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        花生衣質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的初步研究

        2013-09-26 11:35:06朱麗紅賀文娟白璐唐志書
        中國(guó)現(xiàn)代中藥 2013年10期
        關(guān)鍵詞:浸出物兒茶素灰分

        朱麗紅,賀文娟,白璐,唐志書

        (陜西中醫(yī)學(xué)院,陜西 咸陽(yáng) 712046)

        花生衣質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的初步研究

        朱麗紅,賀文娟,白璐,唐志書*

        (陜西中醫(yī)學(xué)院,陜西 咸陽(yáng) 712046)

        目的:擬制定花生衣的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)并對(duì)其進(jìn)行薄層鑒別和含量測(cè)定,為藥用植物資源的開發(fā)利用提供科學(xué)依據(jù)。方法:測(cè)定8批花生衣的水分,灰分,酸不溶性灰分,水浸出物,醇浸出物;用薄層色譜法進(jìn)行定性鑒別;用高效液相法測(cè)定其兒茶素含量。結(jié)果:花生衣中水分不得超過(guò)(9.492 5±0.148 0)%,灰分不得超過(guò)(2.397 5±0.078 4)%,酸不溶性灰分不得超過(guò)(0.257 5±0.016 6)%,水浸出物不得超過(guò)(11.85±0.057 9)%,醇浸出物不得超過(guò)(25.43±0.234 5)%,薄層色譜法可用于鑒別花生衣,高效液相色譜法測(cè)定的兒茶素含量穩(wěn)定。結(jié)論:該方法簡(jiǎn)單、準(zhǔn)確、重復(fù)性好,為建立花生衣藥材質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)提供了依據(jù)。

        花生衣;質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn);兒茶素;薄層鑒別;高效液相色譜法

        花生衣來(lái)源于豆科落花生屬植物落花生ArachishypogaeaL.的種皮,味甘、微苦、澀,性平,有養(yǎng)血止血,散瘀消腫之功效[1]?;ㄉ录仁鞘称罚质侵兴?。歷版《中國(guó)藥典》均未收載花生衣,為了制訂花生衣藥材的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn),更好地開發(fā)和利用我國(guó)豐富的花生衣資源,筆者就花生衣樣品的水分、灰分、酸不溶灰分、水浸出物、醇浸出物進(jìn)行測(cè)定。臨床報(bào)道花生衣對(duì)多種出血癥有明顯的止血效果,有藥廠以花生衣作為原料,提取凝血粉、止血注射液和凝血糖漿等[2]。其中止血機(jī)理及有效成分并不十分清楚,但文獻(xiàn)報(bào)道花生衣中含有大量黃酮類成分,而有藥理實(shí)驗(yàn)表明其中的兒茶素可使離體兔耳血管收縮,能減低毛細(xì)血管通透性及脆性等[3],這與花生衣的止血作用是一致的,所以筆者認(rèn)為兒茶素為花生衣止血有效成分。為此實(shí)驗(yàn)以兒茶素為對(duì)照品,開展薄層色譜定性鑒別和HPLC含量測(cè)定。

        1 儀器與材料

        1.1 儀器

        Waters2600高效液相測(cè)譜儀;電子天平(梅特勒-托利多儀器有限公司);電熱鼓風(fēng)干燥箱(上海一恒科學(xué)儀器有限公司);電熱套;索氏提取器;水浴鍋。

        1.2 試藥

        8批花生衣購(gòu)于陜西省藥材市場(chǎng),產(chǎn)地信息見表1。兒茶素對(duì)照品(中國(guó)食品藥品檢定研究院,批號(hào):110877-201102)。甲醇、乙腈為色譜純(Fisher公司);其余試劑均為分析純;水為超純水。

        表1 花生衣藥材樣品產(chǎn)地信息

        2 方法與結(jié)果

        2.1 水分測(cè)定

        取花生衣粉末(過(guò)二號(hào)篩)約2 g,精密稱定,按照2010年版《中國(guó)藥典》一部附錄IX H項(xiàng)下水分測(cè)定第一法測(cè)定,結(jié)果見表2。

        2.2 灰分測(cè)定

        2.2.1 總灰分測(cè)定 取花生衣藥材粉末(過(guò)二號(hào)篩)約3 g,精密稱定,按照2010年版《中國(guó)藥典》一部附錄IX K項(xiàng)下總灰分法測(cè)定,結(jié)果見表2。

        2.2.2 酸不溶性灰分測(cè)定 取2.2.1項(xiàng)下所得灰分,按照2010年版《中國(guó)藥典》一部附錄IXK項(xiàng)下酸不溶性灰分測(cè)定,結(jié)果見表2。

        2.3 水浸出物測(cè)定

        按照2010年版《中國(guó)藥典》一部附錄水溶性浸出物測(cè)定法項(xiàng)下的冷浸法測(cè)定,結(jié)果見表2。

        2.4 醇浸出物測(cè)定

        照水溶性浸出物測(cè)定法測(cè)定,結(jié)果見表2。

        表2 花生衣水分、灰分、酸不溶性灰分、浸出物含量測(cè)定 /%

        2.5 薄層色譜的定性鑒別

        2.5.1 供試品溶液的制備 取上述8批藥材粉末(過(guò)二號(hào)篩)各1 g,加甲醇30 mL,精密稱重,超聲處理30 min放冷至室溫,用甲醇補(bǔ)足減失重量,濾過(guò),取續(xù)濾液,作為供試品溶液[4]。

        2.5.2 對(duì)照品溶液的制備 取兒茶素對(duì)照品加甲醇制成0.1 mg·mL-1的對(duì)照品溶液。

        2.5.3 薄層鑒別 吸取對(duì)照品溶液、供試品溶液各3 μL,分別點(diǎn)于同一以羧甲基纖維素鈉為黏合劑制成的硅膠G板上,以二氯甲烷-甲醇-甲酸(4∶1∶1)[5]為展開劑,預(yù)飽和15 min,展開,取出晾干,噴以10%硫酸乙醇溶液,于105 ℃加熱至斑點(diǎn)顯色清晰。可見供試品與對(duì)照品在同一位置顯相同顏色的斑點(diǎn),結(jié)果見圖1。

        1.兒茶素對(duì)照品;2~9.1~8號(hào)供試品圖1 花生衣薄層鑒別圖

        2.6 兒茶素含量測(cè)定

        2.6.1 兒茶素對(duì)照品溶液的制備 精密稱取兒茶素對(duì)照品10 mg,置于50 mL量瓶中,加入50%甲醇溶解并定容至刻度,即得濃度為0.2 mg·mL-1的對(duì)照品溶液[6]。

        2.6.2 供試品溶液的制備 稱取花生衣粉末(過(guò)三號(hào)篩)1 g,精密稱定,置具塞錐形瓶中,加入50%甲醇15 mL,稱定重量,于80 ℃水浴加熱回流2次,每次1 h,濾過(guò),合并濾液。將濾液于水浴上蒸干,用50%甲醇溶解并轉(zhuǎn)移至10 mL量瓶中,定容至刻度,0.45 μm微孔濾膜濾過(guò),取續(xù)濾液,作為供試品溶液[4]。

        2.6.3 色譜條件 色譜柱:Thermo BDS Hypersil C18(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相:乙腈-水(10∶90);檢測(cè)波長(zhǎng):280 nm;流速:1 mL·min-1;柱溫:30 ℃。精密吸取對(duì)照品及供試品溶液各10 μL注入液相色譜儀,記錄色譜圖,見圖2。花生衣中的樣品峰與兒茶素中的峰出峰時(shí)間一致,都在17 min左右出峰。

        A.兒茶素對(duì)照品 B.花生衣樣品圖2 花生衣樣品與對(duì)照品HPLC圖

        2.6.4 方法學(xué)考察

        2.6.4.1 線性關(guān)系考察 精密量取兒茶素對(duì)照品溶液,分別加50%甲醇稀釋成30,90,120,150,180,210 μg·mL-1的對(duì)照品溶液。分別精密吸取上述溶液各10 μL注入液相色譜儀測(cè)定,以兒茶素進(jìn)樣量(μg)為橫坐標(biāo),測(cè)得的峰面積為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線?;貧w方程為Y=550 085X+2 085.9(r=0.999 6),結(jié)果表明兒茶素在0.3~2.8 μg呈良好線性關(guān)系。

        2.6.4.2 精密度試驗(yàn) 精密吸取濃度為0.2 mg·mL-1的兒茶素對(duì)照品溶液10 μL,重復(fù)進(jìn)樣6次,測(cè)定峰面積,結(jié)果RSD=1.23%,表明儀器精密度良好。

        2.6.4.3 穩(wěn)定性試驗(yàn) 精密吸取同一供試品溶液,分別于0,3,6,12,18 h時(shí)進(jìn)樣10 μL,測(cè)定峰面積,結(jié)果RSD=0.94%,表明樣品溶液在18 h內(nèi)基本穩(wěn)定。

        2.6.4.4 重復(fù)性試驗(yàn) 取花生衣粉末6份,按供試品溶液的制備方法制備,測(cè)定樣品峰面積,結(jié)果兒茶素RSD=0.81%,表明重復(fù)性良好。

        2.6.4.5 加樣回收率試驗(yàn) 取已知含量的樣品(兒茶素含量:0.99 mg·g-1)6份,分別加入兒茶素對(duì)照品溶液(0.2 mg·mL-1)1,3,5,7,9 mL,按樣品測(cè)定方法測(cè)定兒茶素含量,計(jì)算回收率,結(jié)果見表3。

        表3 兒茶素加樣回收率測(cè)定

        2.6.5 樣品含量測(cè)定 分別精密稱取8份花生衣粗粉各1 g,精密稱定,按2.6.2項(xiàng)下方法制備供試品溶液,依2.6.3項(xiàng)下色譜條件及系統(tǒng)適用性,精密吸取對(duì)照品溶液及供試品溶液各10μL注入液相色譜儀,記錄峰面積,計(jì)算兒茶素的含量,結(jié)果見表4。

        表4 8份花生衣中兒茶素含量測(cè)定

        3 小結(jié)

        花生衣8批樣品中水分含量最高的為(9.66±0.145 2)%,最低的為(8.18±0.134 5)%;總灰分量最高的為(3.40±0.065 4)%,最低的為(1.93±0.078 4)%。酸不溶性灰分最高的為(0.32±0.008 7)%,最低的為(0.21±0.123 0)%;水浸出物含量最高為(12.92±0.063 0)%,最低為(10.78±0.891 0)%,醇浸出物含量最高為(26.98±0.212 2)%,最低為(23.21±0.240 1)%。

        含量測(cè)定中所采用的色譜條件,能較好地分離花生衣中的各色譜峰,且基線平穩(wěn),峰型尖銳,故可用于花生衣中兒茶素含量測(cè)定的色譜條件。

        4 討論

        花生衣樣品的水分、灰分和浸出物含量測(cè)定結(jié)果有一定的差異,這與樣品的栽種、采收、加工、貯藏條件有一定的關(guān)系。根據(jù)表1結(jié)果,建議花生衣藥材的各項(xiàng)指標(biāo)范圍可控制在:水分不超過(guò)10%,總灰分不得超過(guò)4.0%,酸不溶性灰分不得超過(guò)0.3%,水溶性浸出物量不低于13.0%,醇溶性浸出物量不低于27.0%,此結(jié)論可作為制訂花生衣藥材質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的參考依據(jù)。

        薄層色譜鑒別表明8批花生衣樣品中,供試品與對(duì)照品所顯斑點(diǎn)一致,該法專屬性強(qiáng),且多次重復(fù)效果較好,故此法可作為花生衣藥材的定性鑒別標(biāo)準(zhǔn)。

        8批的花生衣藥材兒茶素含量在0.878~1.183 mg·g-1,建議花生衣藥材兒茶素含量以不低于0.8 mg·g-1為宜。實(shí)驗(yàn)首次探討了花生衣中兒茶素含量的測(cè)定方法,為合理開發(fā)利用花生衣資源提供了科學(xué)依據(jù)。

        [1] 江蘇新醫(yī)學(xué)院.中藥大辭典[M].下冊(cè).上海:上??茖W(xué)技術(shù)出版社,1975:2322.

        [2] 朱立波,戴榮興.血寧糖漿質(zhì)量控制研究[J].中成藥,2003,25(11):934-936.

        [3] 張秀堯,凌羅慶,戴榮興.花生衣的化學(xué)成分研究[J].中國(guó)中藥雜志,1990,16(6):356-368.

        [4] 孫蓉.HPLC同時(shí)測(cè)定阮氏上清丸中兒茶素和表兒茶素的含量[J].中國(guó)民族民間醫(yī)藥,2011,(24):53-55.

        [5] 曹丹,楊莉,侴桂新,等.苦楝皮藥材薄層色譜鑒別[J].中藥材,2010,33(6):887-888.

        [6] 譚生建,賀業(yè)謙,李勉珊,等.HPLC法測(cè)定七厘散中兒茶素和表兒茶素的含量[J].解放軍藥學(xué)學(xué)報(bào),2012,1(28):72-73.

        StudyonQualitySpecificationofPeanutSkin

        ZHU Li-hong,HE Wen-juan,BAI Lu,TANG Zhi-shu*

        (ShaanxiUniversityoftraditionalChinesemedicine,xianyang712046China)

        Objective:To provide scientific basis for the utilization and development of Peanut Skin by setting up the quality control specification.Methods:The extract of Peanut Skin was examined,ash was determined,and the bioactive constituents were analyzed by TLC and HPLC analysis was applied for catechin quatitative determination.Results:10 batches of peanut skin moisture,water extract,alcohol extract,total ash and acid-insoluble ash were determined;the active ingredient catechin were qualitatively identified by TLC,and quantitative dtermined by HPLC.Conclusion:The established method can be used for the quality control of Peanut Skin.

        Peanut Skin;Quality specification;Catechin;TLC;HPLC

        2013-03-12)

        *

        唐志書,Tel:(029)38183513,E-mail:tzs6565@163.com

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