任曉英,王 靜,馮翠麗,王 偉*,王清君,李志強
(1.河北省保定市第二醫(yī)院急診科,河北保定071051;2.河北醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院無機物化教研室,河北石家莊050017;
3.河北省新河縣中醫(yī)院婦產(chǎn)科,河北新河055650)
·論 著·
光譜法研究間尼索地平與人血清白蛋白的相互作用
任曉英1,王 靜2,馮翠麗3,王 偉2*,王清君2,李志強3
(1.河北省保定市第二醫(yī)院急診科,河北保定071051;2.河北醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院無機物化教研室,河北石家莊050017;
3.河北省新河縣中醫(yī)院婦產(chǎn)科,河北新河055650)
目的研究不同溫度下間尼索地平(m-nisoldipine,m-Nis)與人血清白蛋白(human serum albumin,HSA)相互作用。方法采用紫外光譜法和熒光光譜法在模擬人體生理pH=7.4的0.1mol/L磷酸緩沖溶液中研究不同溫度下m-Nis與HSA相互作用的光譜行為。結(jié)果m-Nis沒有使HSA的構(gòu)象發(fā)生變化。293K、301K和310K時的猝滅常數(shù)為分別為1.03×105mol/L,1.25×105mol/L和1.31×105mol/L;結(jié)合點數(shù)n近似為1,反應(yīng)的焓變值為3.695kJ/mol,且ΔG<0,ΔS>0;m-Nis在HSA上的結(jié)合位置距色氨酸殘基的距離(r)=2.96nm。結(jié)論m-Nis對HSA的熒光猝滅作用不是簡單的動態(tài)猝滅或靜態(tài)猝滅,而是形成了1∶1的復(fù)合物,造成熒光猝滅;m-Nis與HSA之間發(fā)生的是非輻射能量轉(zhuǎn)移過程,二者之間的主要作用力是疏水力。
尼索地平;血清白蛋白;光譜法,熒光
人血清白蛋白(human serum albumin,HSA)是人體血漿中含量最為豐富的大分子蛋白質(zhì),大部分藥物的運輸要通過與血液中的血清白蛋白的可逆結(jié)合才能完成[1-4]。間尼索地平(m-nisoldipine,m-Nis)是河北醫(yī)科大學(xué)自主合成的二氫吡啶類鈣離子抑制劑,與同類的二氫吡啶類藥物相比,更能有效地增強心臟輸血量,降低心肌收縮應(yīng)力,并在胸動脈中有高的選擇性[5]。熒光光譜法是研究血清白蛋白與藥物相互作用的重要手段[6]。本文采用熒光光譜法,輔助紫外光譜,對m-Nis與HSA的作用機制進行研究,計算得到m-Nis和HSA結(jié)合的結(jié)合常數(shù)、結(jié)合位點數(shù)和熱力學(xué)參數(shù),旨在為深入研究m-Nis在體內(nèi)的儲存、運輸、作用機制提供參考。
1.1 儀器與試藥:LS50B型熒光光譜儀(美國Per Kin-Elmer公司);HH-1型恒溫水浴鍋(北京科偉永興儀器有限公司);UV-2201型紫外-分光光度計(日本島津儀器株式會社);KQ-100DE型超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);pHS-25型精密酸度計(上海雷磁儀器廠);HSA(北京索來寶生物技術(shù)有限公司);m-Nis(河北醫(yī)科大學(xué)藥物化學(xué)教研室自制);其他試劑均為分析純;實驗用水為去離子水。
1.2 方法
1.2.1 溶液的配置
1.2.1.1 HSA溶液:精確稱量HSA適量,用pH= 7.40緩沖液溶解并配制成濃度為2.0×10-5mol/L的溶液于4℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.1.2 m-Nis溶液:精確稱量m-Nis適量,用少量無水乙醇溶解并配成濃度為2.0×10-3mol/L的儲備液。
1.2.2 紫外光譜和熒光光譜分析:分別在5mL的容量瓶中加入1.0mL HSA溶液,然后依次加入不同體積(0、0.01、0.02、0.03、0.04、0.05、0.07mL)的m-Nis溶液,以pH=7.40的磷酸鹽緩沖液定容,水浴振搖30min,激發(fā)波長設(shè)定為280nm,掃描范圍為280~500nm,掃描速度為100nm/min,激發(fā)與發(fā)射狹縫均為5nm。測定不同溫度下,HSA在不同濃度的m-Nis存在時的熒光光譜和同步熒光光譜(Δλ= 15nm,Δλ=60nm);以緩沖鹽做參比,測定m-Nis與HSA濃度比為1∶1時的紫外吸收光譜。
2.1 m-Nis對HSA的熒光猝滅作用:m-Nis在與HSA結(jié)合的過程中能不同程度的猝滅HSA的熒光強度,且隨著溫度的升高猝滅強度增強,說明m-Nis與HSA發(fā)生了相互作用。按實驗方法得到HSA的熒光猝滅光譜見圖1。由圖可以看出,在不同溫度不同濃度下熒光強度F降低且峰位也發(fā)生了藍(lán)移。
2.2 m-Nis對HSA的猝滅常數(shù)的計算和猝滅機制的探討:熒光猝滅過程通常分為動態(tài)猝滅和靜態(tài)猝滅2種[3]。動態(tài)猝滅過程遵循Stern-Volmer方程[7],對HSA與m-Nis的結(jié)合體系而言是指m-Nis與HSA的激發(fā)態(tài)分子之間發(fā)生了能量轉(zhuǎn)移或是電子轉(zhuǎn)移。
圖1 293K時m-Nis對HSA發(fā)射光譜的影響曲線1~7濃度分別為0、0.4、0.8、1.2、1.6、20.0、2.8×10-5mol/LFigure1 Effectofm-Nison emission spectraofHSA(4.0×10-6mol/L)at293K withλex=280nmFrom curve 1 to 7m-Nis:0,0.4,0.8,1.2,1.6,2.0,2.8×10-5mol/L
其中F0和F分別為加入m-Nis前后的熒光強度,Kq為雙分子猝滅過程的速率常數(shù)。τ0為無m-Nis時HSA的平均壽命,一般為10-8s[8]。Ksv稱之為Stern-Volmer猝滅常數(shù),隨溫度的升高動態(tài)猝滅常數(shù)會增大。而靜態(tài)猝滅過程遵循以下方程。
其中Ks是靜態(tài)猝滅常數(shù),其隨溫度的升高而減小。由猝滅常數(shù)隨溫度的變化規(guī)律可判斷熒光猝滅類型。293K、301K和310K時m-Nis對HSA猝滅過程的Ksv,Kq和相應(yīng)的Stern-Volmer方程列于表1。隨著溫度的升高,猝滅常數(shù)Ksv、Kq有輕微的增大,不符合靜態(tài)猝滅的機制。但從m-Nis對HSA的猝滅常數(shù)數(shù)量級在1013上推斷也不是典型的動態(tài)猝滅,因為猝滅劑對生物大分子的最大動態(tài)猝滅常數(shù)為2× 1010。所以,僅由以上數(shù)據(jù)不能判斷猝滅類型。
表1 不同溫度下m-Nis與HSA作用的Stern-Volmer猝滅常數(shù)Table 1 Stern-Volmer quenching constants for m-Nis-HSA system s at different temperature
為進一步驗證m-Nis對HSA熒光的猝滅機制,測定了m-Nis與HSA相互作用的紫外吸收光譜圖,見圖2,3。HSA在紫外光譜區(qū)有2個特征的蛋白質(zhì)吸收帶,隨著m-Nis的不斷加入,波長為280nm的吸收帶表現(xiàn)為明顯的增色效應(yīng)且吸收峰位置基本不變。中HSA和等濃度m-Nis的吸光度相加所得圖譜及m-Nis與HSA等摩爾混合物的吸收光譜圖幾乎完全重合,表明HSA的紫外吸收光譜沒受m-Nis的影響,說明m-Nis對HSA的熒光猝滅過程沒有生成不發(fā)光的配合物,也不是典型的靜態(tài)猝滅[9]。
2.3 m-Nis對HSA構(gòu)象的影響以及二者結(jié)合距離的計算:在相同的實驗條件下,HSA的濃度固定為4×10-6mol/L,在m-Nis的濃度逐漸增加的條件下,固定Δλ分別為15nm和60nm進行熒光掃描,得到HSA中酪氨酸和色氨酸殘基的同步熒光光譜,見圖4。表明隨m-Nis濃度的增大,二者的同步熒光強度逐漸降低,峰位和峰形基本沒變,說明m-Nis同時對HSA的色氨酸和酪氨酸殘基發(fā)生作用,且m-Nis的加入沒有改變蛋白質(zhì)的構(gòu)象。
能量轉(zhuǎn)移效率E與結(jié)合距離r之間的關(guān)系式如下[1]。
其中,R0為能量轉(zhuǎn)移效率為50%時的臨界距離;ΦD為HSA的熒光量子產(chǎn)率,通常取值0.15;K2為偶極空間取向因子,可取HSA與m-Nis各向隨機分布的平均值2/3;n為介質(zhì)的折射指數(shù),一般取值1.366;F(λ)為HSA在波長λ處的熒光強度;ε(λ)為m-Nis在波長λ處的摩爾吸光系數(shù);Δλ為計算時分割的波長跨度;J是HSA的熒光發(fā)射光譜和m-Nis的紫外吸收光譜之間的重疊積分。HSA的熒光光譜與m-Nis的吸收光譜的重疊圖見圖5。結(jié)合公式(3)、(4)、(5)計算得到J=1.087×10-14cm3·L-1·mol-1,E=0.29,r=2.96nm。由于m-Nis在HSA上的結(jié)合位置距色氨酸殘基的距離r<7nm,根據(jù)Foster's偶極-偶極非輻射能量轉(zhuǎn)移理論可以得出結(jié)論,m-Nis與HSA之間發(fā)生的是非輻射能量轉(zhuǎn)移過程。
圖2 HSA在m-Nis存在時的紫外-可見吸收光譜圖曲線1~6 m-Nis濃度分別為0.4、0.8、1.2、1.6、2.0、2.8×10-5mol/LFigure 2 UV-vis absorption spectra of HSA(4.0×10-6mol/L)in the presence ofm-NisFrom curve 1 to6 Cm-Nis:0.4,0.8,1.2,1.6,2.0,2.8×10-5mol/L
圖4 m-Nis和HSA的同步熒光光譜曲線1~7 HSA濃度為4.0×10-6mol/L,m-Nis濃度分別為0、0.4、0.8、1.2、1.6、2.0、2.8×10-5mol/LFigure 4 Synchronous fluorescence spectra ofm-Nis and HSA systemCHSA=4.0×10-6mol/L,from curve 1 to 7 Cm-Nis:0,0.4,0.8,1.2,1.6,2.0,2.8×10-5mol/L
圖5 HSA的熒光光譜與m-Nis的紫外光譜的重疊圖Figure 5 Overlapping between the fluorescence spectrum of HSA and UV spectrum ofm-Nis
2.4 m-Nis對HSA結(jié)合常數(shù)和結(jié)合位點數(shù)的確定:采用Scatchard方程[10]計算了m-Nis與HSA相互作用的結(jié)合位點數(shù),見表2。不同溫度下的結(jié)合位點數(shù)n都接近于1,表明m-Nis與HSA形成了1∶1的復(fù)合物。利用修正的Stern-Volmer方程求得結(jié)合常數(shù)K,見表3。結(jié)合常數(shù)K的數(shù)量級在104~105左右,表明m-Nis與HSA形成瞬時的激發(fā)態(tài)復(fù)合物的作用很強,m-Nis完全能憑借這種結(jié)合作用被血液中的血清白蛋白儲存和運輸。2.5 m-Nis與HSA結(jié)合過程的熱力學(xué)參數(shù)的計算和作用力類型分析:蛋白質(zhì)等生物大分子和有機小分子之間的結(jié)合力主要有疏水作用力、靜電引力、氫鍵、范德華力等。根據(jù)熱力學(xué)公式,與△G=△HT△S=-RT/nK求得各熱力學(xué)參數(shù),見表4。Ross根據(jù)反應(yīng)前后焓變△H和熵變△S的大小總結(jié)出如下規(guī)律[11],如△1t>0、△S>0時,分子間為疏水作用力。由此可見m-Nis與HSA之間的作用力主要為疏水作用力。
表2 不同溫度下m-Nis與HSA的結(jié)合位點數(shù)Table 2 Binding sites ofm-Nisw ith HSA at different tem peratures
表3 不同溫度下m-Nis與HSA的結(jié)合常數(shù)Table 3 Binding constants ofm-Nis w ith HSA at different temperatures
表4 m-Nis與HSA結(jié)合過程的熱力學(xué)參數(shù)Table 4 Thermodynam ic parameters for binding ofm-Nis with HSA
本文在分子水平上,利用熒光光譜法和紫外分光光度法詳細(xì)地研究了在模擬的生理條件下m-Nis與HSA之間的相互作用。根據(jù)熒光猝滅常數(shù)隨溫度的變化趨勢初步判斷兩者的猝滅過程為動態(tài)猝滅,但是其數(shù)量級大于最大猝滅常數(shù),用動態(tài)猝滅機理無法解釋清楚。而紫外數(shù)據(jù)表明了藥物沒有直接與HSA形成基態(tài)復(fù)合物,也不符合靜態(tài)機制。熱力學(xué)參數(shù)的計算表明兩者的作用是一個熵加和Gibbs自由能降低的自發(fā)過程,反應(yīng)伴隨吸熱過程,所以隨溫度的升高,猝滅常數(shù)也增大。藥物與HSA之間的作用力為疏水力。由于m-Nis與HSA的結(jié)合距離較小,藥物很可能是在疏水作用力的引導(dǎo)下,嵌入色氨酸或是酪氨酸附近的疏水腔,微小程度地改變了蛋白質(zhì)的微環(huán)境,使得蛋白質(zhì)的熒光強度降低,熒光峰位發(fā)生了微小的藍(lán)移。
綜上所述,m-Nis與HSA的相互作用機制并不
是簡單的動態(tài)猝滅或靜態(tài)猝滅,而是形成一種復(fù)合物,其由激發(fā)態(tài)回到基態(tài)并未伴隨熒光發(fā)射[12],而是發(fā)生了非輻射能量轉(zhuǎn)移過程。m-Nis沒有使蛋白質(zhì)的構(gòu)象發(fā)生改變,僅通過蛋白質(zhì)的運輸?shù)竭_(dá)作用部位,并得到相應(yīng)的靶點,發(fā)揮藥理作用。
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(本文編輯:劉斯靜)
INTERACTIONS BETWEEN M-NISOLDIPINE AND HUMAN SERUM ALBUM IN BY SPECTROSCOPIC METHOD
REN Xiaoying1,WANG Jing2,F(xiàn)ENG Cuili3,WANGWei2*,WANG Qingjun2,LIZhiqiang3
(1.Department of Emergency,the Second Hospital of Baoding City,Hebei Province,Baoding 071051,China;
2.Department of Inorganic and Physical Chemistry,the School of Pharmaceutical Sciences,Hebei Medical University,Shijiazhuang 050017,China;3.Department of Gynaecology and Obstertrics,Chinese Traditional Medicine Hospital of Xinhe County,Hebei Province,Xinhe055650,China)
Objective To study the interactions between m-nisoldipine(m-Nis)and human serum albumin(HSA).MethodsUltraviolet visible spectroscopy(UV-vis)and fluorescence spectroscopy were used to study the spectral behavior of interactions between m-Nis and HSA under different temperature at the physiological pH(7.4).Resultsm-Nis did not cause the conformation change of the HAS;The quenching constants at 293K,301K,and 310K were 1.03×105mol/L,1.25× 105mol/L,1.31×105mol/L,respectively;the number of binding sites(n)was nearly 1.The enthalpy change(ΔH)was 3.695 kJ/mol withΔG<0 andΔS>0;The distance between binding site and tryptophan(r)=2.96nm.
Themechanism of fluorescence quenching ofm-Nis to HSA was neither static nor dynamic fluorescence quenching,but formed 1∶1 complex and resulted fluorescence quenching.The non-radialization energy transfer process occurred betwwenm-Nis and HASand the action force was hydrophobic interaction.
nisoldipine;serum albumin;spectrometry,fluorescence
R657.39
A
1007-3205(2013)06-0678-05
2012-10-25;
2012-12-03
2009年河北省教育廳資助項目(2009148);2009年河北省衛(wèi)生廳資助項目(20090059);河北省科技支撐計劃項目(09276438)
任曉英(1973-),女,河北保定人,保定市第二醫(yī)院副主任醫(yī)師,醫(yī)學(xué)碩士,從事急診科疾病診治研究。
*通訊作者。E-mail:hbydwangwei@163.com
10.3969/j.issn.1007-3205.2013.06.021