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        十二烷醇對(duì)酵母細(xì)胞影響的研究

        2013-10-10 09:31:26袁永俊胡麗麗代亞民
        食品工業(yè)科技 2013年13期
        關(guān)鍵詞:烷醇毒害培養(yǎng)液

        楊 攀,袁永俊,*,王 健,胡麗麗,代亞民,代 斌

        (1.西華大學(xué)生物工程學(xué)院,四川成都610039;2.四川省產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)檢測(cè)院,四川成都610031)

        固定化酵母又叫固定化活細(xì)胞或固定化增殖細(xì)胞,是指用適當(dāng)?shù)妮d體材料和科學(xué)的方法將活酵母固定在載體上,使該細(xì)胞能在適宜的條件下不斷生長(zhǎng)繁殖,從而能促使有機(jī)物質(zhì)連續(xù)地進(jìn)行反應(yīng)[1]。固定化酵母細(xì)胞的應(yīng)用,使乙醇萃取發(fā)酵得到迅速的發(fā)展。Minier和 Coma較早提出了乙醇發(fā)酵的方案[2],他們將酵母細(xì)胞固定化,并在培養(yǎng)基中加入十二烷醇進(jìn)行內(nèi)部隨程萃取發(fā)酵,結(jié)果葡萄糖轉(zhuǎn)化比較徹底,乙醇產(chǎn)率也比較高。本研究在游離酵母細(xì)胞和固定化酵母細(xì)胞中加入十二烷醇萃取劑,并通過(guò)測(cè)定內(nèi)部隨程發(fā)酵和外部隨程發(fā)酵后殘?zhí)呛恳约凹?xì)胞生的OD值作為指標(biāo)分析,探討十二烷醇對(duì)酵母游離細(xì)胞和固定化細(xì)胞的影響。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        十二烷醇、葡萄糖、海藻酸鈉 成都科隆試劑有限公司;安琪牌活性干酵母 湖北安琪酵母股份有限公司。

        電子天平 北京塞多利斯天平有限公司;SHB-A型水浴恒溫振蕩器 榮華有限公司;UV-2600型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì) 龍泥科上海有限公司;PHS-25型酸度計(jì) 成都方舟科技開(kāi)發(fā)公司。

        1.2 實(shí)驗(yàn)方法

        1.2.1 酵母細(xì)胞的固定化 按每100mL蔗糖加入3~4g活性酵母的比例,在2%蔗糖水中32℃條件下活化2h。加入糖度為10Be的麥芽汁培養(yǎng)基[3],放入搖床中在28℃,120r/min條件下增殖24h。將增殖后的培養(yǎng)液無(wú)菌條件下用離心管分裝,在3000r/min、4℃下離心10min棄去上清液,加入適量無(wú)菌生理鹽水,將其振蕩打散以清洗菌體,重復(fù)三次,最后一次用無(wú)菌水混合菌體制備菌懸液(每1mL菌懸液中含有0.2g 濕菌體)[4]。與 3% 的海藻酸鈉溶液[5]混合均勻,利用注射器吸取混合液,無(wú)菌條件下滴入2%CaCl2溶液,形成球狀顆粒。冷凍或常溫下靜置2h以上,使其充分固化后,再用無(wú)菌水洗滌三遍[6]。

        1.2.2 固定化酵母的增殖 每50g固定化酵母顆粒中加100mL增殖培養(yǎng)基,搖床30℃,120r/min,震蕩培養(yǎng) 24h[7]。

        1.2.3 細(xì)胞生長(zhǎng)OD值的測(cè)定 細(xì)胞生長(zhǎng)狀況的測(cè)定采用分光光度計(jì)法,在600nm處測(cè)吸光度[8]。

        游離細(xì)胞生長(zhǎng)測(cè)定:吸取1mL樣品菌液于微量離心管中,1200r/min離心1min,棄上清夜,再充分震蕩將菌體完全分散,定容至10mL,搖勻,以蒸餾水為對(duì)照,在600nm處測(cè)定OD值。

        固定化細(xì)胞生長(zhǎng)測(cè)定;將一粒固定化小球溶于含有7mL磷酸溶液的試管中(8%KH2PO4+7%K2HPO4,pH6.5),震蕩 2h 溶解,4000r/min 離心10min,生理鹽水定容至10mL,以蒸餾水為對(duì)照,在600nm處測(cè)定OD值。

        1.2.4 殘?zhí)菧y(cè)定方法 剩余殘?zhí)堑臏y(cè)定采用斐林試劑法[9]。

        2 結(jié)果與分析

        內(nèi)部隨程萃取是指萃取劑在反應(yīng)器中與培養(yǎng)基直接接觸,以便將產(chǎn)物萃取到溶劑中去。外部隨程萃取是指將培養(yǎng)液引出反應(yīng)器,萃取劑和培養(yǎng)液在另外的萃取裝置中接觸,從而萃取產(chǎn)物的過(guò)程[10]。

        2.1 萃取劑對(duì)游離細(xì)胞發(fā)酵的影響(內(nèi)部隨程萃取發(fā)酵系統(tǒng))

        從圖1可以看出,隨著萃取劑濃度的增加,細(xì)胞生長(zhǎng)OD值下降,萃取劑對(duì)游離細(xì)胞毒害增加,4條細(xì)胞生長(zhǎng)曲線分散,差別比較大,酵母細(xì)胞的生長(zhǎng)受到較大抑制。造成這種現(xiàn)象的原因可能是有機(jī)溶劑對(duì)細(xì)胞存在“相”毒性和“分子”毒性,“相”毒性由兩相界面引起,“分子”毒性由溶解于水中的有機(jī)溶劑作用而引起[11]。由于游離的酵母細(xì)胞在培養(yǎng)基中直接和萃取劑接觸,萃取劑的濃度越大,根據(jù)擴(kuò)散現(xiàn)象,進(jìn)入細(xì)胞里面的濃度也越大,產(chǎn)生的毒害作用越強(qiáng),細(xì)胞生長(zhǎng)就會(huì)下降。

        圖1 萃取劑濃度對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)OD值的影響Fig.1 Effect of extraction solvent’s concentration on cell’s growth

        從圖2可以看出,隨著萃取劑濃度增加,糖的降解率降低,這正與圖1中細(xì)胞生長(zhǎng)下降的現(xiàn)象相符合,萃取劑濃度高時(shí)酵母菌的生長(zhǎng)受到抑制,葡萄糖沒(méi)有被酵母菌充分利用,從而導(dǎo)致殘?zhí)堑暮亢芨?,在發(fā)酵40h左右時(shí),殘?zhí)呛孔罡哌_(dá)8%左右,沒(méi)添加萃取劑的殘?zhí)呛績(jī)H為1.5%,兩者差別大。

        圖2 萃取劑濃度對(duì)殘?zhí)菨舛鹊挠绊慒ig.2 Effect of extraction solvent’s concentration on residual sugar

        2.2 萃取劑對(duì)固定化細(xì)胞的影響(內(nèi)部隨程萃取發(fā)酵系統(tǒng))

        從圖3變化可以看出,隨著萃取劑濃度的增加,萃取劑對(duì)固定化細(xì)胞的毒害仍然存在,但是相比較游離細(xì)胞來(lái)說(shuō)明顯有所改善,內(nèi)部隨程萃取發(fā)酵時(shí)高濃度的十二烷醇與培養(yǎng)液存在“相”現(xiàn)象,有機(jī)溶劑會(huì)部分?jǐn)U散到培養(yǎng)液中,由于兩者在同一裝置中,培養(yǎng)液中萃取劑的濃度會(huì)維持在一個(gè)穩(wěn)定的狀態(tài),培養(yǎng)液中的有機(jī)溶劑分子就會(huì)滲透到細(xì)胞內(nèi),對(duì)細(xì)胞產(chǎn)生毒害作用,對(duì)發(fā)酵產(chǎn)生了一定影響。相比游離細(xì)胞,細(xì)胞固定化,可以較大程度地減少有機(jī)溶劑和生物細(xì)胞的接觸,減小了“分子”毒性的影響,因而有效地緩解有機(jī)溶劑的毒害作用。4條細(xì)胞生長(zhǎng)曲線已經(jīng)稍微接近,證明固定化細(xì)胞對(duì)萃取劑的毒性有良好的抵抗能力。

        圖3 萃取劑濃度對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)OD值的影響Fig.3 Effect of extraction solvent’s concentration on cell’s growth

        從圖4可以進(jìn)一步看出,固定化細(xì)胞所帶來(lái)的實(shí)際效果,由于細(xì)胞的生長(zhǎng)不再像之前那樣受萃取劑的嚴(yán)重毒害,降糖效果比較良好,各條降糖曲線相對(duì)比較接近,固定化細(xì)胞內(nèi)部隨程萃取發(fā)酵系統(tǒng)已經(jīng)有了較好的結(jié)果,殘?zhí)呛渴O铝?%左右,但是,仍然可以看到萃取劑對(duì)細(xì)胞的毒害以及其他方面的抑制作用存在。

        圖4 萃取劑濃度對(duì)殘?zhí)菨舛鹊挠绊慒ig.4 Effect of extraction solvent’s concentration on residual sugar

        2.3 萃取劑對(duì)固定化細(xì)胞的影響(外部隨程萃取發(fā)酵系統(tǒng))

        從圖5和圖6可以看出,隨著萃取劑濃度的增加,萃取劑對(duì)固定化細(xì)胞毒害再次降低,各條曲線進(jìn)一步接近。而殘?zhí)堑淖兓厔?shì)曲線幾乎有合攏的趨勢(shì),殘?zhí)窃诎l(fā)酵40h后基本上是在1%左右。從細(xì)胞生長(zhǎng)OD值和殘?zhí)堑淖兓厔?shì)兩個(gè)指標(biāo),足以證明萃取劑對(duì)固定化細(xì)胞外部隨程萃取發(fā)酵系統(tǒng)的影響已經(jīng)達(dá)到令人滿意的效果。因?yàn)楣潭ɑ?xì)胞外部隨程萃取時(shí),由于萃取劑和培養(yǎng)液在兩個(gè)裝置中,消除了“相”毒性的存在,同時(shí)由于培養(yǎng)液中的萃取劑僅為萃取結(jié)束后培養(yǎng)液返回時(shí)攜帶的少量溶劑,“分子“毒性降低到了最小,因此對(duì)細(xì)胞的毒害作用很小。從殘?zhí)堑暮繉?duì)比就可以得出來(lái)。不同濃度的萃取劑其殘?zhí)呛坎顒e很小。

        圖5 萃取劑濃度對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)OD值的影響Fig.5 Effect of extraction solvent’s concentration on cell’s growth

        圖6 萃取劑濃度對(duì)殘?zhí)菨舛鹊挠绊慒ig.6 Effect of extraction solvent’s concentration on residual sugar

        3 結(jié)論

        3.1 采用不同濃度的萃取劑對(duì)游離酵母細(xì)胞和固定化酵母細(xì)胞的毒害性進(jìn)行分析,從生長(zhǎng)曲線和殘?zhí)呛績(jī)蓚€(gè)指標(biāo)考察,隨著萃取劑濃度的增加,對(duì)游離的細(xì)胞的毒害也在增加,生長(zhǎng)曲線很散,酵母生長(zhǎng)受到抑制,使得殘?zhí)呛恳脖容^大。

        3.2 萃取劑對(duì)固定化細(xì)胞毒害性相對(duì)較小,外部隨程發(fā)酵效果比內(nèi)部隨程發(fā)酵效果更明顯,從生長(zhǎng)曲線和殘?zhí)呛恐垒腿┑挠绊懞苄?。因此?duì)固定化細(xì)胞采取外部隨程發(fā)酵是最佳的方法。

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