李彥,關(guān)麗麗,牟妍,孫磊麗,梁君妮,沙美蘭,鄒文曉,孫愛麗,曹鵬,*
(1.煙臺(tái)出入境檢驗(yàn)檢疫局,山東煙臺(tái)264000;2.青島科技大學(xué),山東青島264200)
金剛烷胺是最早用于抑制流感病毒的抗病毒藥[1-2],因其在體內(nèi)降解代謝的量極微,主要以原形隨體液排出,若長期食用殘留量高或被此類藥物污染的食品,會(huì)在人體內(nèi)積累易致蓄積中毒,對(duì)中樞神經(jīng)系統(tǒng)造成不良影響[3-4]。金剛烷胺是國家明令禁止向食品中添加的禁用物,日本也于2013年2月15日發(fā)布通知,在進(jìn)口食品監(jiān)控計(jì)劃中加入對(duì)中國產(chǎn)雞肉中金剛烷胺的檢查。但由于其藥理作用,國內(nèi)有部分商販將金剛烷胺用于雞、豬流感[5]的預(yù)防和早期治療,及豬傳染性胃腸炎的防治。我國對(duì)于畜禽組織食品中金剛烷胺殘留含量未曾制定或立項(xiàng)過國家標(biāo)準(zhǔn)、行業(yè)標(biāo)準(zhǔn),國際上也無特定限量要求及相應(yīng)檢測方法。為了保障人民飲食安全,有必要建立一種快速、準(zhǔn)確、靈敏的方法對(duì)食品中金剛烷胺殘留含量進(jìn)行檢測,同時(shí)其對(duì)于指導(dǎo)進(jìn)出口食品中金剛烷胺含量控制,消除潛在的出口貿(mào)易障礙,具有緊迫的現(xiàn)實(shí)意義。
QuEChERS(Quick,Easy,Cheap,Rugged,Safe)[6],是由美國農(nóng)業(yè)部Anastassiades 教授等于2003年開發(fā)的,近年來國際上最新發(fā)展起來的一種用于農(nóng)產(chǎn)品檢測的快速樣品前處理技術(shù)[7-10]。由于該方法穩(wěn)定可靠、分析速度快,本文采用1%乙酸乙腈萃取、QuEChERS 法凈化、超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法(UPLC-MS/MS)檢測,建立畜禽組織食品中金剛烷胺殘留的分析方法,對(duì)雞肉、雞肝、豬肉、豬肝等畜禽組織食品進(jìn)行分析。
Agilent 1290UPLC-6490A 超高效液相色譜三重四級(jí)桿串聯(lián)質(zhì)譜聯(lián)用儀:美國Agilent 公司;漩渦混合器VOATEX-2:Scientific Industries;SB5200 型超聲波清洗機(jī):美國Branson 公司;CF16RXⅡ型高速冷凍離心機(jī):日本Hitachi 公司;氮吹濃縮儀:美國Organomation Associates 公司;分析天平:感量為0.1 mg:德國Sartorius公司。
金剛烷胺(Adamantanamine.1-(SG)):純度≥99%,ChromaDex Inc.;乙腈、甲醇、甲酸:色譜純,德國Merk;無水硫酸鈉、冰乙酸為分析純;PSA(填料)、C18(填料):粒徑40 μm,美國Agilent 公司。
1.2.1 提取
稱取2.00g 勻質(zhì)后的樣品,置于50 mL 帶螺旋蓋的聚丙烯離心管中,加入10 mL 1%乙酸乙腈,充分渦旋混勻,超聲提取25 min,搖勻后5 000 r/min 離心5 min,上清液待凈化。
1.2.2 凈化
將上述上清液轉(zhuǎn)移到凈化管中(10 g 無水硫酸鈉,400 mgC18,200 mgPSA),渦旋混勻,5 000 r/min 離心5 min。準(zhǔn)確移取5.0 mL 上清液至具塞刻度試管,于45 ℃水浴下氮吹濃縮至近干,加入1.0 mL 定容液(30%乙腈水溶液含1%甲酸),超聲30 s,渦旋混勻,過0.22 μm濾膜,待上機(jī)測定。
1.3.1 液相條件
色譜柱:Proshell120EC-C18,3.0×100mm,2.7μm;流動(dòng)相:A:0.1%甲酸-5 mmol/L 乙酸銨溶液;B:乙腈;柱溫:30 ℃;進(jìn)樣量:2 μL;流速:0.4 mL/min;梯度洗脫條件:0~2.0 min,90%~85%A;2.0 min~4.0 min,85%A;4.0 min~7.0 min,85%~70%A;7.0min~8.0min,70%~10%A。
1.3.2 質(zhì)譜條件
離子源:電噴霧離子源(ESI+);毛細(xì)管電壓為4.0 kV;源溫200 ℃;脫溶劑溫度為350 ℃;脫溶劑氣流速為11 L/min;檢測方式:多反應(yīng)監(jiān)測(MRM);監(jiān)測離子對(duì)及各優(yōu)化參數(shù)見表1。
表1 金剛烷胺的多反應(yīng)檢測質(zhì)譜參數(shù)Table 1 MS parameters in MRM mode for amantadine
2.1.1 提取條件的優(yōu)化
乙腈在有效提取目標(biāo)物的同時(shí)具有沉淀蛋白的作用,且其帶出的弱極性成分少,反應(yīng)在質(zhì)譜上響應(yīng)高、基質(zhì)影響小,因而選用乙腈作為提取溶劑。金剛烷胺分子結(jié)構(gòu)中帶氨基,易溶于酸性試劑,在有機(jī)溶劑中添加一定比例的酸提取可顯著提高回收率[11-13],故考慮向其中加入部分酸性溶液,本文考察了1%乙酸乙腈、3%乙酸乙腈、1%甲酸乙腈、3%甲酸乙腈4 種提取溶劑,進(jìn)行回收率對(duì)照實(shí),結(jié)果見表2。
表2 不同提取溶劑對(duì)畜禽組織中金剛烷胺的回收率的影響Table 2 Effects on the recoveries of amantadine in livestock and poultry tissues with different extraction solvent
實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,用1%乙酸乙腈溶液作提取劑,提取時(shí)間為25 min,回收率較高,因此選擇1%乙酸乙腈為提取液。
2.1.2 凈化條件的優(yōu)化
PSA、C18 是QuEChERS 方法常用的吸附劑。采用PSA 可有效去除乙腈提取液中脂肪酸、糖類、酚類以及極性色素等成分,C18 具有良好的除脂能力,根據(jù)提取液中殘留脂肪和水分的含量特點(diǎn),通過實(shí)驗(yàn)考查,見圖1,最終采用200 mg PSA、10 g 無水硫酸鈉及400 mg C18 為凈化劑組合進(jìn)行分散固相萃取,樣品溶液澄清,基質(zhì)干擾較小,回收率較佳。
圖1 不同凈化條件對(duì)金剛烷胺回收率的影響Fig.1 Effects on the recoveries of amantadine with different purification conditions
為維持流動(dòng)相的低pH 保證金剛烷胺在流動(dòng)相中的穩(wěn)定溶解狀態(tài),本文擬采用0.1%甲酸或乙酸來控制流動(dòng)相的pH,試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)二者均可得到對(duì)稱、尖銳的峰形,但甲酸更利于金剛烷胺的離子化,可得到較高的檢測靈敏度,故實(shí)驗(yàn)中選擇用0.1%甲酸控制流動(dòng)相的pH,可以提高靈敏度,并且加入微量的NH4+可使峰型更尖銳、響應(yīng)更穩(wěn)定。最終本實(shí)驗(yàn)選擇5 mmol/L乙酸銨-0.1%甲酸水作為流動(dòng)相。
在ESI 模式下對(duì)1.0 mg/L 的金剛烷胺標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行全掃描得到分子離子峰,再通過優(yōu)化碰撞能量等參數(shù)得到子離子。金剛烷胺定量和定性子離子及相應(yīng)的質(zhì)譜參數(shù)見表2,在確定待測化合物監(jiān)測的母離子和子離子的基礎(chǔ)上,對(duì)各種待測化合物的噴霧電壓、毛細(xì)管溫度、鞘氣流速、電子管透鏡電壓、碰撞能量等條件進(jìn)行優(yōu)化,結(jié)果如實(shí)驗(yàn)部分所述。
由于空白樣品基質(zhì)溶液于金剛烷胺標(biāo)準(zhǔn)品的保留時(shí)間處有基質(zhì)峰,本方法采用配制基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液的方法,很好的消除了基質(zhì)影響,完全能滿足殘留檢測的要求,見圖2。
采用基質(zhì)加標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)工作曲線進(jìn)行外標(biāo)法定量,根據(jù)1.2 實(shí)驗(yàn)方法處理空白樣品,用不同濃度標(biāo)準(zhǔn)品溶液進(jìn)行定容、檢測,以峰面積和標(biāo)準(zhǔn)品濃度作圖,實(shí)驗(yàn)表明,金剛烷胺在0.2 μg/L~100.0 μg/L 范圍內(nèi)呈良好線性關(guān)系,回歸方程為Y=14069.30×X,R2大于0.997??紤]到基質(zhì)的復(fù)雜性及信噪比要求,經(jīng)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)確定本方法的檢出限(LOD)為0.6 μg/kg,定量限(LOQ)為2.0 μg/kg。
圖2 雞肝空白基質(zhì)和基質(zhì)中加入金剛烷胺的MRM 譜圖(2.0 μg/kg)Fig.2 MRM Chromatograms of blank chicken liver and spiked in blank sample with amantadine(2.0 μg/kg)
選取具有代表性的樣品基質(zhì):雞肉、雞肝、豬肉、豬肝,分別添加2.0、4.0、20.0 μg/kg 3 個(gè)水平濃度進(jìn)行添加回收試驗(yàn),每個(gè)水平測定6 次,采用外標(biāo)法定量,計(jì)算回收率和精密度結(jié)果見表3。結(jié)果表明本方法的回收率范圍為70.5%~100.1%,RSD 值小于10%,本方法有良好的精密度和準(zhǔn)確度,滿足分析要求。
表3 金剛烷胺的回收率和精密度(n=6)Table 3 Recoveries and relative standard deviations(RSDs)of amantadine(n=6)
為驗(yàn)證該方法的可靠性,從超市購買了雞肉、雞肝、雞蛋、豬肉、豬肝、豬肉干,6 種畜禽組織進(jìn)行測定,同時(shí)作質(zhì)控樣品。樣品均未檢出金剛烷胺藥物殘留,質(zhì)控樣品的回收率等指標(biāo)均達(dá)到分析要求,表明結(jié)果準(zhǔn)確可靠。
本文建立了分散固相萃取-高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法檢測金剛烷胺的方法。采用酸化乙腈溶液提取后進(jìn)行分散固相萃取凈化,提高了提取效率,減少了雜質(zhì)干擾,快速簡潔。在優(yōu)化了提取和凈化方法的同時(shí),采用配制基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液的方法,很好地消除了基質(zhì)影響,提高了檢測靈敏度,適用于禽畜組織中金剛烷胺定性、定量分析。
[1] 葛孝忠,應(yīng)黃慧,陳曉,等.金剛烷類藥物的研究進(jìn)展[J].中國醫(yī)藥工業(yè)雜志,2003,34(11):583-586
[2] 劉丹,范子宸,張瑛,等.金剛烷胺及其結(jié)構(gòu)類似物的研究進(jìn)展[J].中國藥師,2009,12(11):1640-1644
[3] 陸學(xué)勝,朱天夫,許敏,等.金剛烷胺對(duì)帕金森病患者角膜內(nèi)皮細(xì)胞損害作用的研究[J].世界臨床藥物,2010,31(7):417-421
[4] 葉金朝,葉菲.美多巴及金剛烷胺誘發(fā)精神分裂癥及下肢水腫病案分析[J].藥物流行病學(xué)雜志,2002,11(4):219-220
[5] 徐坤,侯雷,楊松濤,等.金剛烷胺修飾物對(duì)禽流感H5N1 病毒的抑制作用[J].吉林大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2007,33(5):863-866
[6] M Anastassiades,S J Lehotay,D Stajnbaher,et al.Fast and easy multiresidue method employing acetonitrile extraction/partitioning and“dispersive solid-phase extraction”for the determination of pesticide residues in produce[J].J AOAC Int,2003,86(2):412-431
[7] 孫亞真,鞏衛(wèi)東,張淑霞,等.QuEChERS 色質(zhì)聯(lián)用技術(shù)在食品農(nóng)藥多殘留檢測中的應(yīng)用與前景[J].農(nóng)產(chǎn)品加工·學(xué)刊,2012(2):89-92
[8] 袁雪嬋.QuEChERS 方法及其在食品農(nóng)藥多殘留分析中的應(yīng)用[J].中國食品添加劑,2009(2):144-148
[9] 高馥蝶,趙妍,邵兵,等.超高效液相色譜四極桿飛行時(shí)間質(zhì)譜法快速篩查牛奶中的農(nóng)藥和獸藥殘留[J].色譜,2012,30(6):560-567
[10] 王煉,黎源倩,王海波,等.基質(zhì)固相分散超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法同時(shí)測定畜禽肉和牛奶中20 種獸藥殘留[J].分析化學(xué),2011,39(2):203-207
[11] 王連珠,周昱,陳泳,等.QuEChERS 樣品前處理-液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定蔬菜中66 種有機(jī)磷農(nóng)藥殘留量方法評(píng)估[J].色譜,2012,30(2):146-153
[12] 吳劍威,徐榮,趙潤懷,等.QuEChERS-氣相色譜法快速檢測五十種中藥材中九種有機(jī)氯農(nóng)藥殘留的方法研究[J].分析科學(xué)學(xué)報(bào),2011,27(2):167-170
[13] 王亞男,牛書濤,賀小蔚,等.QuEChERS 法提取水稻土壤中的五氯酚[J].分析試驗(yàn)室,2010,29(4):73-76