夏 冰 杭州市紅十字會(huì)醫(yī)院口腔科 杭州 310003
·實(shí)驗(yàn)研究·
不同濃度雌激素對(duì)人源性牙周膜干細(xì)胞成骨分化能力的影響
夏 冰 杭州市紅十字會(huì)醫(yī)院口腔科 杭州 310003
目的:對(duì)比研究不同濃度的雌激素對(duì)人源性牙周膜干細(xì)胞成骨分化的影響。方法:采用DMEM完全培養(yǎng)基將人牙周膜干細(xì)胞制成單細(xì)胞懸液,分別加入濃度為0、10×10-10、10×10-9、10×10-8、10×10-7、10×10-6、10×10-5mol/L的雌激素,以未加入雌激素的成骨誘導(dǎo)液組(普通DMEM培養(yǎng)基中加入10mM β-甘油磷酸鈉、50μM維生素C及10nM地塞米松)作為陰性對(duì)照。培養(yǎng)后實(shí)時(shí)定量PCR方法分別檢測(cè)成骨早中晚期關(guān)鍵指標(biāo)Runx2、ALP和OCN mRNA表達(dá)。結(jié)果:濃度為10×10-10、10× 10-9、10×10-8、10×10-7、10×10-6、10×10-5mol/L的雌激素對(duì)人源性的牙周膜干細(xì)胞培養(yǎng)均無(wú)毒性;不同濃度組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);在成骨誘導(dǎo)7、14、21天時(shí),Runx2、ALP及OCN mRNA表達(dá)在10×10-7組最高(P<0.05~0.01)。在不同濃度雌激素組中成骨相關(guān)基因的表達(dá)均高于陰性對(duì)照組(P<0.05)。結(jié)論:當(dāng)雌激素濃度<10×10-7mol/L時(shí),雌激素能夠以劑量依賴的方式促進(jìn)人牙周膜干細(xì)胞成骨分化過(guò)程中成骨相關(guān)基因的表達(dá)。當(dāng)雌激素濃度>10×10-7mol/L時(shí),雌激素濃度的增加并未促進(jìn)成骨相關(guān)基因的表達(dá)。
牙周膜干細(xì)胞 成骨分化 雌激素
雌激素是骨骼系統(tǒng)中最為重要的調(diào)節(jié)因子,在調(diào)控女性骨骼新陳代謝方面發(fā)揮重要作用[1],絕經(jīng)期婦女由于雌激素的缺乏容易導(dǎo)致骨質(zhì)疏松等疾病。牙槽骨是人類骨組織中代謝最為活躍的部位之一,極易受雌激素水平的影響,從而引發(fā)牙周疾病,進(jìn)而危害人類的口頜系統(tǒng)及身心健康。牙周膜干細(xì)胞是一類取自于牙周膜的間充質(zhì)來(lái)源的成體干細(xì)胞,由于其在特定的條件下可以分化為成牙骨質(zhì)細(xì)胞、成骨細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、脂肪細(xì)胞和成膠原細(xì)胞等,在維持牙周組織的穩(wěn)態(tài),維護(hù)牙槽骨的新陳代謝過(guò)程中發(fā)揮重要作用[2]。本研究就不同濃度的雌激素對(duì)人源性牙周膜干細(xì)胞成骨分化的影響進(jìn)行了初步探討,報(bào)道如下。
1.1 人源性牙周膜干細(xì)胞來(lái)源 由第四軍醫(yī)大學(xué)牙體牙髓科嚴(yán)妍博士惠贈(zèng)[3]。
1.2 試劑及儀器 DMEM完全培養(yǎng)基(Gibico,美國(guó)),二氧化碳恒溫培養(yǎng)箱(美國(guó),Thermo公司),相差倒置顯微鏡及照相系統(tǒng)(日本,Olympus公司),MTT(Sigma,美國(guó)),DMSO(Sigma,美國(guó)),β-甘油磷酸鈉(Sigma,美國(guó)),維生素C(Sigma,美國(guó)),地塞米松(Sigma,美國(guó)),Trizal(Invitrogen,美國(guó)),反轉(zhuǎn)錄試劑盒(全式金,中國(guó)),紫外分光光度計(jì)(Eppendorf,德國(guó)),全自動(dòng)酶標(biāo)儀(美國(guó),Rayto公司),UDG染料(全式金,中國(guó)),本實(shí)驗(yàn)所采用的引物由上海生物工程技術(shù)有限公司合成。
2.1 人源性牙周膜干細(xì)胞取材及培養(yǎng) 采用含有10%(體積分?jǐn)?shù))胎牛血清(Gibico,美國(guó))的DMEM完全培養(yǎng)基在37℃、含5%CO2、相對(duì)濕度為90%的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。倒置顯微鏡下觀察牙周膜干細(xì)胞的生長(zhǎng)情況,待細(xì)胞鋪滿瓶底大約90%時(shí),采用0.25%的胰酶消化后,將消化的人牙周膜干細(xì)胞以1:3的比例進(jìn)行傳代培養(yǎng)。取第四代細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
2.2 不同濃度雌激素對(duì)人源性牙周膜干細(xì)胞的毒性實(shí)驗(yàn) DMEM完全培養(yǎng)基將人牙周膜干細(xì)胞制成單細(xì)胞懸液,以每孔8×103個(gè)細(xì)胞的密度接種于96孔板中,每孔體積約200μL。培養(yǎng)基中分別加入濃度為0、10×10-10、10×10-9、10×10-8、10×10-7、10×10-6、10×10-5mol/L的雌激素分別培養(yǎng)48、96h后棄培養(yǎng)基,每孔中加入100μL MTT溶液,37℃溫箱孵育6h后終止培養(yǎng),棄上清液。每孔加入150μL DMSO,震蕩使結(jié)晶物充分溶解后,酶標(biāo)儀檢測(cè)。
2.3 不同濃度雌激素對(duì)人源性牙周膜干細(xì)胞成骨的分化誘導(dǎo) 將細(xì)胞懸液以每皿3×103個(gè)細(xì)胞的密度接種于6 cm培養(yǎng)皿中,成骨誘導(dǎo)液中分別加入濃度為10×10-10、10×10-9、10×10-8、10×10-7、10×10-6、10×10-5mol/L的雌激素。以未加入雌激素的成骨誘導(dǎo)液組(普通DMEM培養(yǎng)基中加入10mM β-甘油磷酸鈉、50μM維生素C及10nM地塞米松)作為陰性對(duì)照。每3天換1次液。分別培養(yǎng)7、14、21天。
2.4 實(shí)時(shí)定量PCR方法檢測(cè)成骨不同階段的關(guān)鍵指標(biāo)Runx2、ALP和OCN的mRNA表達(dá) 于7、14、21天分別收取細(xì)胞,以Trizal提取細(xì)胞總RNA,用紫外分光光度計(jì)檢測(cè)其含量和純度,按反轉(zhuǎn)錄試劑盒的說(shuō)明書(shū)將提取的RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,將其以1: 10倍稀釋待用。PCR反應(yīng)引物(由上海生物工程技術(shù)有限公司合成):18S:上游5’-CAGCCACCCGAGATTGAGCA-3’,下游5’-TAGTAGCGACGGGCGGTGTG-3’;Runx2:上游5’-TGGTTACTGTCATGGCGGGTA-3’,下游5’-TCTCAGATCGTTGAACCTTGCTA-3’;ALP:上游5’-GGGACTGGTACTCAGACAACG-3’,下游5’-GTAGGCGATGTCCTTACAGCC-3’;OCN:上游5’-GGCGCTACCTGTATCAATGG-3’,下游5’-GTGGTCAGCCAACTCGTCA-3’??偡磻?yīng)體系20μL,其中模板cDNA 2μL,上游引物0.5μL,下游引物0.5μL,反應(yīng)液10μL,ddH2O 8μL,反應(yīng)條件為:50℃2min,95℃2min,95℃15s,60℃1min,循環(huán)40次。以18S為內(nèi)參。以上實(shí)驗(yàn)采用不同的原代標(biāo)本重復(fù)3次取均值。
2.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 應(yīng)用SPSS17.0軟件進(jìn)行方差分析,以P<0.05為有差異統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
3.1 人牙周膜干細(xì)胞的特性 倒置顯微鏡下觀察,牙周膜干細(xì)胞多呈長(zhǎng)梭形,有1~2個(gè)突起。細(xì)胞核為卵圓形,位于細(xì)胞質(zhì)的中央。形態(tài)與成纖維樣細(xì)胞類似。少數(shù)細(xì)胞形態(tài)為不規(guī)則的多角形、紡錘狀或橢圓形,體積較小,胞體豐滿。傳代后細(xì)胞生長(zhǎng)良好。
3.2 不同濃度雌激素的細(xì)胞毒性實(shí)驗(yàn) 雌激素能夠調(diào)控小鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的增殖與分化[4],所以首先本實(shí)驗(yàn)采用MTT的方法檢測(cè)不同濃度的雌激素對(duì)人源性牙周膜干細(xì)胞的細(xì)胞毒性,實(shí)驗(yàn)中所采用的濃度為10×10-10、10×10-9、10×10-8、10×10-7、10×10-6、10×10-5mol/L的雌激素對(duì)人源性的牙周膜干細(xì)胞培養(yǎng)均無(wú)毒性。不同濃度組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見(jiàn)圖1。
圖1 不同濃度雌激素處理人牙周膜干細(xì)胞48h、96h后細(xì)胞活性
3.3 不同濃度雌激素對(duì)人源性牙周膜干細(xì)胞成骨相關(guān)基因表達(dá)的影響 實(shí)時(shí)定量PCR結(jié)果顯示,成骨誘導(dǎo)第7、14、21天,標(biāo)志著成骨不同階段的關(guān)鍵指標(biāo)Runx2、ALP及OCN的基因表達(dá)水平相對(duì)于DMEM對(duì)照組顯著上升。在成骨誘導(dǎo)7、14、21天時(shí),成骨相關(guān)基因Runx2、ALP及OCN的基因水平表達(dá)在10×10-7組表達(dá)量最高(aP<0.05,bcP<0.01)。在不同濃度雌激素組中成骨相關(guān)基因的表達(dá)均高于陰性對(duì)照組(P<0.05)。見(jiàn)圖2。
圖2 不同濃度雌激素處理牙周膜干細(xì)胞7、14、21天后,Runx2、ALP及OCN mRNA表達(dá),與0mol/L組比較,aP<0.05,b、cP<0.01
牙周病是一類發(fā)生于牙槽骨的炎癥性骨吸收疾病,是造成牙齒松動(dòng)、牙列缺失及缺損的主要原因,影響了世界上大約20%人口的口頜系統(tǒng)健康[5]。嚴(yán)重的牙周炎癥得不到有效控制,會(huì)造成牙槽骨及根尖周組織的不可逆性損害,從而危害人類的口頜系統(tǒng)乃至身心健康。牙周膜干細(xì)胞是一類來(lái)自于牙周膜的成體干細(xì)胞,它不同于胚胎干細(xì)胞等涉及到倫理等敏感問(wèn)題,同時(shí)卻具有類似于胚胎干細(xì)胞的多向分化潛能,在牙槽骨及牙周組織的再生修復(fù)過(guò)程中顯示了巨大的潛力[6]。
由于牙周膜干細(xì)胞能夠同時(shí)表達(dá)ERα和ERβ受體,所以它被廣泛認(rèn)為屬于雌激素的一個(gè)靶器官。在大鼠的卵巢切除模型中,雌激素能夠通過(guò)與雌激素受體相互作用促進(jìn)鼠源性牙周膜干細(xì)胞的成骨分化[7]。此外,雌激素還能夠通過(guò)劑量依賴效應(yīng)促進(jìn)小鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化[4]。除卻雌激素外,許多類雌激素功能的黃酮類物質(zhì),例如染料木堿(一類黃酮類類雌激素物質(zhì))、柚皮素的衍生物(naringenin-6-C-glucoside(NCG))、TAK78等同樣能夠模仿雌激素的生理功能促進(jìn)成骨細(xì)胞的成骨向分化[8-10]。本研究發(fā)現(xiàn),10×10-10~10×10-5mol/L濃度的雌激素對(duì)人牙周膜干細(xì)胞無(wú)毒性。成骨誘導(dǎo)過(guò)程中外源性雌激素的加入能夠上調(diào)成骨相關(guān)指標(biāo)Runx2、ALP和OCNmRNA的表達(dá)。
牙周膜干細(xì)胞向成骨細(xì)胞的分化過(guò)程受一系列的轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子控制。其中Runx2是調(diào)控成骨分化過(guò)程中最關(guān)鍵的調(diào)控因子,它對(duì)成骨細(xì)胞的分化、成熟和骨的形成有著決定的作用[11]。Runx2不僅是成骨分化過(guò)程中最先表達(dá)的轉(zhuǎn)錄因子,它還能夠調(diào)控轉(zhuǎn)錄因子osterix以及骨形成相關(guān)基因,如I型膠原酶、ALP、骨涎蛋白、骨形成蛋白、OCN等的表達(dá)[11-13]。除此之外,ALP和OCN等骨形成相關(guān)基因在骨基質(zhì)的礦化、成熟方面也發(fā)揮了重要作用[14]。為了研究不同濃度雌激素對(duì)人牙周膜干細(xì)胞成骨分化能力的影響,本研究選取檢測(cè)不同時(shí)間點(diǎn)Runx2、ALP和OCN的變化。發(fā)現(xiàn)Runx2的表達(dá)量在第7天達(dá)到峰值,ALP和OCN分別在第14天和第21天達(dá)到峰值。
本研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)濃度<10×10-7mol/L時(shí),雌激素能夠以劑量依賴的方式促進(jìn)人牙周膜干細(xì)胞成骨分化過(guò)程中成骨相關(guān)基因的表達(dá)。當(dāng)濃度>10×10-7mol/L時(shí),雌激素濃度的增加并未促進(jìn)成骨相關(guān)基因的表達(dá)。朱曉斐等[4]研究發(fā)現(xiàn)雌激素能夠通過(guò)劑量依賴效應(yīng)促進(jìn)小鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化,本研究結(jié)果與之基本一致。在后期的研究中,我們將進(jìn)一步對(duì)雌激素促進(jìn)人牙周干細(xì)胞的成骨分化機(jī)制進(jìn)行探討,為臨床中由于雌激素缺乏引起的牙周疾病的治療提供理論依據(jù)。
[1]Khosla S,Melton LJ 3rd,Riggs BL.The unitary model for estrogen deficiency and the pathogenesis of osteoporosis:is a revision needed[J].Bone Miner Res,2011,26(3):441.
[2]Seo BM,Miura M,Batouli S,et al.Investigation of multipotent postnatal stem cells from human periodontal ligament.[J].Lancet,2004,364(9429):149-155.
[3]Yan Y,Zeng W,Song S,et al.Vitamin C induces periodontal ligment progenitor cell differentiation via activation of ERK pathway mediated by PELP1[J].Protein Cell,2013,4(8):620-627.
[4]朱曉斐,毛飏,金巖,等.雌激素劑量依賴性促進(jìn)小鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化[J].中國(guó)組織工程研究,2012,16(19):3433-3437.
[5]Petersen PE,Bourgeois D,Ogawa H,et al.The global burden of oral diseases and risks to oral health[J].Bull World HealthOrgan,2005,83(9):661-669.
[6]Mao JJ,Giannobile WV,Helms JA,et al.Craniofacial tissue engineering by stem cells[J].Dent Res,2006,85(11):966.
[7]Zhang B,Li Y,Zhou Q,et al.Estrogen deficiency leads to impaired osteogenic differentiation of periodontal ligament stem cells in rats[J].Tohoku J Exp Med,2011,223(3):177-186.
[8]Heim M,F(xiàn)rank O,Kampmann G,et al.The phytoestrogen genistein enhances osteogenesis and represses adipogenic differentiation of human primary bone marrow stromal cells[J].Endocrinology,2004,145(2):848-859.
[9]Swarnkar G,Sharan K,Siddiqui JA,et al.A naturally occurring naringenin derivative exerts potent bone anabolic effects by mimicking oestrogen action on osteoblasts[J].Br J Pharmacol,2012,165(5):1526-1542.
[10]Bellesini LS,Beloti MM,Crippa GE,et al.The effect of TAK-778 on gene expression of osteoblastic cells is mediated through estrogen receptor[J].Exp Biol Med(Maywood),2009,234(2):190-199.
[11]Xiao G,Jiang D,Ge C,et al.Cooperative interactions between activating transcription factor 4 and Runx2/Cbfa1 stimulate osteoblast-specific osteocalcin gene expression[J].Biol Chem,2005,280(35):30689-30696.
[12]Gordon JA,Tye CE,Sampaio AV,et al.Bone sialoprotein expression enhances osteoblast differentiation and matrix mineralization in vitro[J].Bone,2007,41(3):462-473.
[13]Hinoi E,F(xiàn)ujimori S,Wang L,et al.Nrf2 negatively regulates osteoblast differentiation via interfering with Runx2-dependent transcriptional activation[J].Biol Chem,2006,281(26):18015-18024.
[14]Orimo H,Shimada T.The role of tissue-nonspecific alkaline phosphatase in the phosphate-induced activation of alkaline phosphatase and mineralization in SaOS-2 human osteoblast-like cells[J].Mol Cell Biochem,2008,315(1-2):51-60.
Effect of Estrogen on Osteogenic Differentiation of Human Periodontal Ligament stem cells
XIA Bing.Hangzhou Red Cross Hospital,Hangzhou(310003),China
Objective:To compare the effect of estrogen with different concentrations on osteogenic differentiation of human periodontal ligament stem cells.Methods:Human periodontal ligament stem cell suspension was prepared with DMEM complete medium and then were cocultured with 0,10×10-10,10×10-9,10×10-8,10×10-7,10×10-6,and 10× 10-5mol/L of estrogen.Real-time quantitative PCR was used to detect the expression of osteogenic key indicators like Runx2,ALP,and OCN mRNA after coculture.Results:No toxic effect on human periodontal ligament stem cells was found in 10×10-10,10×10-9,10×10-8,10×10-7,10×10-6,and 10×10-5mol/L estrogen groups and no statistically significant difference was noted among these groups(P>0.05).On day 7,14,and 21 during osteogenic differentiation,the expression of Runx2,ALP,and OCN mRNA were the highest in 10×10-7estrogen group(P<0.05~0.01)and were higher in all estrogen groups compared with the negative control group(0 estrogen group,P<0.05).Conclusion:Estrogen can promote bone-related gene expressions during osteogenic differentiation of human periodontal ligament stem cells in a dose-dependent manner when its concentration was not more than 10×10-7mol/L.When estrogen levels were more than 10×10-7mol/L,the effect was not seen.
periodontal ligament stem cells osteogenic differentiation estrogen
2013-07-30