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        新生大鼠大腦皮層神經(jīng)元的原代培養(yǎng)

        2013-06-28 17:18:19翁啟芳
        中國醫(yī)藥指南 2013年20期
        關(guān)鍵詞:生長

        翁啟芳

        (海南醫(yī)學(xué)院生理學(xué)教研室,海南 海口 571199)

        新生大鼠大腦皮層神經(jīng)元的原代培養(yǎng)

        翁啟芳

        (海南醫(yī)學(xué)院生理學(xué)教研室,海南 ???571199)

        目的 成功建立簡便易行的原代神經(jīng)元培養(yǎng)模型的方法。方法 無菌操作條件下,培養(yǎng)皿或培養(yǎng)板經(jīng)L-多聚賴氨酸包被過夜,用15%完全培養(yǎng)液混懸神經(jīng)元,以細(xì)胞密度為5×104細(xì)胞/mL的濃度種植,24h后倒置相差顯微鏡觀察神經(jīng)元貼壁后即用阿糖胞苷(10μmol/L)以抑制神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞及非神經(jīng)細(xì)胞的增殖,每48h進(jìn)行每皿或每孔半量換液。結(jié)果 神經(jīng)元貼壁生長較多,神經(jīng)膠質(zhì)或成纖維細(xì)胞被抑制,在半量換液中可清除,獲得相對(duì)單純的神經(jīng)元。結(jié)論 簡便易行的原代皮層神經(jīng)元培養(yǎng)方法,可以得到相對(duì)單純體外培養(yǎng)的神經(jīng)元模型。

        皮層神經(jīng)元;原代培養(yǎng);細(xì)胞模型

        從新生動(dòng)物或動(dòng)物胚胎(如大鼠或小鼠)的腦組織取出局部區(qū)域的腦細(xì)胞,制成單細(xì)胞種植在培養(yǎng)容器后不再移植的過程,常稱為原代神經(jīng)元培養(yǎng)[1]。新生動(dòng)物皮層神經(jīng)元是一種高度分化的細(xì)胞[2],且神經(jīng)元體外離散分離培養(yǎng)所需要的營養(yǎng)條件相比較其他組織細(xì)胞培養(yǎng)較為困難。原代皮層神經(jīng)元培養(yǎng)模型的成功建立,是近代神經(jīng)科學(xué)研究中最重要的基礎(chǔ)方法之一。本文主要介紹簡便易行的新生大鼠皮層神經(jīng)元原代培養(yǎng)的流程。

        1 實(shí)驗(yàn)用品的配置

        1.1 基本的器械設(shè)備

        無菌操作室、操作凈化臺(tái)、CO2培養(yǎng)箱、倒置相差顯微鏡、冰箱、水純化系統(tǒng)、高壓消毒鍋;外科剪、細(xì)鑷子、移液管、吸管、燒杯、離心管、培養(yǎng)皿、培養(yǎng)板。

        1.2 主要的培養(yǎng)基質(zhì)

        有常用分子量為140,000的0.1mg/mL L-多聚賴氨酸、D - Hank’s 液,高糖培養(yǎng)液(干粉DMEM配置),10%胎牛血清或馬血清[3]、0.125%胰蛋白酶溶液。

        2 神經(jīng)元培養(yǎng)

        2.1 培養(yǎng)板準(zhǔn)備

        一般在細(xì)胞培養(yǎng)前1d,將使用的培養(yǎng)皿(35mm)或培養(yǎng)板涂上一層(濃度0.1mg/mL)L-多聚賴氨酸過夜,置于超凈臺(tái)中備用。

        2.2 取材

        根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康倪x取新生大鼠(1~3d)的大腦組織。

        2.3 培養(yǎng)步驟

        ①胰酶消化:新生的Wistar大鼠無菌斷頭取出全部大腦皮層組織,在4℃的D-Hank’s液(pH7.0)中用外科剪剪碎皮層組織制成細(xì)胞懸液;0.125%胰蛋白酶37℃水浴箱預(yù)熱5min,然后加入無菌玻璃試管收集的細(xì)胞懸液內(nèi)消化5min,并以15%完全培養(yǎng)液(胎牛血清15mL+DMEM培養(yǎng)液配置85mL)終止胰酶消化。②細(xì)胞計(jì)數(shù):細(xì)胞懸液預(yù)先經(jīng)100~200目尼龍網(wǎng)過濾后收集至50mL離心管中以1000g× 6min離心,棄去離心后的上清液,用15%完全培養(yǎng)液混懸離心后沉淀的細(xì)胞并進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)測定。③接種:以細(xì)胞密度為5×104細(xì)胞/mL的濃度,接種種植于預(yù)先用L-多聚賴氨酸包被過的培養(yǎng)皿或培養(yǎng)板,并置于37℃下5%CO2的培養(yǎng)箱中孵育。④獲取單純神經(jīng)元:放置培養(yǎng)箱中的培養(yǎng)皿或培養(yǎng)板中的神經(jīng)元經(jīng)過24h后即可穩(wěn)定的貼壁生長,24h后在每孔板內(nèi)加入阿糖胞苷(10μmol/L)可以及時(shí)抑制神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞的快速生長,從而獲得相對(duì)單純的原代皮層神經(jīng)元(圖1)。

        3 神經(jīng)元識(shí)別

        通過顯微鏡下觀察細(xì)胞外形進(jìn)行細(xì)胞的識(shí)別[4]。培養(yǎng)器中的神經(jīng)元以貼壁方式進(jìn)行生長,無懸浮感,細(xì)胞體呈圓形或梭形,有明顯的核仁,突起明顯,立體感強(qiáng),常見細(xì)胞膜外有光“暈”(圖2)。培養(yǎng)細(xì)胞中成纖維細(xì)胞或膠質(zhì)細(xì)胞,如“地毯”似貼壁(圖3,紅色箭頭),神經(jīng)元貼壁較慢,落在“地毯”上生長遷移和分化。所以在種植24h后觀察培養(yǎng)的神經(jīng)元存活較多后即可加入阿糖胞苷以抑制神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞的快速生長,從而獲得較單純的神經(jīng)元。神經(jīng)元的體外培養(yǎng)時(shí)間不宜過長,如用15%胎牛血清+85%DMEM培養(yǎng)液種植的神經(jīng)元生長最適宜時(shí)間在10d內(nèi)。若種植神經(jīng)元密度過多(圖4),也將導(dǎo)致神經(jīng)元分解代謝的物質(zhì)會(huì)影響正常神經(jīng)元的生長并加速神經(jīng)元的死亡,如神經(jīng)元突起縮回呈橢圓懸浮狀或細(xì)胞胞漿裂解勻質(zhì)小塊狀(圖5)。

        4 小 結(jié)

        1956年Nakai首創(chuàng)了神經(jīng)組織的分離細(xì)胞培養(yǎng)方法[5]。神經(jīng)元的體外培養(yǎng)模型于現(xiàn)代醫(yī)學(xué)和神經(jīng)科學(xué)中已被廣泛應(yīng)用,例如腦缺氧和缺血損傷、阿爾之海默病及興奮性神經(jīng)毒等多種神經(jīng)系統(tǒng)疾病的研究。成功建立體外原代皮層神經(jīng)元培養(yǎng)的模型,可進(jìn)一步作為藥物作用神經(jīng)元靶點(diǎn)及藥物結(jié)合特異性受體功能作用的研究,是探討多種神經(jīng)元損傷致病機(jī)理及治療手段最好的研究方法之一。

        [1] 張卓然.培養(yǎng)細(xì)胞學(xué)與細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)[M].上海:上??茖W(xué)技術(shù)出版社,2004:467-468.

        圖1 種植神經(jīng)元24h (10×40)

        圖2 種植神經(jīng)元第8d (10×40)

        圖3 種植神經(jīng)元第8d (10×40)

        圖4 種植神經(jīng)元第8d (密度過多,10×40)

        圖5 種植神經(jīng)元>10d (10×40)

        [2] 《中國組織工程研究與臨床康復(fù)》雜志社學(xué)術(shù)部.組織工程研究中神經(jīng)細(xì)胞的培養(yǎng)[J].中國組織工程研究與臨床康復(fù),2011, 15(50):9466-9467.

        [3] 于麗華,趙書平,席先成,等.不同種類血清對(duì)新生大鼠大腦皮層神經(jīng)細(xì)胞培養(yǎng)的影響[J].實(shí)用醫(yī)藥雜志,2002,19(3):53-56.

        [4] 李玉,但齊琴,習(xí)楊彥彬.成年小鼠海馬神經(jīng)細(xì)胞培養(yǎng)及其鑒定[J].昆明醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2011,32(6):29-32.

        [5] 于樣,金英.神經(jīng)細(xì)胞培養(yǎng)方法在缺血性腦損傷研究中的應(yīng)用[J].錦州醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2003,24(1):53-56.

        R-33

        B

        1671-8194(2013)20-0087-02

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