唐玉蘭,梁慶模,莫清華,金 軍
(1衡陽市第一人民醫(yī)院,湖南衡陽421002;2南華大學附屬第一醫(yī)院)
目前,有關miRNA與結腸癌的報道較多,研究發(fā)現(xiàn),miR-143、miR-320、miR-200c 等可通過靶向不同的靶基因抑制結腸癌細胞的生長、侵襲、轉移[1~4]。miR-124 在肝癌和宮頸癌組織中表達下調,可通過靶向CDK6抑制髓母細胞瘤細胞的生長與浸潤,也可通過靶向ITGB1抑制口腔鱗狀細胞癌的生長[5~9]。然而,關于 miR-124在結腸癌中的表達情況、生物學功能以及參與結腸癌發(fā)生發(fā)展的作用機制尚不明確。2010年9月~2012年6月,本研究采用 MTT、細胞劃痕、Transwell侵襲實驗觀察miR-124在人結腸癌SW620細胞中的生物學行為,為進一步闡明結腸癌發(fā)生、發(fā)展、浸潤、轉移的分子機制提供實驗依據(jù),為結腸癌的防治提供理論依據(jù)。
1.1 材料 人結腸癌SW620細胞,來自南華大學腫瘤研究所。
1.2 方法
1.2.1 細胞培養(yǎng) 人結腸癌SW620細胞培養(yǎng)于含體積分數(shù)為10%的滅活小牛血清(BSA)RPMI 1640培養(yǎng)基(Hyclone,美國)中,在37℃、5%CO2的培養(yǎng)箱(Forma,美國)內培養(yǎng)傳代。細胞呈單層生長,鋪滿培養(yǎng)瓶后傳代;傳代時常規(guī)倒掉培養(yǎng)液,用胰蛋白酶消化;在倒置顯微鏡(Olympus,日本)下觀察,發(fā)現(xiàn)細胞質回縮,細胞間隙增大后,立即傾去胰酶,加適量含血清培養(yǎng)液吹打成單細胞懸液,按所需濃度接種。
1.2.2 細胞轉染 miR-124成熟體用于轉染后上調細胞內miR-124表達,轉染濃度為40μmol/L。接種細胞于6/96孔板或50 mL培養(yǎng)瓶中,在完全培養(yǎng)基中細胞生長至30% ~50%;在無菌EP管中,采用Lipofectamin 2000TM轉染;室溫下放置 20 min,使DNA與脂質體形成復合體,用無血清培養(yǎng)液洗滌培養(yǎng)瓶中的細胞。往復合體中加入無血清的培養(yǎng)液(不含抗生素),溫和混勻,加入到待轉染的6/12/24/96孔板或50 mL培養(yǎng)瓶中;置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中,放置24~48 h。同時,設置miR-124陰性對照。
1.2.3 細胞生長能力觀察 采用MTT實驗。培養(yǎng)轉染miRNA以及對照的細胞達到75%~80%密度時,D-Hanks液洗2遍。消化細胞,制成單細胞懸液并進行細胞計數(shù)。接種細胞于96孔板中,每孔體積200μL接種3×103個細胞,重復6孔。37℃、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)24~72 h,每孔加5 mg/mL的MTT液20μL呈色。37℃、5%CO2培養(yǎng)箱繼續(xù)孵育4 h,終止并去除培養(yǎng)液。每孔再加入150μL DMSO,振蕩10 min,使結晶物溶解。選擇490 nm波長,MTT比色,測定各孔吸光度值并記錄結果。實驗重復3次,繪制MTT曲線。
1.2.4 細胞遷移能力觀察 采用細胞劃痕實驗。將瞬時轉染miR-124成熟體和陰性對照的細胞接種于6孔板,待之長至臨近飽和。用10μL的Eppendorf Tip消毒后在細胞板上劃痕,并將細胞洗滌2~3遍。加含5%小牛血清的DMEM培養(yǎng)基,倒置顯微鏡下觀察24、48 h各組細胞的變化并攝像。測量各組細胞任意3個部位的不同傷口的寬度,測算0 h與12、24 h的傷口愈合率,即0 h傷口寬度與12、24 h傷口寬度的差值與0 h傷口寬度的比值。計數(shù)3組實驗的平均值,并進行統(tǒng)計分析。
1.2.5 細胞侵襲能力觀察 采用Transwell侵襲實驗。用鑷子夾住 Transwell小室浸泡在 500μL 1∶100基質膠中約5 min,取出 Transwell并晾干;將Transwell放入24孔板中,過夜干燥。在Transwell的上室內加入50μL基質膠,加入200μL無酶水/孔,直至干燥。待細胞長至80%,加入MEM培基(含5%胎牛血清)。將Tranwell預熱至37℃,每孔加入200μL侵襲緩沖液(2 mL BSA+38 mL RPMI 1640培基),37℃放置1 h。無血清培基洗滌后消化,1 000 r/min離心5 min,收集細胞。有血清的培基重懸細胞沉淀后,1 000 r/min離心5 min,放置細胞15 min。PBS洗2次,1 000 r/min離心10 min,5 mL侵襲緩沖液重懸細胞,調整細胞數(shù)為2.5×105/mL。通過間隙加入800μL Fibronectin Solution到下腔。在上腔內加入200μL細胞懸液,在過濾器上均勻布滿后放入培養(yǎng)箱培養(yǎng)36~38 h。10%甲醛中固定Transwell 10 min,自來水清洗2次。將Transwell加入結晶紫中5 min,自來水清洗后放入40℃溫水泡10 min。將培養(yǎng)小室倒置晾干中性樹膠封片,在光學顯微鏡下觀察、照相。隨機選取4個低倍視野(×100)進行細胞計數(shù),并計算平均值。實驗結果重復3次。
1.2.6 統(tǒng)計學方法 采用SPSS13.0統(tǒng)計軟件。實驗結果以ˉx±s表示,兩組間比較用t檢驗,多組間比較用單因素方差分析。P≤0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 miR-124對細胞生長能力的影響 MTT實驗檢測miR-124對人結腸癌SW620細胞生長的影響,轉染miR-124成熟體及其陰性對照24、48、72 h后,人結腸癌SW620細胞OD值分別為0.287±0.010、0.353 ±0.006、0.376 ±0.007,對照組分別為 0.436±0.014、0.551 ± 0.015、0.642 ± 0.021,P 均 <0.05。
2.2 miR-124對細胞遷移能力的影響 劃痕實驗檢測miR-124對人結腸癌SW620細胞運動能力影響,轉染miR-124成熟體12、24 h后傷口愈合率分別為26.5% ± 0.7%、37.7% ± 1.5%,其陰性對照分別為 40.6% ±2.5%、78.2% ±1.6%,P 均 <0.05。見插頁Ⅱ圖6。
2.3 miR-124對細胞侵襲能力的影響 Transwell侵襲實驗檢測miR-124對人結腸癌SW620細胞穿膜能力的影響,轉染miR-124成熟體及其陰性對照24 h后,穿過基底膜的SW620細胞數(shù)分別為(37±2.6)個和(80 ±3.6)個,P <0.05。見插頁Ⅱ圖7。
結腸癌是最常見的消化道惡性腫瘤之一,在所有惡性腫瘤中發(fā)病率居第3位,且其發(fā)病率每年呈上升趨勢。全世界每年新發(fā)結腸癌大約有120萬例,我國結直腸癌的發(fā)病率和病死率增長迅速,部分城市已經(jīng)達到或超過西方發(fā)達國家水平,成為僅次于肺癌的高發(fā)惡性腫瘤[10]。目前,對于結腸癌的形成、發(fā)展、預后以及治療都有了新的認識,但要治愈和預防結腸癌的發(fā)生,關鍵問題是了解結腸癌的病因及發(fā)病機制。但是,仍然有較多的患者因為缺乏有效的治療手段而死亡,因此,很有必要進一步研究結腸癌的致癌效應并尋找出新的治療策略。
miRNA的表達失調或功能異常,可能導致包括腫瘤在內的多種疾病的發(fā)生。越來越多的研究顯示,在人類腫瘤中存在miRNA表達失調,miRNA發(fā)揮癌基因和抑癌基因的功能參與細胞增殖、凋亡和分化的調控,在腫瘤的發(fā)生、發(fā)展過程中發(fā)揮著重要的生物學功能[2,3]。Ghanta 等[11]通過自己建立的人類miRNA疾病數(shù)據(jù)庫整理出幾十個致瘤miRNA和抑瘤miRNA,并對其功能、表達、進化、基因組分布、靶基因及轉錄因子等進行了全面的系統(tǒng)生物學分析,發(fā)現(xiàn)在功能上致癌miRNA更傾向于促進細胞增殖、抑制凋亡、抑制免疫細胞發(fā)育、控制細胞周期等,而抑癌miRNA更傾向于抑制細胞生長、促進凋亡等。關于miRNA可作為癌基因或抑瘤基因參與腫瘤發(fā)生、發(fā)展的報道越來越多。文獻表明,miR-124在肝癌和宮頸癌組織中表達下調,miR-124可通過靶向CDK6抑制髓母細胞瘤細胞的生長與浸潤,也可通過靶向ITGB1抑制口腔鱗狀細胞癌的生長[5~8]。miR-124 與 miR-137 能促進 CD+133腫瘤干細胞的分化,抑制癌細胞的增殖,細胞周期蛋白激酶CDK6是它們的作用靶點[9]。因此,miR-124可能作為抑癌miRNA參與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展。鑒于此,我們在下一步的課題中,深入miR-124在結腸癌中研究將可能進一步了解結腸癌的分子病理機制。本研究結果表明,miR-124可顯著抑制人結腸癌SW620細胞生長及運動能力,過表達miR-124可顯著抑制人結腸癌SW620細胞的侵襲能力。因此,我們初步推測miR-124在結腸癌中可能發(fā)揮抑癌基因的作用。
綜上所述,miRNA作為癌基因或抑癌基因功能的發(fā)現(xiàn)為腫瘤病因及發(fā)病機制的研究提供了新思路,也為腫瘤預防及腫瘤分型、診斷、預后判斷、指導用藥、療效監(jiān)測甚至輔助治療提供了新策略[12,13]。繼續(xù)深入miR-124與結腸癌關系的研究,闡明miR-124參與結腸癌發(fā)生、發(fā)展的分子機制,可為結腸癌的防治提供理論依據(jù)和實驗基礎。
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