李 杰,李前瑞,田婷婷,許君艷,姚運亮,陳德坤
(西北農(nóng)林科技大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院,陜西楊凌712100)
羊口瘡(又稱羊傳染性膿皰)存在于大部分養(yǎng)羊國家[1]。該病多發(fā)于4月齡~6月齡羔羊,發(fā)病羔羊因口唇潰爛而采食困難,嚴重影響羔羊生長發(fā)育,甚至引起繼發(fā)性感染,病死率可達到20%~50%[1-2]。隨著近年來我國養(yǎng)羊數(shù)量的迅速增加,羊口瘡疫情越來越多,給養(yǎng)羊戶造成了嚴重的經(jīng)濟損失。環(huán)境中羊口瘡病毒或者帶毒成年羊均是本病發(fā)生的傳染源,因而準確快速的羊口瘡病毒檢測技術(shù)對羊口瘡疫情監(jiān)測至關(guān)重要。目前常用的羊口瘡血清學(xué)檢測方法包括ELISA、瓊脂雙擴散試驗、免疫熒光技術(shù)等[3-4],其中ELISA方法具有操作簡便、敏感性和特異性強等優(yōu)點。但已有的羊口瘡ELISA檢測方法中均使用完整的病毒粒子做為包被抗原[5],存在包被抗原制備繁瑣困難,以及感染操作人員和污染環(huán)境等風(fēng)險,因而有必要對其進行改良。
羊口瘡病毒基因組中存在B2L和VIR兩種主要保守性基因。B2L基因是結(jié)構(gòu)基因,其編碼的蛋白是羊口瘡病毒的保護性抗原之一[6-7]。VIR基因即干擾素抑制基因,可抑制干擾素的抗病毒活性[8-9]。不同分離株VIR基因編碼的氨基酸序列相似性為92%~94%[10],B2L基因編碼氨基酸序列的相似性為97.1%~98.7%[11],這兩種蛋白都可刺激機體產(chǎn)生高效價的抗體[9,12]。據(jù)此,可以選擇這兩種蛋白作為包被抗原[13],用以測定機體羊口瘡病毒抗體的ELISA效價。
本研究以羊口瘡病毒細胞毒DNA基因組為模板,擴增B2L和VIR基因,通過原核表達系統(tǒng)獲得其原核表達蛋白,對重組蛋白的抗原性進行鑒定,所獲得結(jié)果為改良羊口瘡ELISA診斷方法提供有價值的參考依據(jù)。
1.1.1 病毒、載體和宿主細胞 原核克隆載體pGEM-Teasy購自Promega公司;羊口瘡細胞毒、表達載體PET-32a、菌株DH5α、BL21(DE3)由西北農(nóng)林科技大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院免疫學(xué)實驗室保存。
1.1.2 試驗用動物 成年健康雌性家兔(中國白兔),2.0kg±0.35kg,購自楊凌家兔養(yǎng)殖戶。
1.1.3 主要試劑 TaKaRa Ex-Taq DNA ploymerase、限制性內(nèi)切酶BamHⅠ、HindⅢ、T4DNA連接酶、蛋白分子量標準、DNA標準DL 2 000,購自寶生物工程(大連)有限公司;Trans5kMarker、Blue Plus II Protein Marker,購自北京全式金生物技術(shù)有限公司;SanPrep柱式DNA膠回收試劑盒、SanPrep柱式質(zhì)粒DNA小量抽提試劑盒,購自上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司;羊抗兔IgG-HRP,購自北京博奧森生物技術(shù)有限公司;增強型HRP-DAB底物顯色試劑盒,購自北京天根生化科技有限公司。
1.2.1 目的基因的擴增 根據(jù)GenBank公布的羊口瘡病毒B2L和VIR DNA序列(分別為JN565696.1和JN565697.1)設(shè)計引物,B2L上游引物:5′-CGCCGCGGATCCATGTGGCCGTTCTCCTCCA-3′(引入BamHⅠ酶 切 位 點);下 游 引 物:5′-CCCCCCAAGCTTTTAATTTATTGGTTTGCAGAACTCCG-3′(引入HindⅢ酶切位點);VIR上游引物:5′-CGCCGCGGATCCATGGCCTGCGAGTGCGCGTCTCTGAT-3′(引入BamHⅠ酶切位點);下游引物:5′-CCCCCCAAGCTTTTAGAAGCTGATGCCGCAGTTGTTGA-3′(引入HindⅢ酶切位點)。引物由南京金斯瑞生物科技有限公司合成。取牛睪丸原代細胞增毒獲得的第6代羊口瘡病毒細胞培養(yǎng)液100μL在沸水中水浴5min,冷水中冷卻3min,1 000r/min離心5min,取上清為模板,用PCR擴增目的片段。PCR反應(yīng)程序如下:95℃預(yù)變性5min;94℃50s,56℃30s,72℃90 s,共35個循環(huán);最后72℃10min。取全部PCR產(chǎn)物用10g/L瓊脂糖凝膠電泳,然后按照DNA膠回收試劑盒說明書回收PCR產(chǎn)物。
1.2.2 重組表達載體的構(gòu)建與鑒定 將DNA膠回收產(chǎn)物與pET-32a用BamHⅠ和HindⅢ雙酶切,連接,轉(zhuǎn)化到BL21(DE3)感受態(tài)中,從含有氨芐青霉素的平板中挑取單克隆用質(zhì)粒PCR和雙酶切鑒定,陽性克隆測序。
1.2.3 基因的誘導(dǎo)表達和鎳柱純化 表達菌在不同溫度、不同IPTG濃度、不同時間取樣,樣品在4℃以12 000r/min離心2min后收集菌體,PBS洗滌3次,然后用1/10倍體積的PBS重懸,冰上超聲破碎菌體(200W,每次超聲1min,間隔2s),超聲3min~5 min,4℃、12 000r/min離心2min分離上清和沉淀,經(jīng)SDS-PAGE電泳確定最佳表達條件。
按最佳表達條件大量誘導(dǎo)菌體,經(jīng)洗滌和超聲破碎菌體后4℃離心,取上清用鎳柱純化,經(jīng)SDSPAGE電泳鑒定。
1.2.4 抗血清制備 取3只家兔,免疫前每只采血3mL,分離血清作為陰性對照血清。分別在家兔脊柱兩側(cè)、腹股溝經(jīng)皮內(nèi)或皮下接種滅活羊口瘡病毒抗原,接種劑量為1mg/只。每隔2周接種1次,共4次。第1次免疫接種所用病毒抗原與弗氏完全佐劑等體積完全混勻,第2次則與弗氏不完全佐劑混勻,第3次及以后免疫接種使用的均為水劑抗原。第4次免疫接種后的第10天經(jīng)心臟采集兔血,分離血清,制備的抗血清即為兔抗羊口瘡病毒抗血清??寡灞鶅霰4妫¦estern blot和ELISA檢測用。
1.2.5 蛋白抗原性鑒定
1.2.5.1 Western blot鑒定 純化的目的蛋白經(jīng)SDS-PAGE電泳轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,用50g/L脫脂奶粉室溫封閉2h;用PBST漂洗PVDF膜3次,每次10min,加入封閉液稀釋的兔抗羊口瘡病毒抗血清(1∶400稀釋),4℃孵育過夜;PBST 漂洗PVDF膜3次,每次10min,加入PBST稀釋的羊抗兔IgG-HRP二抗(1∶10 000稀釋),室溫孵育1h;ddH2O漂洗,加入增強型HRP-DAB底物顯色,室溫作用約30min,顯色拍照。
1.2.5.2 ELISA鑒定 將純化的B2L蛋白、VIR蛋白、羊口瘡病毒按最佳包被濃度分別包被在96孔酶標板上,檢測山羊血清53頭份,新生羔羊臍帶血為陰性對照,加HRP標記兔抗羊二抗,經(jīng)TMB底物顯色15min后,酶標儀讀取OD 450nm值。結(jié)果以待檢血清OD 450nm值/陰性血清OD 450nm值≥2.1判為陽性,否則判為陰性,計算不同抗原檢測的陽性率并進行比較。
分別用引物擴增羊口瘡病毒B2L和VIR基因,PCR擴增后B2L基因在1 100bp、VIR基因在500 bp左右有一特異性條帶,與B2L基因目的片段大小1 137bp和VIR基因目的片段大小552bp基本相符(圖1)。
圖1 PCR擴增B2L和VIR基因Fig.1 PCR amplication of B2Land VIR genes
2.2.1 重組表達質(zhì)粒PCR鑒定結(jié)果 挑取單克隆,經(jīng)過夜培養(yǎng)獲得的菌液進行質(zhì)粒提取,以重組質(zhì)粒為模板進行PCR擴增,獲得與目的片段大小相符的特異性條帶,證明重組表達質(zhì)粒構(gòu)建成功(圖2)。
圖2 pET32a-B2L和pET32a-VIR重組質(zhì)粒PCR鑒定Fig.2 PCR identification of recombinant pET32a-B2Land pET32a-VIR plasmids
2.2.2 重組表達質(zhì)粒酶切鑒定 PCR鑒定為陽性的重組質(zhì)粒進行雙酶切鑒定,由于B2L和VIR基因引物中加有BamHⅠ和HindⅢ酶切位點,用BamHⅠ和HindⅢ雙酶切后得到兩個片段,一個與pET-32a載體片段大小一致,另一個與目的片段大小一致(圖3)。
圖3 pET32a-B2L和pET32a-VIR重組質(zhì)粒雙酶切鑒定Fig.3 Identification of recombinant pET32a-B2Land pET32a-VIR plasmids by double enzyme digestion
2.2.3 序列分析 酶切鑒定為陽性的菌液送樣測序,測序結(jié)果用DNA Star軟件整理后進行Blast比對,比對結(jié)果顯示重組質(zhì)粒與設(shè)計一致,表明目的基因已成功連接到pET-32a表達載體上。
對不同誘導(dǎo)時間、誘導(dǎo)溫度、IPTG濃度下誘導(dǎo)后的菌液進行超聲破碎、離心后,分別取上清和沉淀進行SDS-PAGE電泳,未誘導(dǎo)的菌液作為對照。結(jié)果可見pET32a-B2L-BL21在60ku左右有一條特異性條帶,與目的片段62.1ku大小基本相符,且B2L上清在10℃、IPTG濃度為0.3mmol/L、4h表達量最高(圖4);pET32a-VIR-BL21在29.0ku~44.3ku之間有一特異性條帶,大小在40ku左右,與目的片段39.7ku大小基本相符,上清在37℃、IPTG濃度為1mmol/L、11h表達量最高(圖5)。
圖4 重組pET32a-B2L-BL21上清最佳表達條件的SDS-PAGE電泳Fig.4 SDS-PAGE analysis of supernatant in the best expression of recombinant pET32a-B2L-BL21
圖5 重組pET32a-VIR-BL21上清最佳表達條件的SDS-PAGE電泳Fig.5 SDS-PAGE analysis of supernatant in the best expression of pET32a-VIR-BL21
重 組 pET32a-B2L-BL21、pET32a-VIR-BL21菌液表達的上清用鎳柱純化,其產(chǎn)物進行SDSPAGE電泳(圖6、圖7)。結(jié)果可見B2L、VIR蛋白純化后都有目的條帶,且分子質(zhì)量與目的片段大小相符,說明pET32a-B2L-BL21、pET32a-VIR-BL21在上清中表達了目的蛋白。
圖6 B2L蛋白純化的SDS-PAGE電泳Fig.6 SDS-PAGE analysis of purified B2Lprotein
2.5.1 Western blot鑒定 用兔抗羊口瘡病毒抗血清對純化的蛋白進行Western blot鑒定,發(fā)現(xiàn)特異條帶與預(yù)期蛋白大小相符(圖8、圖9),說明表達的蛋白為目的蛋白,而且能與兔抗羊口瘡病毒抗血清發(fā)生特異性反應(yīng),說明表達的蛋白與羊口瘡病毒擁有共同的B細胞表位。
圖7 VIR蛋白純化的SDS-PAGE電泳Fig.7 SDS-PAGE analysis of purified VIR protein
圖8 VIR純化蛋白的Western blot鑒定Fig.8 Identification of purified VIR protein by Western blot
圖9 B2L純化蛋白的Western blot鑒定Fig.9 Identification of purified B2Lprotein by Western blot
2.5.2 ELISA鑒定 B2L蛋白、VIR蛋白和羊口瘡病毒分別作為包被抗原,檢測山羊血清53頭份,經(jīng)計算表明B2L蛋白和羊口瘡病毒檢測的陽性率相同,都為56.6%;VIR蛋白檢測的陽性率為52.83%(表1),說明B2L蛋白具有與全病毒相近的診斷敏感性和特異性。
表1 不同抗原檢測山羊血清的結(jié)果Table 1 The result of different antigens detecting goat sera
羊口瘡病毒B2L和VIR蛋白都可刺激機體產(chǎn)生高效價抗體,感染羊口瘡病毒后不僅患病動物體內(nèi)存在抗B2L、VIR蛋白的抗體,而且未發(fā)病的隱性感染的山羊體內(nèi)也存在該抗體。目前我國在山羊養(yǎng)殖中不進行羊口瘡疫苗免疫接種,所以只要動物被羊口瘡病毒感染,機體內(nèi)就能檢測出抗B2L和VIR蛋白的抗體,可作為羊口瘡的診斷指標。
目前國內(nèi)外對B2L和VIR基因表達方面的研究較少。趙魁等[14]對羊口瘡病毒長春分離株的B2L基因成功進行了真核表達,但真核表達系統(tǒng)具有目的蛋白的表達水平低、費用高、操作復(fù)雜、周期長等缺點;張海瑞等對B2L基因進行了原核表達,但是是在包涵體中表達的目的蛋白[15],還沒有B2L基因可溶性表達的報道;目前只有對VIR基因進行克隆和進化關(guān)系的研究,還沒有對VIR蛋白表達方面的報道。由于作為ELISA檢測的包被抗原需要有活性,才能與天然蛋白的空間構(gòu)象相一致,以便更好的進行檢測,防止假陽性的出現(xiàn),因而需要進行蛋白的可溶性表達。本研究采用將目的蛋白與pET-32a載體連接,轉(zhuǎn)化到大腸埃希菌BL21(DE3)感受態(tài)中,通過不斷尋找最佳表達條件使目的蛋白在BL21(DE3)中高效、可溶性表達。從表達情況可知pET32a-B2L-BL21上清在10℃、IPTG濃度為0.3 mmol/L、4h表達量最高;pET32a-VIR-BL21上清在37℃、IPTG濃度為1mmol/L、11h表達量最高。本研究通過Western blot和ELISA方法鑒定出獲得的B2L和VIR原核表達蛋白能與兔抗羊口瘡病毒抗血清特異性結(jié)合,而且B2L蛋白檢測53頭份血清的陽性率與羊口瘡病毒檢測的結(jié)果相同,證明其具有與羊口瘡病毒相同的B細胞表位,可以代替羊口瘡病毒作為包被抗原,這為羊口瘡ELISA檢測方法的建立奠定了基礎(chǔ)。
[1] Hosamani M,Scagliarini A,Bhanuprakash V,et al.Orf:an update on current research and future perspectives[J].Exp Rev Anti infect Ther,2009,7(7):879-893.
[2] Gumbrell R C,McGregor D A.Outbreak of severe fatal orf in lambs[J].Vet Rec,1997(141):150-151.
[3] 顏新敏,張 強.羊口瘡病毒的研究進展[J].中國動物檢疫,2008,25(11):51-53.
[4] 史宗勇,史新濤.羊傳染性膿皰研究進展[J].養(yǎng)殖與飼料,2010(11):35-37.
[5] G?kce H I,Gen O,Gürbüz G.Sero-prevalence of contagious ecthyma in lambs and humans in Kars,Turkey[J].Turk J Vet Anim Sci,2005,29(1):95-101.
[6] Gu S P,Shi X T,Shi Z Y.Identification and phylogenetic analysis of an Orf virus isolated from an outbreak in boer goat in Shanxi province[J].Agr Sci China,2011,10(6):946-953.
[7] McGuire M J,Johnston S A,Sykes K F.Novel immune-modulator identified by a rapid,functional screen of the parapoxvirus ovis(Orf virus)genome[J].Pro Sci,2012(10):4.
[8] Haig D M,McInnes C J,Thomson J,et al.The orf virus gene OV20.0Lgene product is involved in interferon resistance and inhibits interferon-inducible double-stranded RNA-dependent kinase[J].Immunology,1998(93):335-340.
[9] Kottaridi C,Nomikou K,Teodori L,et al.Phylogenetic correlation of Greek and Italian orf virus isolates based on VIR gene[J].Vet Microbiol,2006,116(4):310-316.
[10] Guo J,Zhang Z,Edwards J F,et al.Characterization of a North American orf virus isolated from a goat with persistent proliferative dermatitis[J].Vir Res,2003,93(2):169-179.
[11] Hosamani M,Bhanuprakash V,Scagliarini A,et al.Comparative sequence analysis of major envelope protein gene(B2L)of Indian orf viruses isolated from sheep and goats[J].Vet Microbiol,2006,116(4):317-324.
[12] Chan K W,Yang C H,Lin J W,et al.Phylogenetic analysis of parapoxviruses and the C-terminal heterogeneity of viral ATPase proteins[J].Gene,2009(432):44-53.
[13] Babiuk S,Wallace D B,Smith S J,et al.Detection of antibodies against capripoxviruses using an inactivated sheeppox virus ELISA[J].Trans Emerg Dis,2009(56):132-141.
[14] 趙 魁,賀文琦,高 豐,等.羊傳染性膿皰皮炎病毒研究進展[J].中國畜牧獸醫(yī),2008,35(11):133-137.
[15] 張海瑞.羊口瘡病毒的分離鑒定及其ELISA檢測方法的建立[D].北京:中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院,2011.