武旭東， 張振英, 王曉礽, 李玉珍， 劉秀華△

(中國人民解放軍總醫(yī)院 1門診部， 2病理生理研究室，北京 100853)

·論著·

缺氧預處理減輕內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激所致的大鼠心肌微血管內(nèi)皮細胞損傷*

武旭東1△▲， 張振英2▲, 王曉礽2, 李玉珍2， 劉秀華2△

(中國人民解放軍總醫(yī)院1門診部，2病理生理研究室，北京 100853)

目的研究缺氧預處理(hypoxic preconditioning, HPC)對內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激(endoplasmic reticulum stress, ERS)所致的心肌微血管內(nèi)皮細胞(microvascular endothelial cells, MVECs)損傷的影響。方法以毒胡蘿卜素(thapsigargin, TG)誘導大鼠心肌MVECs ERS，以乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase, LDH)漏出和細胞凋亡率檢測細胞損傷， phalloidin-FITC熒光染色和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)染色分別觀察細胞骨架和細胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)形態(tài)變化，雙向電泳-質(zhì)譜技術(shù)檢測TG作用后內(nèi)皮細胞蛋白質(zhì)譜表達變化，Western blotting技術(shù)檢測ERS相關(guān)的分子表達。結(jié)果TG劑量依賴性誘導MVECs LDH漏出和細胞凋亡，并出現(xiàn)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激分子鈣網(wǎng)蛋白(calreticulin, CRT)和葡萄糖調(diào)節(jié)蛋白78(glucose-regulated protein 78, GRP78)表達上調(diào)；HPC減輕TG誘導的MVECs損傷，并可以抑制TG誘導的ERS相關(guān)分子的表達上調(diào)。結(jié)論HPC減輕內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激所致的大鼠心肌MVECs損傷。

缺氧預處理； 微血管內(nèi)皮細胞； 內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激

高血壓、動脈粥樣硬化、冠心病等心血管疾病嚴重危及人類健康，血管內(nèi)皮功能障礙(endothelial dysfunction)是上述疾病的共同發(fā)病環(huán)節(jié)，決定疾病的發(fā)生、發(fā)展和療效，改善內(nèi)皮功能已成為心血管疾病治療的新靶點[1]，探索激發(fā)機體內(nèi)源性保護機制，增強內(nèi)皮細胞對缺血缺氧的抵抗能力，是減輕內(nèi)皮功能障礙的重要策略。缺血預處理是指預先短暫缺血可以延緩或減輕組織后續(xù)缺血/再灌注損傷的現(xiàn)象，可以被缺氧預處理(hypoxic preconditioning, HPC)所模擬[2]，是迄今已知最強的內(nèi)源性保護現(xiàn)象之一，其機制涉及減輕細胞內(nèi)鈣超載、減輕氧化應(yīng)激、誘導內(nèi)源性保護蛋白合成等多種作用。內(nèi)質(zhì)網(wǎng) (endoplasmic reticulum, ER) 是細胞內(nèi)膜/分泌蛋白合成的細胞器，在調(diào)節(jié)蛋白質(zhì)正確折疊、鈣穩(wěn)態(tài)和細胞凋亡等方面具有重要作用。血管內(nèi)皮細胞具有高度發(fā)達的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)，對應(yīng)激刺激非常敏感，缺血、缺氧等多種因素均可以誘導內(nèi)質(zhì)網(wǎng)未折疊/錯誤折疊蛋白質(zhì)的聚集和鈣穩(wěn)態(tài)破壞等功能紊亂狀態(tài)，即內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激(endoplasmic reticulum stress, ERS)。毒胡蘿卜素(thapsigargin, TG)通過抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣-ATPase、排空內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣離子誘導細胞嚴重內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激反應(yīng)。長期或過度內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激觸發(fā)C/EBP同源蛋白[CCAAT/enhancer-binding protein (C/EBP) homologous protein, CHOP]、caspase-12等內(nèi)質(zhì)網(wǎng)相關(guān)細胞死亡途徑，是缺血再灌注損傷、動脈粥樣硬化、糖尿病等[3]疾病的重要發(fā)病機制。CHOP是含有169(人)或168(嚙齒類)個氨基酸殘基的分子量為29 kD的蛋白，內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激時CHOP在轉(zhuǎn)錄水平上被誘導，其過表達可導致生長停滯和細胞凋亡。研究證實HPC通過調(diào)動內(nèi)源性保護機制減輕鈣超載、氧化應(yīng)激等病理過程而發(fā)揮細胞保護作用[4]，但是HPC是否可以直接抑制過度ERS、減輕CHOP介導的凋亡而發(fā)揮細胞保護作用尚不清楚。本實驗在原代培養(yǎng)大鼠心肌微血管內(nèi)皮細胞(microvascular endothelial cells, MVECs)模型上，采用ERS誘導劑TG誘導ERS，研究HPC對ERS 致MVECs損傷的影響及其機制。

材 料 和 方 法

1主要試劑

M199培養(yǎng)基為Gibco產(chǎn)品；內(nèi)皮細胞生長支持物(endothelial cell growth supplement, ECGS)、Ⅰ型膠原酶、FITC-albumin、phalloidin-FITC、乙二胺四乙酸(ethylenediaminetetraacetic acid, EDTA)、羥乙基哌嗪乙磺酸(hydroxyethyl piperazine ethanesulfonic acid, HEPES)、苯甲基磺酰氟(phenylmethylsulfonyl fluoride, PMSF)、Triton X-100、十二烷基硫酸鈉(sodium dodecyl sulfate, SDS)、釩酸鈉(Na2VO4)、丙烯酰胺、甲叉丙烯酰胺、二硫蘇糖醇(dithiothreitol, DTT)、leupeptin、四甲基乙二胺(tetramethylethylenediamine, TEMED)和過硫酸胺(ammonium persulfate, APS)均為Sigma產(chǎn)品；蛋白電泳分子量(7～175 kD)標記為Bio-Rad產(chǎn)品；總RNA提取試劑盒(DP419)、cDNA第1鏈合成試劑盒(KR104)、2× Taq PCR MasterMix(KT201)、100 bp DNA Ladder (MD109)和電泳級瓊脂糖(RT101)均購自北京天根生化科技有限公司；兔抗人鈣網(wǎng)蛋白(calreticulin, CRT; SPA-600)和兔抗大鼠葡萄糖調(diào)節(jié)蛋白78(glucose-regulated protein 78, GRP78; SPA-826)多克隆抗體購自Stressgen；兔抗人磷酸甘油醛脫氫酶(glyceraldehydes-3-phosphate dehydrogenase, GAPDH； Sc-25778)、兔抗小鼠CHOP(Sc-575)、兔抗人Bax(Sc-493)和兔抗人Bcl-2(Sc-783)多克隆抗體和增強化學發(fā)光(enhanced chemiluminescence, ECL；Sc-2048)試劑盒均購自Santa Cruz；辣根過氧化酶標記山羊抗兔(80259)和山羊抗小鼠IgG(79659)購自Jackson ImmunoResearch；TG(586005)購自Israel Calbiochem；乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase, LDH)測定試劑盒為南京建成生物工程研究所產(chǎn)品；Annexin V-FITC細胞凋亡檢測試劑盒購自南京凱基生物工程公司；內(nèi)質(zhì)網(wǎng)形態(tài)染色試劑盒購自上海杰美基因醫(yī)藥科技有限公司。固相pH梯度(immobilized pH gradient, IPG) buffer (pH 3～10)、 Destreak Reagent、低分子量marker、上樣濾紙和IPG干膠條(pH 3～10)為Amersham Biosciences產(chǎn)品；蛋白酶抑制劑(cocktail tablets)為Roche產(chǎn)品；碘乙酰胺為Acros organics產(chǎn)品；乙腈(色譜級)為J. T. Baker產(chǎn)品；三氟乙酸(trifluoracetic acid,TFA)為Merck產(chǎn)品；α-氰基-4-羥基肉桂酸(α-cyano-4-hydroxycinnamic acid,CHCA;質(zhì)譜基質(zhì))購自Bruker。其余化學試劑為國產(chǎn)分析純產(chǎn)品。

2心肌微血管內(nèi)皮細胞原代培養(yǎng)及分組

根據(jù)本室建立的大鼠MVECs培養(yǎng)方法進行培養(yǎng)[5]。大鼠頸椎脫臼快速處死后，無菌操作取出大鼠心臟，去除心房、右心室以及心內(nèi)膜和心外膜等組織后；剪碎心肌組織，0.1% I型膠原酶振蕩消化10 min，繼而0.1%胰蛋白酶消化10 min，重復消化1次后收集消化液，用100 μm濾網(wǎng)過濾，收集濾液，室溫下1 500 r/min離心10 min收集血管段，用M199培養(yǎng)液(新生牛血清20%，ECGS 0.02 g/L，谷氨酰胺2 mmol/L，青霉素1×105U/L，鏈霉素100 mg/L)懸浮血管段，于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中孵育4 h后換液，以后每3 d換培養(yǎng)液1次直至細胞單層融合后進行傳代培養(yǎng)。以內(nèi)皮細胞特異性表達的黏附分子和在體內(nèi)皮細胞完整性標志分子VE-cadherin 抗體(Santa Cruz) 進行細胞免疫熒光染色，鑒定培養(yǎng)的心肌MVECs，其純度為90%以上。細胞按1×104/cm2傳代用于細胞骨架染色和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)形態(tài)測定；按5×104/cm2進行傳代用于其它各項測定。同步化處理24 h后，隨機分為下列各組：(1) 正常對照組(control)：細胞常規(guī)培養(yǎng)至實驗結(jié)束；(2) 內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激組(TG組)：向培養(yǎng)液內(nèi)加入TG(終濃度分別為0.1、0.2、0.5、1 μmol/L)，置于細胞培養(yǎng)箱內(nèi)常規(guī)培養(yǎng)24 h結(jié)束實驗；(3) HPC組：按照本室報道的方法[6]將細胞置于缺氧倉內(nèi)，通入95% N2-5% CO2混合氣20 min后，常規(guī)培養(yǎng)24 h結(jié)束試驗；(4) HPC+TG組：按照步驟(3)進行HPC后，向培養(yǎng)液內(nèi)加入0.5 μmol/L TG 孵育24 h結(jié)束實驗。

3培養(yǎng)基LDH活性和細胞凋亡率檢測

實驗結(jié)束后收集各組細胞培養(yǎng)基，參照LDH試劑盒操作說明進行LDH活性測定。0.2%胰蛋白酶收集MVECs后，按照試劑盒說明分別加入Annexin V和PI，室溫孵育15 min后，流式細胞儀(Becton-Dickinson)檢測細胞凋亡率變化。

4細胞通透性檢測

MVECs按1×105/cm2接種于鋪有1%明膠的雙層通透的培養(yǎng)皿(Transwell)頂層小室微孔膜上(直徑6.5 mm，孔徑為3 mm)，待細胞長至融合，按上述實驗分組處理細胞后，參照Gillrie等[7]報道方法進行通透性測定：每個雙層小室的頂室加入100 μL (終濃度250 mg/L) FITC-albumin， 37 ℃孵育4 h后，分別取頂室培養(yǎng)液20 μL和底室培養(yǎng)液100 μL于96孔板內(nèi)，熒光酶標儀測定其熒光強度。內(nèi)皮細胞單層對白蛋白的通透性采用通透率表示：通透率(%)=底室熒光強度/(底室熒光強度+頂室熒光強度)，底室和頂室熒光強度分別采用相應(yīng)體積校正。

5細胞骨架染色

參照Zhang等[8]報道的方法，MVECs種于激光共聚焦專用培養(yǎng)皿(Mattek)，實驗結(jié)束后PBS洗滌2次，2.5%戊二醛固定30 min，1%牛血清白蛋白封閉30 min后，加入phalloidin-FITC(終濃度5 mg/L)室溫孵育1 h，PBS洗滌3次后加入DAPI標記的封片劑，在激光掃描共聚焦顯微鏡(FV1000, Olympus)下觀察并采集圖像。

6雙向電泳-質(zhì)譜分析

MVECs總蛋白質(zhì)提取及雙向電泳-質(zhì)譜分析按照本室以往報道方法進行[5]， Bradford法蛋白定量后分裝、-70 ℃保存。參照改進的膠內(nèi)加樣方法，上樣量為1 mg蛋白，平衡后的一向電泳后的IPG膠條置于二向電泳儀(Amersham Pharmacia)上進行SDS-PAGE。凝膠常規(guī)固定、考馬斯亮藍染色。圖像掃描后利用Image Master 2D Elite圖像分析(Amersham Pharmacia)軟件進行分析。選取各組凝膠中Volume值[即蛋白點的面積(area)與灰度值(intensity)的積分]相差≥2.0倍的蛋白斑點，膠內(nèi)酶切后進行質(zhì)譜分析，經(jīng)Bruker Daltonics Bio Tools 2.2軟件處理后，采用Mascot軟件在NCBI nr數(shù)據(jù)庫中進行檢索。

7RT-PCR

按照試劑盒操作說明提取培養(yǎng)內(nèi)皮細胞總RNA，兩步法行RT-PCR，總RNA逆轉(zhuǎn)錄參照cDNA第1鏈合成試劑盒操作說明，各目的基因上、下游引物(由北京三博遠志生物技術(shù)公司合成)見表1，PCR擴增反應(yīng)結(jié)束后取5 μL PCR產(chǎn)物進行1.5% 瓊脂糖凝膠電泳，電泳圖像采用Image-Pro Plus 圖像分析軟件(Version 4.1)分析平均吸光度值，以目的片段和GAPDH的平均吸光度比值反映目的基因mRNA的相對水平。

表1 PCR引物序列

GRP78: glucose-regulated protein 78; CRT: calreticulin; CHOP: C/EBP homologous protein.

8Westernblotting檢測

按本室以往報道的方法[5]提取MVECs總蛋白，Bradford法蛋白定量后分裝、-70 ℃保存。取上述蛋白提取液上清(含蛋白60 μg)進行SDS-PAGE(10%分離膠)，將電泳分離后的蛋白質(zhì)電轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜上，經(jīng)10%脫脂奶粉封閉后分別加入CRT(1∶1 000)、GRP78(1∶1 000)、CHOP(1∶200)、Bax(1∶200)、Bcl-2(1∶200)、GAPDH(1∶500)抗體，室溫孵育4 h，洗膜后以相應(yīng)的Ⅱ抗室溫孵育1 h。ECL法顯影后暗室X光膠片曝光，采用Image-Pro Plus 圖像分析軟件(Version 4.1)分析蛋白條帶的積分吸光度值(integral absorbance,IA),IA=平均吸光度值×面積，以目的蛋白IA值/GAPDHIA值的比值反映目的蛋白相對水平。

9內(nèi)質(zhì)網(wǎng)形態(tài)染色

細胞接種于激光共聚焦專用培養(yǎng)皿，實驗結(jié)束后按照內(nèi)質(zhì)網(wǎng)形態(tài)染色試劑盒說明操作。染色后細胞在激光掃描共聚焦顯微鏡(FV1000, Olympus)下觀察并采集圖像。

10統(tǒng)計學處理

采用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件對實驗數(shù)據(jù)進行分析，數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準差(mean±SD) 表示，多組間比較應(yīng)用單因素方差分析(One-way ANOVA)，組間兩兩比較應(yīng)用Student-Newman-Keuls檢驗，以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

結(jié) 果

1內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導MVECs損傷

采用不同濃度內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導劑TG作用培養(yǎng)MVECs，培養(yǎng)基LDH活性和細胞凋亡率測定檢測TG對MVECs損傷的影響，結(jié)果發(fā)現(xiàn)TG劑量依賴性地誘導培養(yǎng)基LDH活性和細胞凋亡率增加，見圖1。與正常對照組相比，0.1 μmol/L TG 誘導MVECs培養(yǎng)基LDH活性增加55.6% (P<0.05)，但細胞凋亡率無顯著變化。0.2 μmol/L TG 誘導MVECs凋亡率較正常對照組增加11.8% (P<0.05)，隨著TG濃度增加，LDH活性和細胞凋亡率劑量依賴性地增加。此外，1 μmol/L TG誘導MVECs損傷較為嚴重，培養(yǎng)基LDH活性和細胞凋亡率較0.5 μmol/L TG組分別增加29.5% (P<0.05)和11.1% (P<0.05)。故采用0.5 μmol/L TG 組誘導MVECs損傷進行下述實驗。

2HPC減輕內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導的MVECs損傷

采用0.5 μmol/L TG誘導MVECs顯著損傷，低氧30 min復氧24 h進行HPC后觀察MVECs損傷變化，結(jié)果發(fā)現(xiàn)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導MVECs顯著損傷，TG組培養(yǎng)基LDH活性和細胞凋亡率分別較對照組增加70.3%(P<0.05)和12.37%(P<0.05)，HPC可顯著抑制TG誘導的微血管內(nèi)皮細胞損傷，HPC+TG組LDH活性和細胞凋亡率分別較TG組降低21.6%(P<0.05)和8.58%(P<0.05)，并且細胞凋亡率與對照組無顯著差異(P>0.05)。單純HPC對MVECs無顯著損傷，見圖2。

Figure 1. Effect of different doses of TG on MVECs injury. A:LDH activity in MVECs medium; B: apoptotic rate of MVECs. Mean±SD.n=4.*P<0.05vs0 μmol/L;#P<0.05vs0.5 μmol/L.

圖1不同濃度TG對MVECs損傷的影響

Figure 2. Effect of HPC on TG-induced MVECs injury.A: LDH activity in MVECs medium; B: apoptotic rate of MVECs. Mean±SD.n=4.*P<0.05vscontrol;#P<0.05vsTG.

圖2HPC對TG誘導的MVECs損傷的影響

3HPC減輕內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導的MVECs通透性增加和細胞骨架破壞

FITC-albumin 熒光標記技術(shù)發(fā)現(xiàn)，內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導MVECs通透性顯著增加，TG組細胞通透性較對照組增加92.5% (P<0.05)，HPC顯著降低TG誘導的細胞通透性增加，HPC+TG組細胞通透性較TG組降低13.9% (P<0.05)，但細胞通透性仍較對照組增加65.8%(P<0.05)。單純HPC對微血管內(nèi)皮細胞通透性無顯著影響，見圖3A。與MVECs通透性改變一致，內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導MVECs細胞骨架顯著破壞，TG組肌原纖維斷裂，排列紊亂，無明顯的應(yīng)力纖維，細胞骨架內(nèi)出現(xiàn)空泡。HPC顯著減輕TG誘導的細胞骨架破壞，肌原纖維排列整齊，無顯著斷裂和空泡形成，與對照組無顯著差異，見圖3B，提示HPC通過減輕細胞骨架破壞進而發(fā)揮細胞保護作用。

Figure 3. Effects of HPC on permeability and cytoskeletal structure in MVECs treated with TG.A: permeability of MVECs; B: cytoskeletal structure in MVECs. Mean±SD.n=4.*P<0.05vscontrol;#P<0.05vsTG.

圖3HPC對TG誘導的MVECs通透性和細胞骨架的影響

4TG誘導MVECs蛋白質(zhì)表達譜變化

雙向電泳-質(zhì)譜技術(shù)發(fā)現(xiàn)TG作用后MVECs中7種蛋白質(zhì)出現(xiàn)明顯差異表達，與正常對照組比較，TG組6種蛋白質(zhì)表達上調(diào)，1種蛋白質(zhì)表達下調(diào)。7種蛋白質(zhì)的序列號、蛋白名稱和主要功能見表2。其中TG誘導MVECs細胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激分子GRP78和蛋白質(zhì)二硫鍵異構(gòu)酶相關(guān)蛋白3(protein disulfide isomerase-associated 3，PDIA3)顯著升高，其差異圖像和肽質(zhì)量指紋圖譜見圖4。

Figure 4. Proteomic profiles of MVECs treated with or without TG.A: differential expression of PDIA3 and GRP78 in MVECs; B: peptide mass fingerprint of PDIA3;C: peptide mass fingerprint of GRP78.

圖4TG誘導的MVECs蛋白質(zhì)譜變化

表2 質(zhì)譜分析后7個蛋白點Mascot檢索結(jié)果

↑: increased in TG groupvscontrol group; ↓: decreased in TG groupvscontrol group.

5HPC抑制MVECsCHOP介導的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)凋亡途徑

5.1內(nèi)質(zhì)網(wǎng)形態(tài)的改變 采用內(nèi)質(zhì)網(wǎng)特異性染料Dapoxyl標記MVECs內(nèi)質(zhì)網(wǎng)，激光共聚焦顯微鏡觀察顯示正常MVECs 內(nèi)質(zhì)網(wǎng)均勻分布在核周，無空泡出現(xiàn)；內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導劑TG誘導MVECs 內(nèi)質(zhì)網(wǎng)形態(tài)顯著受損，熒光顆粒分布不均、濃集，并有空泡形成；HPC顯著抑制TG誘導的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)損傷，熒光顆粒分布均勻，無空泡形成，與正常對照組無顯著差異，見圖5A。

5.2內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激分子CRT和GRP78表達的改變 采用RT-PCR和Western blotting技術(shù)檢測內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激標志性分子CRT和GRP78的表達發(fā)現(xiàn)，TG誘導MVECs CRT和GRP78表達顯著增加，TG組CRT mRNA和蛋白表達分別較對照組增加46.2% (P<0.05)和71.8% (P<0.05)，GRP78 mRNA和蛋白表達分別較對照組增加46.7% (P<0.05)和44.4% (P<0.05)。HPC顯著抑制CRT 蛋白表達，HPC+TG組CRT蛋白表達較TG組降低20.7% (P<0.05)，但對CRT mRNA表達和GRP78 表達無顯著抑制。單純HPC可促進CRT表達增加，HPC組CRT mRNA和蛋白表達分別較對照組增加32.2% (P<0.05)和24.2%(P<0.05)，但對GRP78 表達無顯著影響，見圖5B、C。

5.3CHOP相關(guān)凋亡途徑變化 TG組CHOP mRNA和蛋白表達分別較對照組增加29.5%(P<0.05)和84.3%(P<0.05)，HPC對TG誘導的CHOP mRNA表達無顯著影響，但顯著抑制TG誘導的CHOP表達增加，HPC+TG組CHOP蛋白水平較TG組降低35.6%(P<0.05)。單純HPC對MVECs CHOP表達無顯著影響，見圖6。Bax是重要的促凋亡蛋白，而Bcl-2是重要的抑凋亡蛋白，Bax/Bcl-2比值反映HPC對TG誘導的MVECs損傷的影響。TG誘導的MVECs Bax/Bcl-2比值顯著增加，TG組Bax/Bcl-2比值mRNA和蛋白水平分別較對照組增加181.5%(P<0.05)和107.5%(P<0.05)，HPC顯著抑制TG誘導的Bax/Bcl-2比值增加，HPC+TG組Bax/Bcl-2比值mRNA和蛋白水平分別較TG組降低76.1%(P<0.05)和40.4%(P<0.05)。單純HPC對內(nèi)皮細胞Bax/Bcl-2比值無顯著影響，見圖7。上述結(jié)果提示HPC可能通過抑制CHOP介導的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)凋亡途徑而發(fā)揮細胞保護作用。

討 論

內(nèi)皮功能障礙是高血壓、動脈粥樣硬化、冠心病等疾病的共同發(fā)病環(huán)節(jié)，決定疾病的發(fā)生、發(fā)展和療效。心肌微血管內(nèi)皮細胞在參與物質(zhì)交換、防止血小板聚集和血栓形成等方面具有重要作用，而且通過分泌活性物質(zhì)直接影響心肌細胞。微血管內(nèi)皮細胞功能障礙和凋亡通過誘導動脈粥樣硬化、血栓形成等多種作用參與了缺血性心臟病的發(fā)生。缺血預處理是迄今最強的內(nèi)源性保護現(xiàn)象之一，并被HPC所模擬，自從1986年Murry等[9]發(fā)現(xiàn)這一現(xiàn)象以來，其對缺血及再灌注損傷的保護作用在多種模型和不同器官、組織上得到證實，但其內(nèi)源性保護機制目前并未完全闡明，涉及減輕細胞內(nèi)鈣超載、氧化應(yīng)激、誘導內(nèi)源性保護蛋白合成等多種機制。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)是細胞內(nèi)穩(wěn)態(tài)調(diào)節(jié)和蛋白質(zhì)折疊、合成的細胞器，缺血、缺氧、鈣超載、氧化應(yīng)激等因素均可誘導ERS。大量研究證實ERS及相關(guān)凋亡參與了缺血性心臟病的發(fā)生、發(fā)展過程[3,10]。為證實HPC的內(nèi)源性保護作用涉及直接減輕內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導的細胞損傷，本工作在ERS誘導劑TG致大鼠心肌MVECs內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激模型上研究HPC的細胞保護作用，結(jié)果發(fā)現(xiàn)HPC顯著抑制TG誘導的MVECs LDH漏出和細胞凋亡，減輕其通透性增加和細胞骨架破壞，提示HPC可以直接抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導的MVECs損傷。

Figure 5. Effects of HPC on ER structure and expression of CRT and GRP78 in MVECs treated with TG.A: ER structure;B: mRNA levels of CRT and GRP78; C: protein levels of CRT and GRP78.DIC: differential interference contrast microscopy. Mean±SD.n=4.*P<0.05vscontrol;#P<0.05vsTG.

圖5HPC對TG誘導的MVECsER形態(tài)以及CRT和GRP78表達的影響

Figure 6. Effect of HPC on CHOP expression in MVECs treated with TG.A: mRNA level of CHOP; B: protein level of CHOP. Mean±SD.n=4.*P<0.05vscontrol;#P<0.05vsTG.

圖6HPC對TG誘導的MVECs內(nèi)CHOP表達的影響

內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激通常表現(xiàn)為內(nèi)質(zhì)網(wǎng)分子伴侶CRT和GRP78表達上調(diào)。CRT是內(nèi)質(zhì)網(wǎng)內(nèi)駐留的鈣結(jié)合蛋白，在細胞鈣穩(wěn)態(tài)調(diào)節(jié)中具有重要作用[10]，并與GRP78一起作為分子伴侶，調(diào)節(jié)蛋白合成、折疊[11]，旨在穩(wěn)定細胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)功能，保持細胞內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)。PDIA3 是內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激蛋白成員，可被氧化應(yīng)激誘導，參與蛋白質(zhì)質(zhì)量控制過程[12]。本實驗采用雙向電泳-質(zhì)譜技術(shù)發(fā)現(xiàn)TG誘導MVECs內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激分子GRP78和PDIA3表達增加，Western blotting證實內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激分子TG誘導MVECs內(nèi)CRT和GRP78表達顯著增加，而內(nèi)質(zhì)網(wǎng)染色證實TG誘導MVECs內(nèi)質(zhì)網(wǎng)形態(tài)顯著損傷和空泡化，上述結(jié)果提示TG誘導MVECs嚴重的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激。

Figure 7. Effects of HPC on expression of Bax and Bcl-2 in MVECs treated with TG.A: mRNA level of Bax and Bcl-2; B: protein level of Bax and Bcl-2.Mean±SD.n=4.*P<0.05vscontrol;#P<0.05vsTG.

圖7HPC對TG誘導的MVECs內(nèi)Bax和Bcl-2表達的影響

研究發(fā)現(xiàn)CRT過度表達參與了大鼠冠狀動脈結(jié)扎心肌梗死和培養(yǎng)心肌細胞缺氧復氧損傷，HPC誘導CRT適度表達參與了HPC的心肌保護作用,并抑制缺氧復氧誘導的心肌細胞CRT過表達和游離Ca2+濃度增加[11]。研究證實細胞內(nèi)游離Ca2+濃度增加激活鈣依賴性蛋白酶，繼而降解收縮蛋白，引起細胞骨架破壞[13]。本實驗發(fā)現(xiàn)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導MVECs內(nèi)質(zhì)網(wǎng)形態(tài)損傷和空泡化，細胞骨架嚴重破壞，無明顯應(yīng)力纖維，細胞骨架呈現(xiàn)彌散性破壞并出現(xiàn)空泡，同時細胞通透性顯著升高。HPC顯著抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導的上述損傷，內(nèi)質(zhì)網(wǎng)形態(tài)和細胞骨架與正常對照組無顯著差異，提示HPC可能通過抑制CRT過表達，繼而抑制細胞內(nèi)Ca2+濃度增加誘導的骨架破壞而發(fā)揮細胞保護作用。

過度或嚴重內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導內(nèi)質(zhì)網(wǎng)相關(guān)凋亡蛋白CHOP表達上調(diào)。CHOP又稱為生長停滯及DNA損傷誘導蛋白153(growth arrest and DNA damage inducible protein 153, GADD153)，它通過直接調(diào)節(jié)核中靶基因，增加細胞對內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激介導凋亡的敏感性。siRNA 干擾CHOP表達可抵抗內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導的細胞凋亡[14]，而CHOP過表達則促進細胞凋亡[15]。研究發(fā)現(xiàn)CHOP過表達導致抗凋亡蛋白Bcl-2表達降低，并且導致促凋亡蛋白Bax從胞漿內(nèi)向線粒體內(nèi)易位[16]，Bcl-2過表達和bax基因敲除均可抑制CHOP誘導的細胞凋亡[17-18]。本實驗發(fā)現(xiàn)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導劑TG誘導MVECs CHOP蛋白表達和Bax/Bcl-2比值顯著增加，HPC顯著抑制CHOP介導的細胞凋亡途徑，提示HPC通過抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)CHOP凋亡途徑、減輕細胞凋亡繼而發(fā)揮細胞保護作用。

本研究在原代培養(yǎng)心肌MVECs上發(fā)現(xiàn)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導MVECs顯著損傷，促進細胞骨架破壞和通透性增加；HPC可能通過誘導適度內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激、抑制CHOP介導的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)凋亡途徑而減輕MVECs損傷及細胞骨架破壞，提示HPC的內(nèi)源性保護機制可能涉及直接抑制CHOP介導的過度內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激反應(yīng)，為內(nèi)皮功能障礙相關(guān)疾病的防治提供了新的治療靶點。

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Hypoxicpreconditioningprotectsratmyocardialmicrovascularendothelialcellsagainstendoplasmicreticulumstress-inducedinjury

WU Xu-dong1, ZHANG Zhen-ying2, WANG Xiao-reng2, LI Yu-zhen2, LIU Xiu-hua2

(1Out-patientDepartment,2DepartmentofPathophysiology,ChinesePeople’sLiberationArmyGeneralHospital,Beijing100853,China.E-mail:wuxudong60@yahoo.com.cn)

AIM: To investigate the effect of hypoxic preconditioning (HPC) on endoplasmic reticulum stress (ERS)-induced injury in cultured microvascular endothelial cells (MVECs) from rat hearts.METHODSMVECs injury was induced by an ERS inductor thapsigargin (TG). Lactate dehydrogenase (LDH) leakage and apoptotic rate were detected to evaluate the injury of MVECs. Cytoskeleton and endoplasmic reticulum (ER) in MVECs were observed by phalloidin-FITC fluorescence staining and ER staining, respectively. Two-dimensional electrophoresis and mass spectrometry (MS) were used to identify proteomic profile in MVECs treated with TG. Western blotting was used to detect the expression of ERS markers, calreticulin (CRT) and glucose-regulated protein 78 (GRP78).RESULTSTG induced the increase in LDH activity in medium and the apoptosis of MVECs in a dose-dependent manner. TG treatment up-regulated the expression of CRT and GRP78, while HPC attenuated the ERS-induced injury and the up-regulation of ERS markers in MVECs.CONCLUSIONHPC protects MVECs from ERS-induced injury.

Hypoxic preconditioning; Microvascular endothelial cells; Endoplasmic reticulum stress

R363.1

A

1000- 4718(2013)09- 1537- 09

2012- 09- 17

2013- 08- 16

國家自然科學基金資助項目(No. 81070186)

△通訊作者 Tel: 010-66937334; E-mail: wuxudong60@yahoo.com.cn

▲并列第1作者

10.3969/j.issn.1000- 4718.2013.09.001