潘麗杰 陳妍 袁杰
[摘要]目的:分離培養(yǎng)人臍血間充質(zhì)干細(xì)胞( human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells, hUCB-MSC),體外觀察其生長(zhǎng)特性,并在特定條件下誘導(dǎo)分化,探討其成脂成骨分化能力。方法:采用沉降法和密度梯度離心結(jié)合貼壁培養(yǎng)法自臍血中分離間充質(zhì)干細(xì)胞,倒置顯微鏡下觀察其形態(tài)及生長(zhǎng)情況;流式細(xì)胞儀分析細(xì)胞周期并檢測(cè)細(xì)胞表面標(biāo)志物;用茜素紅染色和油紅O染色分別鑒定其成骨成脂分化能力。結(jié)果:純化的hUCB-MSC貼壁生長(zhǎng),呈均一梭形,具有較強(qiáng)的增值能力,流式細(xì)胞儀分析P3代hUCB-MSC穩(wěn)定表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞表面抗原標(biāo)志 CD73,CD105 和 CD90 等,不表達(dá)造血標(biāo)志 CD34 和 CD45;成骨誘導(dǎo)后3周后細(xì)胞茜素紅染色陽(yáng)性;成脂誘導(dǎo)3周后細(xì)胞油紅O染色陽(yáng)性。結(jié)論:本實(shí)驗(yàn)分離的hUCB-MSC具有較強(qiáng)的增殖能力,表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞的表面標(biāo)記, 具有成骨成脂分化潛能。
[關(guān)鍵詞]臍血;間充質(zhì)干細(xì)胞;分化;鑒定
[中圖分類號(hào)]Q813.1 [文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼]A [文章編號(hào)]1008-6455(2013)07-0735-04
間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cells,MSCs),作為一種成體干細(xì)胞用于再生醫(yī)學(xué)修復(fù)各種間葉組織如骨、軟骨、肌肉等,具有廣闊的發(fā)展空間[1-2],目前應(yīng)用較為廣泛為骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞,但由于骨髓取材屬有創(chuàng)操作且干細(xì)胞隨供體年齡增大有老化傾向等問(wèn)題,在一定程度上限制其臨床應(yīng)用[3]。與骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞相比,臍血干細(xì)胞來(lái)源廣泛,采集方便,不會(huì)對(duì)供者造成任何傷害,且有研究顯示患者接受異體移植后,臍血來(lái)源的MSCs顯示出更低的免疫原性反應(yīng)[4-5]所以人臍血MSCs引起越來(lái)越多研究者的廣泛興趣。但是關(guān)于間充質(zhì)干細(xì)胞的含量及能否成功體外培養(yǎng)存在很大爭(zhēng)議。因此,本實(shí)驗(yàn)即探討hUCB-MSCs的分離培養(yǎng)及其生物學(xué)特性,以期建立穩(wěn)定的體外分離培養(yǎng)體系;同時(shí)對(duì)其體外誘導(dǎo)分化能力也進(jìn)行深入研究,以期為下一步研究奠定實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
1 材料和方法
1.1 材料:所有標(biāo)本均取自哈爾濱醫(yī)科大學(xué)附屬第一臨床醫(yī)學(xué)院婦產(chǎn)科順產(chǎn)及剖宮產(chǎn)的胎兒,孕婦體健,乙肝五項(xiàng)、梅毒等檢測(cè)均為陰性,胎兒無(wú)先天性疾病,取血前征得產(chǎn)婦及家屬同意并簽署知情同意書(shū)。0.25%胰蛋白酶/EDTA、DMEM/F12(美國(guó), Hyclone),胎牛血清FBS(美國(guó),Gibco),人淋巴細(xì)胞分離液(1.077 g/ml,天津TBD公司),地塞米松、維生素C、吲哚美辛、β-甘油磷酸鈉、3-異丁基-1-甲基黃嘌呤(IBMX)和胰島素均購(gòu)自美國(guó)Sigma公司。熒光標(biāo)記小鼠抗人單克隆抗體:CD45-PE、CD34-APC、CD90-FITC、 CD105-FITC和CD73-PE均購(gòu)自美國(guó)biolegend公司。
1.2 方法
1.2.1 hUCB-MSC的分離與培養(yǎng)[6]:經(jīng)新生兒父母同意,采集新生兒臍血12份,每份50~80 ml,將所采集樣本于4h內(nèi)處理。將抗凝臍血用同體積的PBS稀釋一倍,混勻,再與37℃預(yù)溫的3%明膠等比混合,室溫下靜置至血漿與紅細(xì)胞界面形成后,吸取血漿層,2000 r/min離心5 min,收集細(xì)胞;用5 ml DMEM/F12重懸所得細(xì)胞,按2:1的體積比加到人淋巴細(xì)胞分離液(1.077g/ml)表面,2000 r/min離心20 min,離心后吸取懸于分離液面的白膜層,獲得單個(gè)核細(xì)胞。PBS洗兩次,用DMEM/F12培養(yǎng)基(含體積分?jǐn)?shù)為10%胎牛血清、10μg/L堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子bFGF、100U/mL青霉素和100 g/L的鏈霉素)懸浮上述細(xì)胞,計(jì)數(shù),以1×107cells/ml濃度接種于25ml培養(yǎng)瓶,置于37℃,5%CO2飽和濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。4天后首次換液,以后每3天換液一次。倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞生長(zhǎng)情況。細(xì)胞生長(zhǎng)至 80%融合時(shí),用0.25%胰蛋白酶/EDTA消化,1:1傳代。第一代后細(xì)胞生長(zhǎng)達(dá)到 80%~90%時(shí)按 1:3傳代。選用生長(zhǎng)良好的P3代細(xì)胞做鑒定。
1.2.2 流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞周期:取P3代細(xì)胞,0.25%胰酶/EDTA消化,制備單細(xì)胞懸液,并調(diào)整細(xì)胞數(shù)為1×106個(gè),70%冰乙醇固定30 min,PBS洗2次,40mg/L RNAse中處理后離心,加入10g/L碘化丙啶0.5ml,染色30min,流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞周期。
1.2.3 hUCB-MSC表面標(biāo)志的檢測(cè):取P3代細(xì)胞,在細(xì)胞達(dá)到80%融合時(shí),0.25%胰酶/EDTA消化,制備單細(xì)胞懸液,并調(diào)整細(xì)胞數(shù)為1×106個(gè),PBS洗兩次,離心,棄上清,加入0.1mlPBS重懸,分別加入熒光標(biāo)記的抗體及同型對(duì)照,室溫避光孵育 20min。流式細(xì)胞儀檢測(cè)CD90、CD105和CD73、CD45和CD34的表達(dá)情況。
1.2.4 hUCB-MSC分化能力檢測(cè):①成骨誘導(dǎo):取P3代細(xì)胞以5×104個(gè)/ml 接種于六孔板,用含10% FBS的 DMEM/F12 培養(yǎng) 24h,待細(xì)胞貼壁伸展后,實(shí)驗(yàn)組換用礦化誘導(dǎo)液(含10nmol/Lβ-甘油磷酸鈉,50μg/ml 維生素C,1×10-7mol/L地塞米松、10% FBS的DMEM/F12培養(yǎng)基),對(duì)照組僅用10%FBS的DMEM/F12培養(yǎng)基,每隔3天換液。鏡下觀察細(xì)胞復(fù)層生長(zhǎng)并出現(xiàn)黃褐色結(jié)節(jié)后棄去培養(yǎng)基,PBS洗3次,4%多聚甲醛固定30min,1%茜素紅染色10min,鏡檢、照相;②成脂誘導(dǎo):將P3代細(xì)胞以 5×104個(gè)/ml的密度接種于六孔板,用含10%FBS的DMEM/F12 培養(yǎng)24h,待細(xì)胞貼壁伸展后,換用成脂誘導(dǎo)液(含0.25μmol/L 地塞米松,0.5mmol/L IBMX,100mmo1/L 吲哚美辛,10μg/L 胰島素, 10% FBS 的DMEM/F12培養(yǎng)基),對(duì)照組不加誘導(dǎo)劑,每隔3天換液。鏡下觀察細(xì)胞內(nèi)出現(xiàn)脂肪小滴后棄去成脂誘導(dǎo)液,PBS洗3次,4%多聚甲醛固定15min,油紅O染色15min,顯微鏡下觀察、照相。
2 結(jié)果
2.1 hUCB-MSC形態(tài)學(xué)觀察:原代培養(yǎng)初期含有多種細(xì)胞成分,大部分細(xì)胞未貼壁,細(xì)胞為圓形或球形血細(xì)胞,第4天可見(jiàn)散在單個(gè)細(xì)胞貼壁,呈卵圓形,紡錘形和短梭形,逐漸伸出細(xì)胞突起,但無(wú)明顯擴(kuò)增;10天以后細(xì)胞體積增大,密度明顯增加,少數(shù) MSCs 呈多角形,大部分呈長(zhǎng)梭形,細(xì)胞突起明顯,且向周圍伸展呈輻射狀和網(wǎng)狀生長(zhǎng);細(xì)胞培養(yǎng)約3~4周可達(dá)80%~90%融合即可傳代。傳代hUCB-MSC接種后 6~8h即可貼壁,細(xì)胞均勻散在分布,生長(zhǎng)迅速,1周后可再次傳代。隨著換液和傳代,異質(zhì)性細(xì)胞逐漸被去除,貼壁細(xì)胞呈均一的成纖維樣細(xì)胞,呈旋渦狀生長(zhǎng)。見(jiàn)圖1。
2.4 hUCB-MSC分化能力鑒定:①成骨誘導(dǎo):hUCB-MSCs 成骨誘導(dǎo) 1周時(shí),細(xì)胞形態(tài)變化不明顯;3周時(shí)可見(jiàn)鈣化物形成,茜素紅染色可見(jiàn)胞漿中有大量的紅色鈣化基質(zhì)沉積,對(duì)照組無(wú)此變化,見(jiàn)圖 3;②成脂誘導(dǎo):hUCB-MSCs經(jīng)成脂誘導(dǎo)1周,生長(zhǎng)明顯減慢, 細(xì)胞形態(tài)開(kāi)始變得豐滿,胞體變大,胞漿豐富,誘導(dǎo)2周左右在細(xì)胞核周圍的胞漿內(nèi)出現(xiàn)一些折光性強(qiáng)的圓形脂肪小滴。隨時(shí)間的延長(zhǎng),脂肪滴逐漸增多并融合成大脂肪滴。3周后固定,1%油紅O 染色可見(jiàn)細(xì)胞內(nèi)有紅染脂滴,大小不等,部分脂滴發(fā)生融合,主要分布在細(xì)胞核周圍及其附近,對(duì)照組無(wú)此變化,見(jiàn)圖3。
3 討論
實(shí)驗(yàn)在查閱大量文獻(xiàn)的基礎(chǔ)上對(duì)培養(yǎng)條件進(jìn)行了優(yōu)化,首先選用含體積分?jǐn)?shù)為10%FBS的DMEM/F12作為培養(yǎng)基,并加入bFGF,主要考慮以往試驗(yàn)中已經(jīng)證明DMEM/F12能夠提高培養(yǎng)效率[7],而bFGF在間充質(zhì)干細(xì)胞生長(zhǎng)的信號(hào)傳導(dǎo)中具有重要的作用[8],促進(jìn)間充質(zhì)細(xì)胞貼壁。原代培養(yǎng)hUCB- MSC,主要有兩種形態(tài)的貼壁細(xì)胞:一類呈橢圓形或圓形,體積大,這類細(xì)胞不能進(jìn)一步增殖達(dá)到融合,最終趨于死亡。Erices等[7]認(rèn)為此類細(xì)胞可能來(lái)源于臍血的破骨祖細(xì)胞,Wexler等[9]認(rèn)為這群細(xì)胞表達(dá)了造血干細(xì)胞標(biāo)志,為造血干細(xì)胞來(lái)源。本實(shí)驗(yàn)認(rèn)為這類細(xì)胞來(lái)源于造血干細(xì)胞的可能性比較大,因?yàn)榉蛛x的單個(gè)核細(xì)胞大部分為造血干細(xì)胞,在培養(yǎng)中極易分化出造血系的細(xì)胞;另一類細(xì)胞呈均勻一致的長(zhǎng)梭形,12份臍血標(biāo)本有8份在第10天后出現(xiàn)大量MSCs,而圓形細(xì)胞很少,且MSCs增殖迅速,逐漸融合,傳代后生長(zhǎng)也很迅速,傳3代后圓形細(xì)胞基本不見(jiàn),剩下形態(tài)較為均一的漩渦樣生長(zhǎng)的纖維樣細(xì)胞,即hUCB-MSC。流式分析顯示約近80%處于細(xì)胞周期的G0/G1期。這些細(xì)胞自我更新能力很強(qiáng),表現(xiàn)為細(xì)胞在傳代后增殖迅速,可傳至第18代,與Goodwin 等[10]報(bào)道一致。
目前,間充質(zhì)干細(xì)胞的鑒定一般有兩種方法,其一是通過(guò)表面標(biāo)志物檢測(cè),臍帶血間充質(zhì)干細(xì)胞不表達(dá)或低表達(dá)造血干細(xì)胞的CDl4,CD34,CD45,不表達(dá)內(nèi)皮細(xì)胞CD31,CDl44;表達(dá)CDl3,CD29,CD44,SH2(CDl05),SH3(CD73),CD90,SH4,HLA-I等[11];另一種是從功能學(xué)上鑒定,即根據(jù)干細(xì)胞的生物學(xué)特性,在特定培養(yǎng)基中呈纖維細(xì)胞樣貼壁生長(zhǎng),表現(xiàn)為幼稚細(xì)胞的特性,能夠分化為至少兩種不同的子代細(xì)胞。結(jié)合上述兩種方法,本實(shí)驗(yàn)中流式細(xì)胞儀檢測(cè)提示所分離培養(yǎng)的成纖維樣細(xì)胞表達(dá) CD73、CD105、CD90,不表達(dá)造血細(xì)胞相關(guān)抗原 CD34、CD45,證明這些細(xì)胞是區(qū)別于造血細(xì)胞且具有高度增殖能力的處于未分化狀態(tài)的非定向干細(xì)胞。為進(jìn)一步確定所純化的MSCs是否具有多向分化潛能,分別進(jìn)行成骨、成脂誘導(dǎo)分化,結(jié)果顯示誘導(dǎo)3周后檢測(cè)到鈣化基質(zhì)的沉淀與脂滴的形成,證明所培養(yǎng)MSCs具有多向分化潛能。
牙再生是利用組織工程原理形成組織、形態(tài)和功能與天然牙一樣或相似的礦化組織。其中種子細(xì)胞是牙再生的基礎(chǔ)與關(guān)鍵,目前牙源性干細(xì)胞為主要來(lái)源,但因其來(lái)源困難限制其應(yīng)用,非牙源性干細(xì)胞如骨髓、脂肪、真皮來(lái)源的MSC逐漸被應(yīng)用于牙再生研究。由于具有來(lái)源廣泛,易獲取且無(wú)倫理學(xué)限制,增殖分化能力更強(qiáng)等優(yōu)點(diǎn),目前有研究呼吁將臍血間充質(zhì)干細(xì)胞作為牙再生種子細(xì)胞進(jìn)行研究[12]。為此,本實(shí)驗(yàn)通過(guò)體外培養(yǎng)建立臍血間充質(zhì)干細(xì)胞系,并探討其生物學(xué)特性。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明體外分離的hUCB-MSC為長(zhǎng)梭狀成纖維樣細(xì)胞,表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞標(biāo)志,體外增值活力很強(qiáng),經(jīng)特定條件誘導(dǎo),細(xì)胞可向脂肪細(xì)胞和成骨細(xì)胞方向分化,表明建立的細(xì)胞系為MSC并具有多項(xiàng)分化潛能。下一步我們將利用發(fā)育期牙胚所提供的微環(huán)境誘導(dǎo)人臍血間充質(zhì)干細(xì)胞,探討其牙向分化的可能性。hUCB-MSC可望作為種子細(xì)胞在牙齒再生組織工程學(xué)研究中有廣闊的應(yīng)用前景。
[參考文獻(xiàn)]
[1]Granero -Molto F,Weis JA,Longobardi L,et al. Role of mesenchymal stem cells in regenerative medicine: application to bone and cartilage repair [J]. Expert Opin Biol Ther, 2008,8(3):255-268.
[2]Zhou XZ,Leung VY,Dong QR,et al.Mesenchymal stem cell based repair of articular cartilage with polyglycolic acidhydroxyapatite biphasic scaffold [J].Int Artif Org,2008,31(6):480-489.
[3]Stenderup K,Justesen J,Clausen C,et al. Aging is associated with decreased maximal life span and accelerated senescence of bone marrow stromal cells[J].Bone,2003,33(6):919-926.
[4]Lee OK,Kuo TK,Chen WM,et al.Isolation of multipotent mesenchymal stem cells from umbilical cord blood [J].Blood,2004,103(5):1669-1675.
[5]Kleen TO,Kadereit S,F(xiàn)anning LR, et al. Recipient-specific tolerance after HLA -mismatched umbilical cord blood stem cell transplantntation[J].Transplantation,2005,80(9):1316-1322.
[6]姚天華,湯曉雨,楊壯群,等.體外誘導(dǎo)人臍血間充質(zhì)干細(xì)胞向軟骨細(xì)胞分化的初步研究[J].中國(guó)美容醫(yī)學(xué),2007,16(4):450-454.
[7]劉岱,趙玉明,晏曉青,等.人臍帶血間充質(zhì)干細(xì)胞分離培養(yǎng)體系的優(yōu)化篩選[J].中國(guó)組織工程研究與臨床康復(fù),2009,13(10):1839-1843.
[8]Ng F,Boucher S, Koh S, et al. PDGF, TGF-beta, and FGF signaling is important for differentiation and growth of mesenchymal stem cells(MSC):transcriptional profiling can identify markers and signaling pathways important in differentiation of MSCs into adipogenic, chondrogenic,and osteogenic lineages [J].Blood,2008,112(2):295-307.
[9]Erices A,Conget P,Minguell JJ.Mesenchymal progenitor cell in human umbilical cord blood [J].Br J Haematol,2000,109(1):235-242.
[10]Wexler SA,Donaldson C,Denning-Kendall P,et al.Adult bone marrow is a rich source of human mesenchymal stem cells but umbilical cord and mobilized adult blood are not[J].Br J Haematol,2003,121(2):368-374.
[11]Goodwin HS,Bicknese AR,Chien SN,et al.Multilineage differentiation activity by cells isolated from umbilical cord blood: expression of bone,fat,and neural markers[J].Biol Blood Marrow Transplant.2001,7(11): 581-588.
[12]Ji BH,Chen J,Wang H.Feasibility of stem cells from umbilical cord blood as seed cells for tooth regeneration[J].Zhongguo Zuzhi Gongcheng Yanjiu yu Linchuang Kangfu,2010,14(32): 6060-6063.
[收稿日期]2013-02-02 [修回日期]2013-03-28
編輯/張惠娟