顧貴洲,張 強(qiáng),劉春爽,胡恒宇,趙東風(fēng)
(1.中國(guó)石油大學(xué)(華東)化學(xué)工程學(xué)院,山東 青島266555;2.遼寧石油化工大學(xué)環(huán)境與生物工程學(xué)院,遼寧 撫順113001)
經(jīng)歷二次和三次采油之后,許多老油氣田面臨廢棄,尤其是一些稠油甚至超稠油油田,無(wú)論技術(shù)如何更新,仍有50%以上的原油無(wú)法回收,而油田一旦廢棄,這些儲(chǔ)量將永遠(yuǎn)失去[1]。殘余低品位稠油微生物氣化技術(shù)是近幾年來國(guó)際上正在探索的延長(zhǎng)油藏開發(fā)壽命的新技術(shù),它是利用產(chǎn)甲烷微生物菌群在厭氧環(huán)境下將殘余稠油轉(zhuǎn)化為天然氣,然后以天然氣形式開采或作為戰(zhàn)略性資源就地儲(chǔ)備[2]。作為國(guó)內(nèi)外研究熱點(diǎn),石油烴生物氣化的可行性已經(jīng)在實(shí)驗(yàn)室條件下得到證實(shí)[3-5]。研究表明[6-9],原 油 厭 氧 降 解 產(chǎn) 甲 烷 過 程 需 要由不同功能菌群共同參與、協(xié)同作用才能完成,這種協(xié)同作用主要分為2個(gè)階段:(1)降解階段,即石油烴降解為小分子有機(jī)物;(2)產(chǎn)氣階段,即小分子物質(zhì)最終轉(zhuǎn)化成甲烷等氣體。雖然國(guó)內(nèi)外對(duì)石油烴厭氧降解產(chǎn)甲烷研究較多[10-12],但原油氣化開采一般針對(duì)經(jīng)歷過三采后的老油田,油品更稠、膠質(zhì)與瀝青質(zhì)含量更高,開采難度更大,因而目前國(guó)際上以稠油為氣化對(duì)象的還比較少。因此,富集獲得高效稠油降解產(chǎn)甲烷混合菌群是殘余低品位稠油微生物氣化技術(shù)的關(guān)鍵。
作者從勝利油田某區(qū)塊油井采出水中篩選獲得一組高效稠油降解產(chǎn)甲烷混合菌群,考察混合菌群的組成,并探討其產(chǎn)甲烷特性,以期為殘余低品位稠油微生物氣化奠定基礎(chǔ)。
實(shí)驗(yàn)樣品來源于勝利油田某區(qū)塊油井采出水,該區(qū)塊地質(zhì)信息見表1。采出液通過采樣井的井口閥門收集到10L采樣桶中,待采樣桶完全被油水混合物充滿后,密封,快速送回實(shí)驗(yàn)室4℃下保存。
通用突變檢測(cè)系統(tǒng),美國(guó)DCode;凝膠成像系統(tǒng),美國(guó)伯樂;Allegra 25R型高速冷凍離心機(jī),美國(guó)Beckman;GC-3800型氣相色譜儀,美國(guó) Varian;OIL-510型全自動(dòng)紅外分光測(cè)油儀,北京華夏科創(chuàng)儀器技術(shù)有限公司。
無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)基(g):K2HPO45.0,KH2PO45.0,NH4Cl 5.0,NaCl 10,MgCl22.0,CaCl20.1,H2O 1000mL,pH值7.0~7.5。
以油田采出水為接種物富集培養(yǎng),接種量按20%(體積分?jǐn)?shù))接種到厭氧瓶中,加入2mL原油,每個(gè)樣品設(shè)置3個(gè)平行實(shí)驗(yàn),于55℃生化培養(yǎng)箱暗室培養(yǎng)380d。
表1采樣區(qū)塊地質(zhì)信息Tab.1 Geological information of sampling block
運(yùn)用亨蓋特厭氧滾管技術(shù)[13,14]對(duì)混合菌群進(jìn)行單菌株分離。具體方法為:在無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)基中補(bǔ)加2%瓊脂粉,分裝于厭氧試管(4.5mL培養(yǎng)基/管),滅菌。置厭氧試管于沸水浴至瓊脂完全熔化。轉(zhuǎn)到55℃的水浴鍋中,補(bǔ)加Na2S·9H2O至終濃度為0.03%(質(zhì)量濃度);補(bǔ)加 NaHCO3至終濃度為0.2%(質(zhì)量濃度)。滾管,將滾好的所有厭氧試管靜置2h以上,使培養(yǎng)基表面的液體被充分吸收。接種后于55℃暗箱培養(yǎng)。
使用Tiangen細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒(天根生化科技有限公司)提取混合菌群總DNA。以細(xì)菌16SrDNA V3 區(qū) 的 引 物 341F (5′-CGCCCGCCGCGCGCGGCGGGCGGGGCGGGGGCACGGGGGGCCTACGGGAGGCAGCAG-3′)和 534R (5′-ATTACCGCGGCTGCTGG-3′)對(duì) 提 取 的 DNA 進(jìn) 行PCR擴(kuò)增,PCR反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性5min;94℃變性1min,55℃退火1min,72℃延伸1min,30個(gè)循環(huán);最后72℃延伸10min。以Biorad Dcode系統(tǒng)對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行DGGE分析,聚丙烯酰胺膠質(zhì)量濃度為8%,變性劑濃度梯度為40%~60%。電泳完畢后,將膠置于含1mg·L-1EB的1×TAE緩沖溶液中染色,將染色后的凝膠用凝膠成像系統(tǒng)拍攝圖像。將待測(cè)序條帶切下,按前述PCR體系與條件進(jìn)行擴(kuò)增,送上海生工生物工程公司純化測(cè)序,測(cè)序結(jié)果輸入GenBank進(jìn)行比對(duì)分析。
用氣相色譜儀測(cè)定富集厭氧瓶頂空氣體中甲烷含量。進(jìn)樣體積為0.5mL,采用面積歸一法定量。色譜條件如下:Al2O3色譜柱(50m×0.53mm×20μm);柱溫從40℃開始,2min升至100℃,再以10℃·min-1的速率升至170℃,保持25min;進(jìn)樣口溫度為100℃;FID檢測(cè)器溫度為150℃,載氣為高純氦氣。
用全自動(dòng)紅外分光測(cè)油儀測(cè)定含油量。將《水質(zhì)、石油類和動(dòng)植物油的測(cè)定-紅外光度法》(GB/T 16488-1996)稍作改進(jìn)。培養(yǎng)基中的原油經(jīng)混合菌降解后變?yōu)槲⑿⌒躞w,萃取液通過鋪有無(wú)水Na2SO4的玻璃砂芯漏斗脫水時(shí)極易堵塞,因此采用循環(huán)水式真空泵將萃取液抽入抽濾瓶中。同時(shí),為了保證脫水效果,將無(wú)水Na2SO4的厚度由標(biāo)準(zhǔn)中的10mm增至15 mm。
勝利油田某區(qū)塊油井采出水在55℃下經(jīng)過380d富集培養(yǎng),獲得一組稠油降解產(chǎn)甲烷混合菌群,命名為SL-7。通過亨蓋特厭氧滾管技術(shù)從該菌群中分離獲得2株可分離培養(yǎng)單菌,分別記為SL-7-1、SL-7-2。分別提取混合菌群SL-7與2株單菌的DNA同時(shí)進(jìn)行DGGE分析,比較單菌在混合菌群中的位置,結(jié)果見圖1。
圖1 混合菌群SL-7與單菌株的DGGE圖譜Fig.1 The DGGE analysis of the microbial consortium SL-7and two single strains
由圖1可知,混合菌群SL-7由6個(gè)主要的單菌株組成,并且2株降解單菌條帶均能與SL-7中的條帶相對(duì)應(yīng),SL-7-1對(duì)應(yīng)Band 1,SL-7-2對(duì)應(yīng) Band 2。對(duì)主要條帶進(jìn)行測(cè)序分析,確定了這些菌株的可能分類,結(jié)果見表2。
表2混合菌群SL-7DGGE條帶序列分析Tab.2 Sequence analysis of the microbial consortium SL-7from dominant DGGE bands
PCR-DGGE技術(shù)可以直觀地反映微生物的群落結(jié)構(gòu)[15],檢測(cè)到不易分離培養(yǎng)的優(yōu)勢(shì)菌株,揭示混合菌群的結(jié)構(gòu)組成。由表2可知,混合菌群SL-7包含4株不可培養(yǎng)細(xì)菌(Band 3、Band 4、Band 5、Band 6)和2株已分離獲得的降解單菌(Band 1、Band 2)。單菌株SL-7-1與來自Firmiucutes(厚壁菌門)的Clostridium sp.XB90同源性為98%。研究表明,該類細(xì)菌能夠厭氧降解烴類化合物或者利用烴降解的中間產(chǎn)物產(chǎn)生甲烷菌可以利用的前體物質(zhì)[16]。單菌株SL-7-2與來自β-Proteobacteria(β-變性菌門)的 Achromobacter sp.BPZ11同源性為97%。
SL-7對(duì)稠油的降解可能是微生物降解和其中多株單菌共同代謝、共同作用的結(jié)果。油田采出水中存在著經(jīng)自然選擇優(yōu)化過的混合菌群,其中不同菌株的功能和作用通過長(zhǎng)期的演化穩(wěn)定下來,在混合菌群SL-7中形成了一種較為穩(wěn)定的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu),一些不可分離培養(yǎng)的菌株(如Band 3、Band 4、Band 5、Band 6所代表的菌株)可能對(duì)稠油的降解起著重要的作用,但在目前培養(yǎng)條件下無(wú)法分離得到。因此,直接利用混合菌群來降解稠油,可以避免這些無(wú)法分離培養(yǎng)的關(guān)鍵菌株的丟失[17]。混合菌群SL-7將稠油中難以直接利用的大分子烴類降解為小分子烴類物質(zhì),完成稠油厭氧降解產(chǎn)甲烷的第一個(gè)階段,為下一步產(chǎn)氣階段做準(zhǔn)備。
采用氣相色譜法測(cè)定富集厭氧瓶頂空氣體,以面積歸一法定量,結(jié)果如圖2所示。
由圖2可知,55℃下,混合菌群SL-7在380d的培養(yǎng)過程產(chǎn)生大量的甲烷氣體。培養(yǎng)30d時(shí)就有少量的甲烷氣體產(chǎn)生,隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng),甲烷產(chǎn)生量逐漸增加,培養(yǎng)270d時(shí)甲烷產(chǎn)生量達(dá)到最大值,為1110μmol,之后甲烷產(chǎn)生量保持相對(duì)穩(wěn)定?;旌暇篠L-7的產(chǎn)甲烷規(guī)律與微生物的生長(zhǎng)周期相關(guān),符合其生長(zhǎng)代謝規(guī)律。
圖2 混合菌群SL-7的產(chǎn)甲烷量Fig.2 Methane production of the microbial consortium SL-7
混合菌群SL-7培養(yǎng)270d所產(chǎn)混合氣的氣相色譜見圖3。
圖3 混合菌群SL-7培養(yǎng)270d所產(chǎn)混合氣Fig.3 Mixed gas produced by microbial consortium SL-7cultured for 270d
由圖3可知,混合菌群SL-7在富集培養(yǎng)270d后生成的有機(jī)氣體中,甲烷含量最高,占95.2%;檢測(cè)到的其它氣體有異丁烷、正戊烷、2,2-二甲基丁烷、2-甲基戊烷等,共占4.8%;此時(shí)混合菌群SL-7對(duì)稠油的降解率達(dá)到30.6%。
(1)勝利油田某區(qū)塊油井采出水在55℃下經(jīng)過380d富集培養(yǎng)獲得一組稠油降解產(chǎn)甲烷混合菌群SL-7,經(jīng)過DGGE分析發(fā)現(xiàn),該菌群由6株主要的單菌組成,其中2株單菌可分離培養(yǎng),分別來自Firmiucutes(厚壁菌門)和β-Proteobacteria(β-變性菌門),另外4株單菌為不可分離培養(yǎng)的菌株。
(2)混合菌群SL-7經(jīng)過270d培養(yǎng),甲烷產(chǎn)生量達(dá)到最大值,為1110μmol;所產(chǎn)有機(jī)氣體中甲烷含量最高,占95.2%,其它氣體(異丁烷、正戊烷、2,2-二甲基丁烷、2-甲基戊烷等)占4.8%;此時(shí)混合菌群SL-7對(duì)稠油的降解率達(dá)到30.6%。
[1]孫煥泉.強(qiáng)基固本 開拓創(chuàng)新 確保油氣硬穩(wěn)定 再創(chuàng)開發(fā)新水平[J].油氣地質(zhì)與采收率,2007,4(2):1-6.
[2]汪衛(wèi)東,王靜,耿雪麗,等.儲(chǔ)層殘余油生物氣化技術(shù)現(xiàn)狀與展望[J].石油地質(zhì)與工程,2012,26(1):78-81.
[3]Zengler K,Richnow H H,Rossello M R,et al.Methane formation from long-chain alkanes by anaerobic microorganisms[J].Nature,1999,401(6750):266-269.
[4]Anderson R T,Lovley D R.Hexadecane decay by methanogenesis[J].Nature,2000,404(13):722-723.
[5]Jones D M,Head I M,Gray N D,et al.Crude-oil biodegradation via methanogenesis in subsurface petroleum reservoirs[J].Nature,2008,451(7175):176-180.
[6]Li H,Yang S Z,Mu B Z,et al.Molecular analysis of bacterial community structure in a continental high-temperature and waterflooded petroleum reservoir[J].FEMS Microbiology Letters,2006,257(1):92-98.
[7]Milkov A V.Secondary microbial origin of gas in giant cenomanian pools of western siberia[C].Abstract for AAPG Annual Convention and Exhibition,Denver,Colorado,2009:7-10.
[8]包木太,牟伯中,王修林.采油微生物代謝產(chǎn)物分析[J].油田化學(xué),2002,19(2):187-191.
[9]陳碩,李輝,楊世忠,等.PCR-DGGE用于檢測(cè)油田產(chǎn)出液中烴降解菌的多樣性[J].微生物學(xué)雜志,2010,30(2):1-6.
[10]Hendrickx B,Dejonghe W,F(xiàn)aber F,et al.PCR-DGGE Method to assess the diversity of BTEX mono-oxygenase genes at contaminated sites[J].FEMS Microbiology Ecology,2006,55(2):262-273.
[11]Hallmann C,Schwark L,Grice K.Community dynamics of anaerobic bacteria in deep petroleum reservoirs[J].Nature Geoscience,2008,1(9):588-591.
[12]Pham V D,Hnatow L L,Zhang S,et al.Characterizing microbial diversity in production water from an Alaskan mesothermic petroleum reservoir with two independent molecular methods[J].Environmental Microbiology,2009,11(1):176-187.
[13]Balch W E,Wolfe R S.New approach to the cultivation of methanogenic bacteria:2-Mercaptoethanesulfonic acid(HS-CoM)-dependent growth of Methanobacterium ruminantiumin a pressureized atmosphere[J].Applied and Environmental Microbiology,1976,32(6):781-791.
[14]李平蘭,張?bào)煤嗌w特厭氧滾管技術(shù)檢測(cè)雙歧桿菌制品中的活菌數(shù)[J].食品科學(xué),1999,20(2):68-69.
[15]Muyzer G.DGGE/TGGE A method for identifying genes from natural ecosystems[J].Current Opinion in Microbiology,1999,2(3):317-322.
[16]Kunapuli U,Lueders T,Meekenstoek R U.The use of stable isotope probing to identify key iron-reducing microorganisms involved in anaerobic benzene degradation[J].The ISME Journal,2007,1(7):643-653.
[17]李政,趙朝成,張?jiān)撇?,等?6種EPA-PAHs復(fù)合污染土壤的菌群修復(fù)[J].中國(guó)石油大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2012,36(1):175-181.