因敲除的情況下,細(xì)胞對(duì)烷化劑的致死性效應(yīng)十分的敏感。另外,由于在Apn1基因敲除的細(xì)胞中,AP位點(diǎn)主要是通過由AP裂解酶NTG1、NTG2和 OGG1切除的,所以對(duì)于Apn1基因敲除的細(xì)胞而言,分叉DNA單鏈內(nèi)切酶RAD27對(duì)AP位點(diǎn)的切除并不是必需的。
從生物學(xué)角度來講,生理程序化DNA損傷和這些損傷序列對(duì)于多基因的表達(dá)調(diào)控是必要的[41]。然而,非生理程序化DNA損傷會(huì)干涉基因轉(zhuǎn)錄進(jìn)程,進(jìn)而影響正常的生命活動(dòng)。因此,對(duì)于DNA損傷修復(fù)的研究十分重要,在某種意義上它決定著生命基本活動(dòng)的完成[42]。
釀酒酵母作為真核模式生物,以單細(xì)胞形式存在,遺傳物質(zhì)包裹在細(xì)胞膜中,以細(xì)胞核DNA和質(zhì)粒DNA形式存在。當(dāng)重離子輻照時(shí),注入離子通過直接或間接作用誘導(dǎo)遺傳物質(zhì)發(fā)生突變,注入離子的動(dòng)量傳遞產(chǎn)生對(duì)細(xì)胞的直接作用,能量沉積則表現(xiàn)出對(duì)細(xì)胞的間接作用[43]。直接作用導(dǎo)致DNA發(fā)生鏈斷裂,主要由HRR途徑來修復(fù);同時(shí),重離子輻照產(chǎn)生大量的活性氧自由基(reactive oxygen species,ROS)所介導(dǎo)的間接作用對(duì)DNA造成氧化、堿基插入或缺失以及AP位點(diǎn)的形成等損傷[44],主要由MMR和BER途徑發(fā)揮修復(fù)作用。嚴(yán)格來講,由于重離子輻照機(jī)制的復(fù)雜性和作用的多樣性使得DNA損傷也多式多樣,一般情況下,多種損傷形式處于并存狀態(tài),并且各個(gè)修復(fù)途徑對(duì)于DNA損傷形式并沒有嚴(yán)格的界定,因此在釀酒酵母遭受重離子照射時(shí),HRR、MMR和BER途徑聯(lián)合啟動(dòng),在多種蛋白質(zhì)參與下,形成廣泛而高效的網(wǎng)絡(luò)系統(tǒng),共同發(fā)揮DNA損傷修復(fù)作用。
由于生命本身的復(fù)雜性決定了DNA修復(fù)機(jī)制的多樣性,使DNA損傷、修復(fù)與基因轉(zhuǎn)錄之間存在著復(fù)雜的關(guān)系,并且由于DNA損傷對(duì)基因轉(zhuǎn)錄的間接影響使這種關(guān)系更加復(fù)雜化。因此,對(duì)DNA損傷修復(fù)的研究還有很多機(jī)理不甚明了。例如,作為基因的載體,染色體在DNA的修復(fù)中扮演者重要的角色,在過去的研究中,學(xué)者們認(rèn)為在DNA修復(fù)中染色體先要被展開,然后又要還原,似乎阻礙了DNA修復(fù)的進(jìn)行,然而GASTON S等[45]最近的研究表明染色體的相關(guān)組件也能積極地促進(jìn)DNA損傷的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和修復(fù)。另外,與原核生物相比,釀酒酵母基因的復(fù)雜性給DNA損傷修復(fù)網(wǎng)絡(luò)系統(tǒng)的研究帶來新的挑戰(zhàn),所以對(duì)它的認(rèn)識(shí)是一個(gè)逐漸深入的過程。
[1]CICCIA A,ELLEDG S J.The DNA damage response:making it safe to play with knives[J].Mol Cell,2010,40:179-204.
[2]FILIPE M,F(xiàn)lávio A,Bj?rn J,et al.Stimulation of DNA repair in Saccharomyces cerevisiaes by Ginkgo biloba leaf extract[J].Food and Chemical Toxicology,2011,49:1361-1366.
[3]BEGLEY T J,SAMSON L D.Network responses to DNA damaging agents[J].DNA Repair,2004,3:1123-1132.
[4]ZHANG Min,ZHU Rongrong,ZHANG Mingfeng,et al.High-energy pulse-electron-beam-induced molecular and cellular damage in Saccharomyces cerevisiaes[J].Research in Microbiology,2012,7:1-12.
[5]SUWAKI N,KLARE K,TARSOUNAS M.RAD51 paralogs:Roles in DNA damage signaling,recombinational repair and tumorigenesis[J].Semin Cell Dev Biol,2011,28(7):1-12.
[6]SALMON T B,EVERT B A,SONG B W,et al.Biological consequences of oxidative stress-induced DNA damage in Saccharomyces cerevisiaes[J]. Nucleic Acids Reserch,2004,12:3712-3723.
[7]JACKSON S P.Sensing and repairing DNA double-strand breaks[J].Carcinogenesis,2002,23:687-696.
[8]柴國林,朱衛(wèi)國.DNA的損傷與修復(fù)[J].中華腫瘤雜志,2005,27(10):577-580.CAI Guolin,ZHU Weiguo.The damage and repair of DNA[J].Chinese Journal of Oncology,2005,27(10):577-580.
[9]黃敏,繆澤鴻.DNA雙鏈斷裂損傷修復(fù)系統(tǒng)研究進(jìn)展[J].生理科學(xué)進(jìn)展.2007,38(4):295-300.HAUNG Min,MIAO Zehong.Repair pathways in response to DNA double-Strand breaks[J].Progress in Physiological Sciences,2007,38(4):295-300.
[10]陳漢春,彭興華.Rad51同系物與DNA重組修復(fù)[J].國外醫(yī)學(xué)遺傳學(xué)分冊(cè),2003,26(4):194-197.CHEN Hanchun,PENG Xinghua.The homologue of Rad51 on DNA recombination repair[J].Foreign Medical Sciences(Section of Genetics),2003,26(4):194-197.
[11]MANTHEY G M,BAILIS A M.Rad51 inhibits translocation formation by non-conservative homologous recombination in Saccharomyces erevisiae[J].Plos One,2010,5(7):1-12.
[12]杜利清,白劍強(qiáng),王小春,等.同源重組修復(fù)蛋白R(shí)AD51在骨肉瘤中的表達(dá)及其意義[J].陜西醫(yī)學(xué)雜志,2010,39(11):1443-1447.DU Liqing,BAI Jianqiang,WANG Xiaochun,et al.Expression and effect of RAD51 in osteosarcoma[J].Shanxi Medical Journal,2010,39(11):1443-1447.
[13]ZHANG Zhanchun.Damage of ionizing radiation and repair gene[J].Foreign Med Sec Radiat Med,2004,28(1):26-29.
[14]SYMINGTON L S.Role of RAD52 epistasis group genes in homologous recombination and double-strand break repair[J].Microbiol Mol Biol R,2002,66(4):630-670.
[15]GENT D C,HOEIJMAKERS J H,KANAAR R.Chromosomal stability and the DNA double-stranded break connection [J].Nat Rev Genet,2001,2(3):196-206.
[16]WETERINGS E,DIK C,GENT V.Themechanism of non-homologous end joining:A synopsis of synapsis[J].DNA Repair,2004,3:1425-1435.
[17]馬守成,趙達(dá).DNA錯(cuò)配修復(fù)和臨床腫瘤新進(jìn)展[J].基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與臨床,2011,1(12):1402-1405.MA Shoucheng,ZHAO Da.The news for MMH and clinical cancer[J].Basic & Clinical Medicine,2011,1(12):1402-1405.
[18]SLUPPHAUG G,KAVLI B,KROKAN H E.The interacting pathways for prevention and repair of oxidative DNA damage[J].Mutat Res,2003,531(1):231-251.
[19]畢利軍,周亞鳳,張先恩.DNA錯(cuò)配修復(fù)與癌癥的發(fā)生及治療[J].生物物理學(xué)報(bào),2006,22(1):1-5.BI Lijun,ZHOU Yafeng,ZHANG Xianen.DNA mismatch repair and occurrence and therapy of cancer[J].Acta Biophysica Sinica,2006,22(1):1-5.
[20]KUNKEL T A,ERIE D A.DNA mismatch repair[J].Annu Rev Biochem,2005,74:681-710.
[21]MARTIN L,COFFEY M,LAWLER M,et al.DNA mismatch repair and the transition to hormone independence in breast and prostate cancer[J].Cancer Lett,2010,291:142-149.
[22]劉卓,吳建新.DNA錯(cuò)配修復(fù)系統(tǒng)組成和功能的研究進(jìn)展.現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2008,8(6):1160-1164.LIU Zhuo,WU Jianxin.Advance of researches on the composition and function of DNA mismatch repair system[J].Progress in Modern Biomedicine,2008,8(6):1160-1164.
[23]YUAN Fenghua,LAI Fangfang,GU Liya.Measuring strand discontinuity-directed mismatch repair in yeast Saccharomyces cerevisiaes by cell-free nuclear extracts[J].Method,2009,48:14-18.
[24]STONE J E,PETES T D.Analysis of the proteins involved in the in vivo repair of base-base mismatches and four-base loops formed during meiotic recombination in the Yeast Saccharomyces cerevisiaes[J].Genetics,2006,173:1223-1239.
[25]ZHANG Y,YUAN F,PRESNELL S R,et al.Reconstitution of 5'-directed human mismatch repair in a purified system[J].Cell,2005,122(5):693-705.
[26]ANTONY E,KHUBCHANDANI S,CHEN S,et al.Contribution of Msh2 and Msh6 subunits to the asymmetric ATPase and DNA mismatch binding activities of Saccharomyces cerevisiaes Msh2-Msh6 mismatch repair protein[J].DNA Repair,2006,5:153-162.
[27]鐘天映,畢利軍,張先恩.錯(cuò)配修復(fù)蛋白MutS的新功能位點(diǎn)[J].中國科學(xué),2011,(41)2:168-172.ZHONG Tianying,BI Lijun,ZHANG Xianen.New functional sites in MutS affect DNA mismatch repair[J].Science China,2011,(41)2:168-172
[28]賈若欣,周崢嶸,萬永杰,等.線粒體DNA損傷及其堿基切除修復(fù)的研究進(jìn)展[J].畜牧與獸醫(yī),2011,43(9):100-104.JIA Ruoxin, ZHOU Zhengrong, WAN Yongjie, etal.Process of mitochondrial DNA damage and its damage repair genes[J].Animal Husbandry & Veterinary Medicine,2011,43(9):100-104.
[29]YU Shanshan,QIN Wei,ZHUANG Guoqiang,et al.Monitoring oxidative stress and DNA damage induced by heavy metals in yeast expressing a redox-sensitive green fluorescent protein[J].Current Microbiology,2009,58(5):504-510.
[30]COOKE M S,EVANS M D,DIZDAROGLU M,et al.Oxidative DNA damage:mechanisms,mutation and disease[J].The FASEB Journal,2003,17(10):1195-1201.
[31]陳月琴,宋國華,馮龍,等.突變型DNA聚合酶β堿基切除修復(fù)活性的分析[J].中國現(xiàn)代醫(yī)藥雜志,2009,11(3):43-46.CHEN Yueqin,SONG Guohua,F(xiàn)ENG Long,et al.Analysis of base excision repair activity in mutant DNA polymerase β [J].Modern Medicine Journal of China,2009,11(3):43-46.
[32]WU X,WANG Z.Relationships between yeast Rad27 and Apn1 in response to apurinic/apyrimidinic(AP)sites in DNA[J].Nucleic Acids Res,1999,27:956-962.
[33]HEGDE M L,ZRA T K,MITRA S.Early steps in the DNA base excision/single-strand interruption repair pathway in mammalian cells[J].Cell research,2008,18(1):27-47.
[34]LI MX,ZHONG ZY,ZHU JW,et al.Identification and characterization of mitochondrial targeting sequence of human apurinic/apyrimidinic endonuclease 1[J].J Biol Chem,2010,285(20):14871-14881.
[35]VONGSAMPHANH R,F(xiàn)ORTIER P K,RAMOTER D.Pir1p mediates translocation of the yeast Apn1p endonuclease into the mitochondria to maintain genomic stability[J].Mol Cell Biol,2001,22:1647-1655.
[36]BIOTEUX S,GUILLET M.A basic sites in DNA:repair and biological consequences in Saccharomyces cerevisiaes[J].DNA Repair,2004,3:1-12.
[37]UNK I,HARACSKA L,JOHNSON R E,et al.Apurinic endonuclease activity of yeast Apn2 protein[J].J Biol Chem,2000,275:22427-22434.
[38]YOU H J,SWANSON R L,HARRINGTON C,et al.Saccharomyces cerevisiaes Ntg1p and Ntg2p:broad specificity N-glycosylases for the repair of oxidative DNA damage in the nucleus and mitochondria[J].Biochemistry,1999,38:11298-11306.
[39]張遵真.DNA修復(fù)基因 OGG1研究進(jìn)展[J].癌變、畸變、突變,2004,16(6):377-382.ZHANG Zunzhen.The research progress of OGG1 about DNA repair[J].Carcinogenesis,Teratogenesis and Mutagenesis,2004,16(6):377-382.
[40]MOREAU S,MORGAN E A,SYMINGTON L S.Overlapping functions of the Saccharomyces cerevisiaes Mre11,Exo1 and Rad27 nucleases in DNA metabolism [J].Genetics,2001,159:1423-1433.
[41]NIEHRS C.Active DNA demethylation and DNA repair[J].Differentiation,2009,77:1-11.
[42]KHOBTA A,EPE B.Interactions between DNA damage,repair,and transcription [J].Mutation Research,2012,736:5-14.
[43]宋道軍,余汛,余增亮.低能離子束對(duì)微生物細(xì)胞的直接作用和間接作用研究[J].高技術(shù)通訊,1999(1):47-50.SONG Daojun,YU Xun,YU Zengliang.Study on the direct and indirect action of N+ion implantation on D.radiodurans and E.coli[J].High Technology Letters,1999(1):47-50.
[44]GIRARD P M,BOITEUX S.Repair of oxidized DNA bases in the yeast Saccharomyces cerevisiaes[J].Biochimie,1997,79:559-566.
[45]GASTON S,SOPHIE E P.Prime,repair,restore:the active role of chromatin in the DNA damage response[J].Molecular Cell,2012,46(29):722-734.