李丹丹，宋燁，吳茂玉，朱風濤，于濱，馬曉燕

1(齊魯工業(yè)大學食品與生物工程學院，山東 濟南，250353)

2(中華全國供銷合作總社濟南果品研究院，山東 濟南，250014)

植物多糖是植物細胞代謝產生的聚合度超過10的多聚糖，是除蛋白質和核酸以外的又一類重要的生物大分子［1］。多糖具有多種生物活性，如抗腫瘤、提高機體免疫力、降血糖血脂等功效［2］，在保健食品、畜牧生產、醫(yī)藥、化妝品等領域有廣闊的應用前景［3］。20 世紀70 年代以來的研究發(fā)現(xiàn)，植物多糖水解產物也具有多方面的生理作用，如增強免疫、抗腫瘤、降血糖、降血壓、增強機體免疫等［4］，尤其是其水解產物分子量小、滲透性好的優(yōu)點，彌補了大分子多糖溶解性差、生物利用率低的不足［5］。因此，研究植物多糖水解及水解產物的結構對充分發(fā)揮植物多糖功效有重大作用。

1 植物多糖的水解方法

多糖是由10 個以上的單糖通過糖苷鍵組成的高分子化合物，可以水解產生一系列的中間產物，完全水解得到單糖［6］。目前水解多糖的方法主要有化學法、物理法和生物法(如表1 所示)。

表1 植物多糖水解方法的特點Table1 The characteristics of the methods of plant polysaccharides hydrolysis

1.1 化學法

通過在多糖溶液中加入化學解聚劑，使多糖分子的糖苷鍵斷裂或發(fā)生分子重排，從而生成單糖或低聚糖。目前常用的化學法有酸法、氧化法和亞硝酸鹽法。

1.1.1 酸法水解

多糖在酸性溶液中不穩(wěn)定、糖苷鍵易斷裂，最終可形成不同聚合度的水解物，是植物多糖水解的傳統(tǒng)方法。目前，HCl、H2SO4是水解中最常用的酸，反應過程受底物濃度、酸濃度、酸添加量、水解時間和溫度的影響，隨著酸濃度和溫度的升高，水解速度逐漸加快［7－8］。繆月秋等［9］采用HCl 水解葫蘆巴中性多糖，分別以低聚糖的產量和分子量大小為指標優(yōu)化水解工藝條件，發(fā)現(xiàn)水解條件直接影響水解結果，得出最優(yōu)條件下低聚糖得率為43.97%、分子質量約為300 ～750Da，得到大幅下降;何艷麗等［10］探討了H2SO4濃度和水解時間對大米草多糖水解物清除羥自由基能力的影響，發(fā)現(xiàn)大米草多糖水解物具有比未水解的大米草多糖更強的清除能力，最佳水解條件下可以達到85.7%。上述2 種酸均為強酸，水解活動較劇烈，多糖水解度較高，但水解產物比較復雜，分子量分布寬，均一性較差。因此有人考慮選用弱酸水解多糖，Jia 等［11］用85% H3PO4水解殼聚糖，隨著反應時間的延長水解速率逐漸降低，室溫下處理35 d 后殼聚糖的黏均分子質量從214 kDa 降到71 kDa，殼聚糖分子質量降到20 ～37 kDa，水溶性部分含量隨著分子量的降低有所增加，多糖產物分子量均一性好、水溶性增強。

此外，還可采用無水氟化氫［12］、乙酸［13］、三氟乙酸(TFA)［14］等水解植物多糖。但氟化氫水解條件較苛刻實驗室中應用較少，而TFA 在水解結束后經旋轉蒸發(fā)便可除去，避免了堿中和的步驟，在實驗中應用比較廣泛。

1.1.2 氧化法

氧化劑的活性基團能奪取多糖β-l，4-糖苷鍵1位或4 位上的H 原子，使多糖的C—O—C 鍵發(fā)生斷裂，從而產生分子質量較小的寡糖，是近年來研究較多的水解植物多糖的方法［15］，常用的氧化劑主要是H2O2。Zhang 等［16］用VC和H2O2相結合的方法對緣管滸苔多糖進行水解，制備出3 種水解物進行體外抗氧化實驗，結果表明3 種水解產物都有不同程度的抗氧化性，且當水解物濃度超過0.7 mg/mL 時，羥基自由基的清除能力都高于未水解多糖的活性。樓陳鈺等［17］在弱酸性條件下用H2O2水解殼聚糖，發(fā)現(xiàn)溫度的升高、時間的延長以及H2O2用量的增加都有利于殼聚糖分子量的降低。此外，Matijia 等［18］用O2、N2對普魯蘭多糖進行氧化處理后的水解速率明顯高于未處理組，說明水解前對多糖進行氧化處理有助于多糖的水解。

此法水解植物多糖成本低、速度快、產品分子量低且分布窄，水解物無毒、易實現(xiàn)大規(guī)模工業(yè)化生產。研究發(fā)現(xiàn)混合氧化劑的效果要比單一氧化劑好［19］，因此在試驗中除了只用H2O2氧化之外，還可混入其它化學物質以提高降解率，如酸、NaBO3［20］、ClO2、Cl2等。

1.1.3 亞硝酸鹽法

酸性條件下亞硝酸鹽使多糖發(fā)生重氮化反應，脫去一分子N2引起縮環(huán)反應，使糖苷鍵斷裂從而實現(xiàn)多糖水解［21］，反應過程中可以通過控制亞硝酸鹽的添加量和反應時間來控制水解物的分子量。試驗中常用的亞硝酸鹽為NaNO2，上官國蓮等［22］用NaNO2法制備低聚殼聚糖，并對其理化性質進行了檢測，探討了水解條件對產物特征黏度和黏均分子質量的影響，結果表明當質量分數10% NaNO2的用量為0.6 mL、反應溫度為40℃、反應時間為30 min、乙酸體積分數為1%時得到的殼聚糖水解產物的特征黏度最低，即黏均分子質量最小為1.95 kDa，由F 檢驗結果可知各水解條件對殼聚糖黏均分子質量的影響大小為:時間＞溫度＞NaNO2用量＞乙酸濃度，即反應時間對殼聚糖水解物的黏均分子質量和特征黏度影響最大。

1.2 物理法

物理法是指在一定物理條件下，通過斷裂易斷裂的糖苷鍵來減小多糖的分子量，從而達到水解多糖的目的。常用的方法有超聲波法、輻射法和微波輔助法等。

1.2.1 超聲波法

在超聲波作用下，分子高速運動產生的剪切力能夠打斷大分子糖苷鍵，此外超聲波特有的空化作用也能使聚合物降解，從而使大分子聚合物解聚。Chen等［23］研究了超聲波輔助酸法水解殼聚糖以及對水解物分子質量分布的影響，認為低溫稀溶液條件下殼聚糖水解速度較快，隨著超聲時間的延長水解度逐漸增加，聚合度不斷減小，因此超聲波處理植物多糖可以降低其分子質量。Zhu 等［24］研究了超聲水解枸杞多糖，發(fā)現(xiàn)隨著底物濃度和pH 值的增加水解速率降低，隨著溫度的升高水解速率加快，水解物的黏度隨著反應的進行逐漸減小，分子質量也不斷降低。鄧永智等［25］將超聲波法和TFA 法水解海藻多糖進行比較，發(fā)現(xiàn)超聲波法水解多糖的效率要高。由此可見，超聲波法對降解大分子多糖有一定的作用，也是目前使用較多的物理方法之一，但該法所得產物的得率較低，且生產成本較高，要實現(xiàn)大規(guī)模工業(yè)化生產還需進一步研究。

1.2.2 輻射法

與酸法水解相比，輻射法制備小分子糖無環(huán)境污染、生產可控性好。近年來，許多人也做過相關方面的研究且取得了一定進展?？当蟮龋?6］用60Co-γ 輻射源對殼聚糖進行輻照，發(fā)現(xiàn)隨著輻射劑量的增加，殼聚糖水解產物的分子量急劇減少，分子鏈斷裂數Cd值隨之升高;李治等［27］用60Co 輻射源分別在大氣和真空條件下照射殼聚糖，可得到一系列低聚合度的殼聚糖，隨著輻射劑量的增加，殼聚糖的分子質量明顯降低，當輻射劑量達到250 kGy 時，大氣環(huán)境下殼聚糖的分子質量從274 kDa 下降到24 kDa，而真空中的下降到20 kDa。由此可見，輻射法對大分子糖的解聚有很大作用，加之此法成本低、反應易控制、無污染、產品品質高、不影響降解產物的生物相容性，為輻射法的應用奠定了基礎，但γ 射線輻射容易引起一些交聯(lián)和岐化反應，還需進行深入研究。

此外，紫外、可見光和紅外光照射也對多糖有一定的解聚作用。Viviana 等［28］發(fā)現(xiàn)在用紫外-可見光度計測殼聚糖的降解程度時，在紫外光照射下殼聚糖的降解程度有所提高，且當輻照波長小于360nm 時，降解反應較明顯，但降解過程中生成羰基的使產品有褐變現(xiàn)象。

1.2.3 微波輔助法

微波作為電磁波，具有很好的穿透性，放射出的能量能一定程度上影響多糖分子的運動。當微波輻射作用時，分子就會處于一種快速振動的狀態(tài)，分子間化學鍵的強度得以減弱，從而降低反應活化能，加速了分解反應的進程。舒任庚等［29］以半乳糖量為指標研究微波水解青錢柳多糖的影響因素，結果顯示水解溫度120℃，TFA 濃度2 mol/L，水解時間20 min時，半乳糖的質量分數為10.23%，與單純使用TFA相比大大縮短了水解時間，提高水解效率。李鵬程等［30］將聚合度為3 ～150、相對分子質量在600 ～30 000Da之間的殼聚糖加入到含NaCl、KCl 或CaCl2的電解質稀酸溶液中，以480 ～800W 的微波輻射3 ～12 min，冷卻至室溫后用2 mol/L 的NaOH 溶液中和得淡黃色絮狀沉淀，在60℃下烘干，粉碎，即得甲殼低聚糖化合物。此方法能夠降低能耗，減少污染，節(jié)省時間和原料，但由于微波升溫過快，存在單體揮發(fā)，反應不充分等不足還需進行深入研究。

1.3 酶法水解

酶的特異性、高效性、溫和性以及可調性使其在實驗中得到廣泛應用。多糖水解過程中，某些酶能作用于多糖的糖苷鍵使其斷裂從而達到水解多糖的目的。酶活力受溫度、時間、pH 和底物濃度等因素的影響，所以在實驗過程中要控制好實驗條件才能充分發(fā)揮酶的催化作用。水解植物多糖常用的酶主要有:纖維素酶、淀粉酶、蛋白酶、殼聚糖酶、脂肪酶等。

黃永春等［31］研究超聲波輔助α-淀粉酶對殼聚糖的降解情況，超聲波的高頻率振蕩使分子高速運動，大大增加了酶和底物的接觸機會，加速反應的進行。Yashida 等［32］發(fā)現(xiàn)殼聚糖酶能一定程度地水解殼聚糖，但在反應過程中需要有乙酰基的協(xié)助催化，在乙酰度較低的情況下，隨著乙酰度的降低酶活增高，且此時甲殼低聚糖的收率較高。Adsul［33］等采用纖維素酶和木糖酶混合水解甘蔗渣多糖，研究了不同比例的混合酶在不同溫度下對甘蔗渣的水解程度，以水解微晶纖維素為對照，發(fā)現(xiàn)微晶纖維素的最大水解率為70%，而甘蔗渣多糖的水解率可高達95%，此時2 種酶的最佳混合比列為1∶1。袁素霞等［34］用β-甘露聚糖酶水解魔芋葡甘聚糖并跟蹤水解物在酶解歷程中的分子質量變化，發(fā)現(xiàn)隨著反應的進行，產物的分子質量分布逐漸向低分子質量區(qū)域轉化。Muzzarelli等［35］對小麥胚芽脂肪酶水解殼聚糖的作用進行了水解，發(fā)現(xiàn)當脂肪酶濃度在4.5 ×10－3～0.9 g/L 時，水解速度與酶濃度呈對數關系，最后所得水解物的分子質量由原來的700 kDa 左右降低到13 kDa，黏度也有所降低。

綜上所述，制備較低分子量多糖的方法有很多且各有優(yōu)缺點，根據試驗要求采用不同的方法是試驗的關鍵。但目前對多糖水解的研究僅局限于實驗室，且研究重點多停留在影響多糖水解的因素上，對其降解機理以及降解產物的進一步研究有待缺乏，如何把實驗轉化成實際生產也是今后研究的一個方向。

2 多糖水解產物的結構分析

隨著多糖水解反應的發(fā)生，可以得到不同分子量大小的水解物，水溶性也不同程度得到改善，在某些生理活動方面也表現(xiàn)出了優(yōu)勢。結構決定功能，為進一步探討這些生理活性產生的機制，對水解物結構的鑒定也成了研究的一個重點。

2.1 多糖水解物的單糖組成分析

多糖的水解物一般是低聚合度的寡糖，在測定其單糖組成成分時一般采用層析、氣相、液相色譜的方法，與標準單糖的圖譜對照得出單糖成分。孫元琳等［36］分別采用酸和酶對當歸多糖(ASP)進行部分水解，氣相色譜分析結果表明水解物中的單糖組成為鼠李糖(Rha)、阿拉伯糖(Ara)、甘露糖(Man)、葡萄糖(Glc)、半乳糖(Gal)和半乳糖醛酸(GalA)。不同程度的酸水解后，水解物中單糖組成成分相同但含量有所差別。ASP3 分別經0.05、0.2、0.5 mol/L TFA 水解后，水解物組分隨著酸水解程度的增加，GalA 和Rha 含量相應增加，而Ara、Gal、Man 和Glc 含量逐漸下降。漢麗萍等［37］研究了高山紅景天多糖的部分酸水解產物的制備，并對其水解產物分別進行了紙層析和氣相色譜分析，紙層析結果檢出為GalA，與氣相色譜分析結果完全一致。有研究發(fā)現(xiàn)糖醛酸含量與抗氧化活性之間有正相關關系，隨著糖醛酸含量的增加，抗氧化性逐漸增強［38］，所以水解物中檢測出的GalA 為其抗氧化活性奠定基礎。

2.2 多糖水解物的分子量測定

多糖水解的主要目的是降低多糖的分子量，因此分子量減小是衡量多糖水解成功的重要標志。閆景坤等［39］研究了酸水解冬蟲夏草胞外多糖的分子質量變化規(guī)律，凝膠色譜法分析酸水解物中多糖分子質量變化發(fā)現(xiàn)隨著時間的延長，水解產物的分子質量分布總體上表現(xiàn)為高分子質量(﹥30 kDa)的多糖含量逐漸減少，而低分子質量(3 kDa)的多糖含量逐漸增多且最終維持在此水平。王凌等［40］采用超聲輔助H2O2-VC體系誘導產生的自由基降解海藻多糖，將水解物純化分離后得到2 種產品并經高效液相凝膠滲透色譜分析得出海藻多糖和兩種降解產品的分子質量分別為2 595.08、386.96、54.99 kD，認為多糖降解后分子量有較大程度的減小。呂寧等［41］采用酶法對麥冬多糖進行水解，水解物用SephadexG-100 柱進行分離得到3 種新組分，并分別檢測其分子質量分別為32 452、9 231、1 354Da，與分子質量為48 347Da 的原多糖相比分子質量有一定程度的減小。分子質量的減小在一定程度上可以增加物質的水溶性，增大溶解度，為充分發(fā)揮其生物活性提供了基礎保證。

2.3 光譜分析

糖類化合物結構分析中常用的光譜技術有紅外、紫外、核磁共振等。孫元琳等［36］利用酸和酶對當歸多糖部分水解，紅外光譜分析表明ASP3 的水解物中Rha 含量較原始多糖有所升高，1 260、1 100 和1 050 cm－1處的特征吸收說明當歸多糖水解物中含有GalA;1 075 和1 040 cm－1處的特征吸收說明水解物中含有鼠李糖-半乳糖醛酸聚糖，與單糖組成分析的結果一致?？当蟮龋?6］用γ 輻射降解殼聚糖并用紅外、紫外光譜等手段進行了表征分析，結果顯示隨著輻射劑量的增加，3 450 cm－1處的O—H 吸收峰不斷增大，說明在降解過程中有—OH 生成，且隨著反應的進行不斷增加，1 650 cm－1處的C=O 吸收峰隨劑量的增加不斷增加，這也與水解物具有的抗氧化有很大的關系。漢麗萍等［37］在對高山紅景天多糖水解物進行紅外光譜分析，圖譜顯示1 740 ～1 600 、1 440 ～1 395 和1 320 cm－1處有羧基吸收峰，與單糖組成分析結果一致，進一步證明紅景天多糖水解物中存在GalA。

康斌等［26］用γ 輻射法成功制備了一系列小分子水溶性殼聚糖，并用紫外-可見光譜對水解產物進行表征分析，據吸收圖譜發(fā)現(xiàn)降解產物在265 nm 處出現(xiàn)了一個新的吸收峰，且峰的強度隨著輻射劑量的增加而增強，推測是C =O 的吸收峰，與隨后的紅外分析結果相一致。孫元琳等［14］對當歸多糖ASP3 進行部分酸水解和酶水解產物進行核磁共振(NMR)光譜分析以推測ASP3 的結構，綜合一維和二維NMR 推測ASP3 是一種果膠多糖，半乳糖醛酸和鼠李糖醛酸聚糖位于多糖分子的主鏈，并由α-(1-5)-阿拉伯聚糖通過α-(1-3)連接與β-(1-6)-半乳聚糖末端聚合形成阿拉伯半乳聚糖，部分T-Galp 的O2位被甲基取代為2-O-Me-β-Galp。

3 結論

目前對植物多糖水解方面的研究取得了極大的進展，體外抗氧化試驗也驗證水解所得低分子質量糖有較高的抗氧化性，針對水解方法、水解條件的優(yōu)化做了深入研究，對獲得低分子質量寡糖有很大的促進作用。但是對植物多糖的斷鏈機理、水解物的結構與活性之間關系的研究還有欠缺，結合其他學科知識將多糖水解擴大生產并應用到實際生活也是下一步研究的方向，因此對植物多糖的研究還有待深入。

［1］ 張樹政. 糖生物學:生命科學中的新前沿［J］. 生命的化學，1999，19(3):103 －106．

［2］ Warrand J. Healthy polysaccharides［J］. Food Technology＆ Biotechnology，2006，44(3):355 －370．

［3］ 申利紅，王建森，李雅，等. 植物多糖的研究及應用進展［J］. 中國農學通報，2011，27(2):349 －352．

［4］ 繆月秋，顧龔平，吳國榮. 植物多糖水解及其產物的研究進展［J］. 中國野生植物資源，2005，24(2):4 －6．

［5］ Hirayama M. Novel physiological functions of oligosaccharides［J］. Pure and Applied Chemistry，2002，74(7):1 271 －1 279．

［6］ 吳東儒. 糖類的生物化學［M］. 北京:高等教育出版社，1987:256，885 －892．

［7］ Karlsson A，Singh S K. Acid hydrolysis of sulphated polysaccharides. Desulphation and the effect on molecular mass［J］. Carbohydrate Polymers，1999，38(1):7 －15．

［8］ Ekstr?m L G，Kuivinen J，Johansson G. Molecular weight distribution and hydrolysis behaviour of carrageenans［J］.Carbohydrate Research，1983，116(1):89 －94．

［9］ 繆月秋. 葫蘆巴中性多糖的水解及其產物的分離和生理活性的研究［D］. 南京:南京師范大學，2006．

［10］ 何艷麗，徐年軍，唐軍，等. 大米草多糖的水解及其抗氧化和α-葡萄糖苷酶抑制活性研究［J］. 寧波大學學報:理工版，2008，21(4):491 －494．

［11］ Jia Z S，Shen D F. Effect of reaction temperature and reaction time on the preparation of low-molecular-weight chitosan using phosphoric acid［J］. Carbohydrate Polymers，2002，49(4):393 －396．

［12］ Defaye J，Gadelle A，Pedersen C. A convenient access to β-(1-4)-linked 2-amino-2-deoxy-D-glucopyranosyl fluoride oligosaccharides and β-(1-4)-linked 2-amino-2-deoxy-D-glucopyranosyl oligosaccharides by fluorolysis and fluorohydrolysis of chitosan［J］. Carbohydrate Research，1994，261(2):267 －277．

［13］ Barker S A，F(xiàn)oster A B，Stacey，et al. Isolation and properties of Oligosaccharides obtained by controlled fragmentation of chitin［J］. Chemistry Society，1958:2 218 －2 227．

［14］ 孫元琳，陜方，崔武衛(wèi)，等. 當歸多糖ASP3 及其水解產物的NMR 光譜分析［J］. 高等學校化學學報，2009，30(9):1 739 －1 743．

［15］ Ovalle R，Soll C E，Lim F L，et al. Systematic analysis of oxidative degradation of polysaccharides using PAGE and HPLC-MS［J］. Carbohydrate Research，2001，330(1):131 －139．

［16］ Zhang Z S，Wang X M，Mo X F，et al. Degradation and the antioxidant activity of polysaccharide from Enteromorpha linza［J］. Carbohydrate Polymers，2013，92:2 084－2 087．

［17］ 樓陳鈺，劉羿君，封云芳，等. 過氧化氫制備殼低聚糖及分子量和其分布的研究［J］. 浙江理工大學學報，2006，23(1):5 －7．

［18］ Matijia S，Drago K，Jana K，et al. Degradation of pullulans of narrow molecular weight distribution-the role of aldehydes in the oxidation of polysaccharides［J］. Carbohydrate Polymers，2003，54(2):221 －228．

［19］ Zhang Z S，Wang X M，Mo X F，et al. Degradation and the antioxidant activity of polysaccharide from Enteromorpha linza［J］. Carbohydrate Polymers，2013，92(2):2 084 －2 087．

［20］ Kubota N J，Tatsumoto N，Sano T，et al. A simple preparation of half N-acetylated chitosan highly soluble in water and aqueous organic solvents［J］. Carbohydrate Research，2000，324(4):268 －274．

［21］ Tokura S. New Macromolecular Architecture and Functions. Proceedings of the OUMS95［M］. Toyonaka:Spring-Verlag Berlin Heidelberg，1996:199 －207．

［22］ 上官國蓮，張英慧. 殼聚糖的制備及降解工藝條件的選擇［J］. 佛山科學技術學院學報，2003，21(3):47－49．

［23］ Chen R H，Chang J R，Shyur J S. Effects of ultrasonic conditions and storage in acidic solutions on changes in molecular weight and polydisperity of treated chitosan［J］.Carbohydrate Research，1997，299(4):287 －294．

［24］ Zhu X H，Zhang H L，Yan H，et al. Kinetics of degradation of lycium barbarum polysaccharide by ultrasonication［J］. Journal of Polymer Science:Part B:Polymer Physics，2010，48(5)，509 －513．

［25］ 鄧永智，李文權. 海藻多糖的超聲水解［R］. 廈門大學海洋生物工程學術年會，2005:152．

［26］ 康斌，戚志強，伍亞軍. γ 輻射降解法制備小分子水溶性殼聚糖［J］. 輻射研究與輻射工藝學報，2006，24(2):83 －86．

［27］ 李治，劉曉非，徐懷鈺，等. 殼聚糖的γ 射線輻射降解研究［J］. 應用化學，2001，18(2):104 －107．

［28］ Viviana I P，Mafia E G，Pablo C S． UV Spectrophotornetry:improvements in the study of the degree of acetylation of chitosan［J］. Macromolecular Bioscience，2003，3(10):531 －534．

［29］ 舒任庚，蔡永紅. 微波輔助水解青錢柳多糖的工藝研究［J］. 中草藥，2011，42(8):1 547 －1 549．

［30］ 李鵬程，邢榮娥，劉松，等. 微波降解的甲殼低聚糖化合物及其制備方法［P］. CN，l473857，2004 －02 －11．

［31］ 黃永春，謝清若，容元平. 超聲作用下淀粉酶降解殼聚糖的研究［J］. 食品科技，2006(10):74 －77．

［32］ Yoshida S，Sato K，Takamori Y. Effect of chitosandeacetylation degree on the production of chitooligosaccharides byBacillussp. Chitosanase［J］. Kichin Kitosan-Kenkyu，1999，5(2):148 －189．

［33］ Adsul M G，Ghule J E，Shaikh H，et al. Enzymatic hydrolysis of delignified bagasse polysaccharides［J］. Carbohydrate Polymers，2005，62(1):6 －10．

［34］ 袁素霞，蘇榮欣，齊崴，等. 魔芋葡甘聚糖酶解歷程反應-擴散動力學［J］. 化工學報，2008，59(8):2 079－2 082．

［35］ Muzzarelli R，Xia W S. Depolymerization of chitosan and substituted chitosans with the aid of a wheat germ lipase preparation［J］. Enzyme Microbiology Technology，1995，17(6):541 －545．

［36］ 孫元琳，申瑞玲，湯堅，等. 當歸多糖的水解特征及其水解產物分析［J］. 分析化學研究報告，2008，36(3):348 －352．

［37］ 漢麗萍，梁忠?guī)r，張麗萍，等. 高山紅景天多糖RSA部分酸水解產物RSA-c 的制備和組成分析［J］. 通化師范學院學報，2002，23(2):64 －66．

［38］ 申明月，聶少平，謝明勇，等. 茶葉多糖的糖醛酸含量測定及抗氧化活性研究［J］. 天然產物研究與開發(fā)，2007，19(5):830 －833．

［39］ 閆景坤，吳建勇，金蓓，等. 酸水解冬蟲夏草胞外多糖的分子質量變化及動力學研究［J］. 食品科學，2012，33(11):82 －85．

［40］ 王凌，孫利芹. 綠色巴夫藻多糖及降解產品的抗氧化和保濕性能［J］. 食品科學，2012，33(21):87 －90．

［41］ 呂寧，金鳳燮，魚紅閃. 酶法水解麥冬多糖及其產物的分離鑒定［J］. 食品發(fā)酵與工業(yè)，2011，37(3):9 －12．