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        實(shí)時(shí)熒光PCR法快速檢測耐熱霉菌費(fèi)氏新薩托菌

        2013-09-07 10:37:06鄭曉冬陳小珍
        食品與機(jī)械 2013年3期
        關(guān)鍵詞:費(fèi)氏霉菌用量

        張 慧 鄭曉冬 姜 侃 汪 新 陳小珍

        (1.浙江省質(zhì)量檢測科學(xué)研究院理化分析檢測部,浙江 杭州 310013;2.浙江大學(xué)生物系統(tǒng)工程與食品科學(xué)學(xué)院,浙江 杭州 310058)

        費(fèi)氏新薩托菌(Neosartoryafischer)是一種耐熱、耐干燥、耐酸堿的菌種,廣泛分布于土壤尤其是果園的土壤中,是果蔬汁中易污染的耐熱霉菌之一。它不僅是飲料和熱加工食品中的有害菌,易引起食品貯存期間的腐敗變質(zhì)[1-4],也是人畜共患的致病菌,可引起角膜炎、心內(nèi)膜炎和肺部曲霉病等,還可產(chǎn)生真菌毒素,嚴(yán)重威脅人們的身體健康[5-8]。目前耐熱霉菌的檢測通常采用PDA平板培養(yǎng)方法,檢測時(shí)間長[2],因此,快速、準(zhǔn)確的分子生物學(xué)檢測技術(shù)逐漸用于耐熱霉菌的檢測[9]。有研究[10,11]采用普通 PCR 技術(shù),利用包含在核糖體單位的內(nèi)部轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)上的序列作為特異性引物,實(shí)現(xiàn)費(fèi)氏新薩托菌的快速鑒別,但采用實(shí)時(shí)熒光PCR技術(shù)快速檢測費(fèi)氏新薩托菌的研究較少。

        Beta-tubulin基因序列是耐熱霉菌——費(fèi)氏新薩托菌的保守序列,本試驗(yàn)在此基礎(chǔ)上設(shè)計(jì)特異性引物和探針,優(yōu)化反應(yīng)體系的組成,建立實(shí)時(shí)熒光PCR快速檢測方法,對果蔬汁產(chǎn)品質(zhì)量有效控制和保障食品安全,具有重要意義。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        1.1.1 菌株及來源

        費(fèi)氏 新 薩托 菌 (Neosartoryafescheri)ATCC66640、ATCC66641,雪 白 絲 衣 霉 菌 (Byssochlamys nivea)ATCC22260、ATCC18742,純 黃 絲 衣 霉 (Byssochlamys fulva)ATCC24474、ATCC24008:北京中原合聚經(jīng)貿(mào)有限公司;

        宛 氏 擬 青 霉 (Paecilomyces variotii)CICC4024、CICC4025:中國工業(yè)微生物菌種保藏管理中心;

        宋內(nèi)志賀菌 (Shigella sonnei)ATCC25931、金黃色葡萄球菌 (Staphylococous aureus)ATCC6538、阪崎腸桿菌(Enterobacter sakazakii)ATCC51329、福 氏 志 賀 氏 菌(Shigella flexneri)ATCC12022、 溶 血 性 鏈 球 菌(Streptococcus hemolyticus)CMCC32210、大 腸 埃 希 氏 菌(Escherichia coli)ATCC25922:上 海 漢 尼 生 物 技 術(shù) 有 限公司。

        1.1.2 主要儀器

        高速離心機(jī):Microfuge 16型,貝克曼庫爾特商貿(mào)有限公司;

        電子天平:AL204型,梅特勒-托利多(儀器)上海有限公司;

        實(shí)時(shí)熒光PCR儀:7300型,美國應(yīng)用生物系統(tǒng)公司。

        1.1.3 主要試劑

        Biospin真菌基因組DNA提取試劑盒:杭州博日科技有限公司;

        PCR反應(yīng)緩沖液(10×)(Mg2+free)、MgCl2、dNTP(三磷酸脫氧核糖核苷)混合物、DNA聚合酶:寶生物工程(大連)有限公司;

        ROX染料:上海位點(diǎn)生物科技有限公司。

        1.2 試驗(yàn)方法

        1.2.1 菌株培養(yǎng) 費(fèi)氏新薩托菌在馬鈴薯葡萄糖培養(yǎng)基中培養(yǎng)3~6d(25℃),觀察有菌絲體或菌絲球形成,挑出,以備提取DNA使用。

        1.2.2 模板DNA提取 將1.2.1中制備的菌絲體參照Biospin真菌基因組DNA抽提試劑盒說明進(jìn)行操作處理,提取真菌DNA模板。

        1.2.3 引物設(shè)計(jì) 費(fèi)氏新薩托菌引物設(shè)計(jì)參考KACC41668beta-tubulin的部分基因序列。利用PrimerExpressTM(V3.0,美國ABI公司)軟件分析和設(shè)計(jì)引物和Taq-Man探針位點(diǎn),序列見表1。引物和探針由Invitrogen公司合成。

        表1 引物與Taqman探針序列Table 1 Specific primer and Taqman probe sequences

        1.2.4 實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)體系的優(yōu)化

        (1)實(shí) 時(shí) 熒 光 PCR 反 應(yīng) 條 件:95 ℃ (3min),95 ℃(15s)、59℃(40s)、40個(gè)循環(huán)。

        (2)實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)體系按表2初始體系組成開始優(yōu)化,依次優(yōu)化ROX染料、Mg2+、DNA聚合酶、dNTP混合物的用量。

        表2 實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)體系組成Table 2 Real-time PCR reaction system

        1.2.5 特異性試驗(yàn) 分別應(yīng)用1.1.1中顯示的費(fèi)氏新薩托菌、雪白絲衣霉菌、純黃絲衣霉菌、宛氏擬青霉菌和多株非耐熱霉菌,提取DNA后,按試驗(yàn)優(yōu)化的方法進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng),驗(yàn)證費(fèi)氏新薩托菌檢測的特異性。

        1.2.6 靈敏度試驗(yàn) 以費(fèi)氏新薩托菌標(biāo)準(zhǔn)菌株ATCC66640為參考菌株,提取 DNA,提取液(57ng/μL)進(jìn)行10倍梯度稀釋,使 DNA 濃度約為101,100,10-1,10-2,10-3,10-4,10-5,10-6,10-7ng/μL,應(yīng)用以上 DNA 按優(yōu)化的實(shí)時(shí)熒光PCR方法檢測,觀察結(jié)果,考察靈敏度。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 PCR體系中探針的適用性和ROX染料用量選擇

        采用7300型PCR儀進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR試驗(yàn)時(shí),通常在反應(yīng)體系中添加ROX熒光染料,用以校正加樣誤差或者是孔與孔之間的誤差等,提供一個(gè)穩(wěn)定的基線。

        圖1顯示出不同ROX用量對費(fèi)氏新薩托菌的PCR擴(kuò)增結(jié)果的影響不同。0.8~2.0μL ROX的PCR體系均呈對數(shù)曲線擴(kuò)增,0.8μL用量的曲線1不夠平滑,綜合考慮,選取1.2μL ROX用量作為以后試驗(yàn)中費(fèi)氏新薩托菌實(shí)時(shí)熒光PCR擴(kuò)增用量。

        2.2 PCR體系中 Mg2+濃度的選擇

        Mg2+是影響Taq酶活性的關(guān)鍵因素,Mg2+濃度過高,會增加非特異性擴(kuò)增;Mg2+濃度過低,影響Taq酶發(fā)揮最佳活性。因此,PCR反應(yīng)體系中Mg2+濃度的選擇至關(guān)重要。

        圖2顯示了Mg2+濃度對費(fèi)氏新薩托菌實(shí)時(shí)熒光PCR的影響,當(dāng) Mg2+的用量為0.5,1.0μL時(shí),均未出現(xiàn)對數(shù)擴(kuò)增的曲線,說明PCR體系中Mg2+濃度過低,影響了PCR擴(kuò)增的正常進(jìn)行。由圖2可知,費(fèi)氏新薩托菌適宜的Mg2+用量在1.5~3.5μL。綜合考慮,2.5μL Mg2+用量作為費(fèi)氏新薩托菌以后PCR試驗(yàn)的用量。

        圖1 不同ROX用量對實(shí)時(shí)熒光PCR擴(kuò)增影響Figure 1 Effect of ROX concentration on real-time PCR amplification

        圖2 Mg2+濃度對實(shí)時(shí)熒光PCR擴(kuò)增影響Figure 2 Effect of Mg2+ concentration on real-time PCR amplification

        2.3 PCR體系中DNA聚合酶用量的選擇

        DNA聚合酶是以DNA為復(fù)制模板,將DNA由5'端點(diǎn)開始復(fù)制到3'端的酶。DNA聚合酶是DNA片段擴(kuò)增的關(guān)鍵物質(zhì)。圖3顯示了不同的DNA聚合酶用量對費(fèi)氏新薩托菌實(shí)時(shí)熒光PCR的影響,當(dāng)酶的用量在0.2~0.6μL時(shí),獲得了良好的對數(shù)擴(kuò)增曲線,并且不同酶用量的熒光強(qiáng)度差別不大。因此,認(rèn)為PCR反應(yīng)體系中0.2μL的用量即可滿足實(shí)時(shí)熒光PCR擴(kuò)增需求。

        2.4 PCR體系中dNTP用量的選擇

        dNTP又叫三磷酸脫氧核糖核苷,dNTP混合液是三磷酸鳥嘌呤脫氧核苷酸、三磷酸腺嘌呤脫氧核苷酸、三磷酸胸腺嘧啶脫氧核苷酸和三磷酸胞嘧啶脫氧核苷酸的摩爾比為1∶1∶1∶1的混合物,是構(gòu)成DNA鏈的基本組成物質(zhì)。

        dNTP過少,影響PCR擴(kuò)增效率;過量,dNTP可與Mg2+結(jié)合,從而降低體系中Mg2+濃度,造成Taq聚合酶活性下降。圖4中費(fèi)氏新薩托菌在dNTP用量為2.0,3.0,4.0μL時(shí)的PCR擴(kuò)增效率較好,熒光信號的強(qiáng)度較高。為既滿足試驗(yàn)需求又節(jié)約成本,以2.0μL為后續(xù)PCR試驗(yàn)用量。

        圖3 DNA聚合酶用量對實(shí)時(shí)熒光PCR擴(kuò)增影響Figure 3 Effect of DNA polymerase concentration on real-time PCR amplification

        圖4 dNTP用量對實(shí)時(shí)熒光PCR擴(kuò)增影響Figure 4 Effect of dNTP concentration on real-time PCR amplification

        綜上所述,經(jīng)過優(yōu)化后費(fèi)氏新薩托菌的實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)體系組成見表3。

        2.5 特異性

        實(shí)時(shí)熒光PCR檢測費(fèi)氏新薩托菌特異性的擴(kuò)增結(jié)果見圖5。圖5顯示該菌的引物和探針只對費(fèi)氏新薩托菌(ATCC66640、ATCC66641)產(chǎn)生擴(kuò)增,而對其他非費(fèi)氏新薩托菌均無交叉反應(yīng),特異性良好。

        2.6 靈敏度

        對費(fèi)氏新薩托菌的DNA提取物進(jìn)行10倍梯度稀釋后,進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng),檢測結(jié)果見圖6。費(fèi)氏新薩托菌最低8.6×10-4ng/反應(yīng)體系的DNA能夠被擴(kuò)增;其他更低的稀釋度沒有信號增長。

        3 討論

        費(fèi)氏新薩托菌是人畜共患的致病菌,易污染果蔬汁而引起產(chǎn)品變質(zhì),脹罐胖聽。本試驗(yàn)根據(jù)Genbank公布的betatubulin基因序列,設(shè)計(jì)了特異性引物和Taqman探針,建立了費(fèi)氏新薩托菌的實(shí)時(shí)熒光PCR檢測方法。與前人所建的費(fèi)氏新薩托菌PCR檢測方法[10,11]相比,該方法利用熒光探針通過實(shí)時(shí)熒光PCR實(shí)時(shí)監(jiān)測目的基因的擴(kuò)增,整個(gè)檢測過程為完全閉管狀態(tài),避免了污染;同時(shí),無需電泳等PCR后處理過程,快速、準(zhǔn)確。實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)體系中ROX染料、Mg2+濃度、DNA聚合酶和dNTP用量等,對PCR擴(kuò)增反應(yīng)的正常進(jìn)行均有一定的影響,通過各梯度試驗(yàn)確定,25μL的反應(yīng)體系中,1.2μL ROX 染料(10μΜ)、2.5μL MgCl2(25mM)、0.2μL DNA 聚合酶(5U/μL)、2.0μL dNTP混合物(2.5mM)、2.5μL 10×PCR反應(yīng)緩沖液為適用于費(fèi)氏新薩托菌擴(kuò)增的最佳反應(yīng)體系,基因組DNA的靈敏度為8.6×10-4ng/反應(yīng)體系,方法特異性較好。該方法的建立為耐熱霉菌費(fèi)氏新薩托菌的快速檢測提供了新思路。

        表3 優(yōu)化后的費(fèi)氏新薩托菌實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)體系Table 3 The optimal real-time PCR system

        圖5 費(fèi)氏新薩托菌的特異性Figure 5 Specificity of real-time PCR for Neosartoryafescheri

        圖6 費(fèi)氏新薩托菌實(shí)時(shí)熒光PCR檢測靈敏度Figure 6 Sensitivity of real-time PCR for Neosartoryafescheri

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