朱 華,馮 銘,盧 珊,李 秦,劉 穎,安沂華,趙春華,王任直,秦 川*
(中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院1.比較醫(yī)學(xué)中心衛(wèi)生部比較醫(yī)學(xué)重點實驗室;2.實驗動物研究所Motac合作實驗室,北京100021;3.北京協(xié)和醫(yī)院,北京100730;4.基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所,北京100005;5.北京神經(jīng)外科研究所,北京100039)
缺血性腦卒中在腦血管病的發(fā)病率居首位[1],是由各種原因誘發(fā)腦血管栓塞引起的腦組織缺血、缺氧,進一步誘發(fā)腦神經(jīng)細胞變性、壞死,最終導(dǎo)致神經(jīng)功能障礙和功能喪失的一類疾病。目前針對缺血性腦血管病的治療主要是手術(shù)和溶栓,效果比較明顯。但由缺血誘發(fā)的神經(jīng)細胞變性壞死而導(dǎo)致的神經(jīng)功能障礙卻沒有很好的治療方法。傳統(tǒng)認為神經(jīng)細胞難以再生,干細胞的出現(xiàn)改變了人們的觀點。骨髓間充質(zhì)干細胞(bone marrow-derived mesenchymal stem cells,BMSCs)具有多分化潛能,特性穩(wěn)定,獲取方便,易于分離、培養(yǎng)及鑒定,在體外培養(yǎng)多代后仍能保持多向分化潛能。已有大量研究證實BMSCs可明顯改善嚙齒類腦缺血動物模型的臨床癥狀[2-4],但未見以人骨髓間充質(zhì)干細胞(human bone marrow-derived mesenchymal stem cells,hBMSCs)治療非人靈長類腦缺血模型的報道。本研究在建立穩(wěn)定食蟹猴腦缺血模型的基礎(chǔ)上,對腦內(nèi)移植hBMSCs的效果進行系統(tǒng)觀察和評價,為臨床應(yīng)用提供參考。
成年雄性食蟹猴18只,軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院實驗動物中心,動物合格證號【SCXK-(軍)2007-005】,年齡4~6歲,體質(zhì)量4.2~4.5 kg。
使用光化學(xué)法建立腦缺血模型,具體方法見參考文獻[5]。
hBMSCs由中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所趙春華教授提供。
1.3.1 動物分組:18只動物分為模型組(CG),干細胞移植高劑量組(5×106,HDG)和低劑量組(1×106,LDG),每組6只。移植的時間窗為造模后4周。
1.3.2 細胞注射:細胞為250 μL無色懸液,5個移植途徑,每點移植量為50 μL,移植速度10 μL/min。對照組等體積0.9%氯化鈉注射液。
1.4.1 行為學(xué):神經(jīng)功能評分:使用文獻[6]中的方法在造模后1及3 d和1、2、3及4周及干細胞注射后1 及3 d和1、2、3、4、5、6 及 8 周對動物的神經(jīng)功能進行評分。精準上肢運動測試:按照參考文獻[7]中的方法在造模后1及3 d和1、2、3及4周及干細胞注射后1 及3 d和1、2、3、4、5、6 及8 周采集實驗數(shù)據(jù)。
1.4.2 影像學(xué):1)頭顱MRI掃描:造模后24 h,以后每2周1次進行MRI檢查,觀察干細胞植入后動物腦部缺血灶形態(tài)和大小變化;儀器型號:Philips Intera Achiva 3.0T磁共振儀。2)18F-FDG-PET頭顱掃描:造模后24 h,以后每2周1次進行PET掃描。觀察梗死周圍能量代謝情況。選擇梗死最明顯的層面為感興趣區(qū),測定缺損區(qū)域的最低標準攝取值(Standardized Uptake Value,SUV),計算 SUV%(SUV%= 同側(cè)SUVX100%/對側(cè)相應(yīng)區(qū)域 SUV)。儀器:Siemens ECAT EXACT HR+型高分辨PET儀。所用18FFDG為北京協(xié)和醫(yī)院PET中心自行生產(chǎn)。
1.4.3 組織病理學(xué)檢查:1)組織處理:干細胞移植后2和12周每組分別處死動物3只動物,參照文獻[10]的方法取材。標本經(jīng)10%中性甲醛固定、石蠟包埋切片、蘇木素-伊紅(H.E)染色。2)梗死面積的測定:用AperioGL全自動數(shù)字病理切片掃描系統(tǒng)并計算各個梗死灶面的長度和寬度,確定梗死灶的最大面積。
統(tǒng)計分析使用SPSS13.0軟件,行為學(xué)評價采用單因素方差分析(one-way ANOVA)LSD兩兩比較,梗死面積的統(tǒng)計用配對t檢驗。
各組動物在造模后及干細胞移植后均無死亡。
2.1.1 神經(jīng)功能評分:神經(jīng)功能評分在干細胞植入2周后顯著降低(P<0.05),這種差異一直持續(xù)到動物全部被安樂(圖1)。
2.1.2 精準上肢運動測試:干細胞治療后1 d,動物的行為學(xué)表現(xiàn)已出現(xiàn)好轉(zhuǎn),但與對照組比較無顯著性差異。從治療后3 d開始到治療后第8周,劑量組動物抓取水果塊的時間顯著減少 (P<0.05)(圖2)。
圖2 干細胞移植前后PET,MRI檢查結(jié)果Fig 2 The PET and MRI result before and after hBMSC transplantation of the high-dose group,the low-dose group,and the control group
術(shù)后24 h手術(shù)區(qū)域可見DW1高信號,主要累及殼核外側(cè)和右側(cè)大腦半球顳頂葉皮質(zhì),中線向左側(cè)移位,左側(cè)側(cè)腦室明顯受壓變形。移植后2周,高劑量組缺血損傷部位的修復(fù)速度高于低劑量組和對照組,移植后4、6、8和10周高、低劑量組缺血灶的修復(fù)速度基本相等,均高于對照組(圖2A-E)。
造模后缺血灶周圍的細胞代謝顯著降低。干細胞移植后2周缺血灶周圍皮質(zhì)的SUV逐漸升高(圖2F-U)。移植后4、6周高、低劑量組和對照組皮質(zhì)及殼核外側(cè)的SUV%顯著升高(P<0.05)。8周時高劑量組皮質(zhì)的SUV%顯著高于對照組(P<0.05)。其余時間點各組ROI的SUV%無統(tǒng)計學(xué)差異(表1)。
2.4.1 梗死面積:干細胞移植后2、12周,低劑量組的梗死面積明顯小于對照組間(P<0.05)(表2)。2.4.2 鏡下觀察結(jié)果:1)注射后2周模型組與高低劑量鏡下均可見腦膜增厚,腦膜血管擴張充血,腦皮質(zhì)灶性壞死,泡沫細胞增生,胞漿內(nèi)含鐵血黃素沉積,灶性炎細胞浸潤。壞死區(qū)周圍血管旁炎細胞袖套狀浸潤。高、低劑量組腦組織空泡變性程度較模型組輕,可見較多新生血管。2)注射后12周模型組、高、低劑量組均可見腦皮質(zhì)局部缺損及瘢痕形成,泡沫細胞增生,周圍腦組織空泡變性(圖3)。
表1 移植前后感興趣區(qū)域SUV%值Table 1 SUV%in selected ROIs
表1 (續(xù))
表2 腦梗死面積Table 2 Iesion volume of brain
圖3 干細胞移植前后病理學(xué)檢查結(jié)果Fig 3 The pathological result before and after hBMSC transplantation of the high-dose group,the low-dose group,and the control group
盡管很多學(xué)者已經(jīng)在小鼠、大鼠等動物身上證明非人類BMSCs直接腦內(nèi)注射安全有效,并能在腦內(nèi)廣泛遷移和向神經(jīng)細胞方向分化[8-9]。但有關(guān)hBMSCs直接注入非人靈長類腦內(nèi)效果的報導(dǎo)還很少。由于缺血性腦卒中發(fā)生的類型、病變的部位以及范圍各不相同,使干細胞移植選擇病例變得困難。有實驗選擇局部缺血損害病例,相對于彌漫性腦缺血損害,可能更容易獲得良性分析結(jié)果[10]。并且目前尚無研究資料證實,干細胞移植治療對于腦白質(zhì)損害和皮質(zhì)損害療效有何不同。另外,關(guān)于BMSCs參與腦損傷修復(fù)的報道多集中于急性期[11-12],分析其可能的原因是急性期的微環(huán)境有利于BMSCs向神經(jīng)細胞的分化。因此,本實驗選擇使用光化學(xué)法建立穩(wěn)定的局灶性腦缺血模型,并在此基礎(chǔ)上用腦立體定位法在損傷局部周圍直接注入骨髓間充質(zhì)干細胞,并觀察到治療12周,通過行為學(xué)、影響學(xué)和組織病理學(xué)對移植效果進行了評價。組織病理學(xué)觀察到了梗死灶的明顯減小,移植組較對照組梗死灶周圍新生血管增生明顯。移植后2周MRI檢查可見模型組梗死灶修復(fù)速度慢于高劑量組。PET結(jié)果顯示第4、6和8周高劑量組的代謝增高速度明顯大于對照組。行為學(xué)觀察發(fā)現(xiàn)對照組動物術(shù)后肌肉麻痹,不能站立,上肢的精準運動能力喪失,hBMSCs移植的動物到12周時感覺和運動神經(jīng)功能的缺失基本恢復(fù)。
本研究從影像學(xué)、行為學(xué)、組織病理學(xué)等方面證實hBMSCs移植到成年食蟹猴腦內(nèi)后動物的神經(jīng)功能出現(xiàn)了改善。為進一步研究干細胞這一治療神經(jīng)系統(tǒng)疾病新手段的臨床應(yīng)用提供了參考,移植模式和評價方法對臨床有一定的指導(dǎo)義。
[1]Broderick JP,Brott T,Tomsick T,et al.The risk of subarachnoid and intracerebral hemorrhages in blacks as compared with whites[J].N Eng JMed,1992,326:733 -736.
[2]Zhang H,Huang Z,Xu H et al.Differentiation and neurological benefit of the mesenchymal stem cells transplanted into the rat brain following intracerebral hemorrhage[J].Neurol Res,2006,28:104 -112.
[3]Nan Z,Grande A,Sanberg CD,et al.Infusion of human umbilical cord blood ameliorates neurologic deficits in rats with hemorrhagic brain injury[J].Ann N Y Acad Sci,2005,1049:84 -96.
[4]Chen J,Li Y,Zhang R,et al.Combination therapy of stroke in rats with a nitric oxide donor and human bone marrow stromal cell enhances angiodenesis and neurogenesis[J].Brain Res,2004,1005:21 -28.
[5]朱華,李秦,馮銘,等.光化學(xué)法制作食蟹猴局部腦缺血模型[J].中國比較醫(yī)學(xué)雜志,2008,18:32 -34.
[6]朱華,李秦,劉穎,等.一種改進的非人靈長類神經(jīng)功能缺損評價方法[J].中國比較醫(yī)學(xué)雜志,2011,21:59-62.
[7]朱華,李秦,劉穎,等.上肢精準測試系統(tǒng)在食蟹猴腦缺血研究中的應(yīng)用[J].中國比較醫(yī)學(xué)雜志,2011,21:53-56.
[8]Iryna AI,Kate B,Jason D,et al.Preclinical evaluation of adult stem cell engraftment and toxicity in the CNS of rhesus macaques[J].Mol therapy,2006,13:1173 - 1184.
[9] Oswald J,Boxberger S,Jorgensen B,et al.Mesenchymal stem cells can be differentiated into endothelial cells in vitro[J].Stem Cells,2004,22:377 -384.
[10]Bruder SP,Jaiswal N,Haynesworth SE.Growth kinetics,self-renewal,and theosteogenic potenitial of purified humanmesenchymal stem cells during extensive subcultivation and following cryopreservation[J] J cell Biochem,1997,64:278 -294.
[11]Aronowski J,Hall CE.New horizons for primary intracerebral hemorrhage treatment:Experience from preclinical studies[J].Neurol Res,2005,27:268 -279.
[12]Young RG,Butler DL,Weber W,et al.Use of mesenchymal stem cellsin a collagen matrix for Achilles tendon repair[J].J Orthop Res,1998,16:406 -413.