張其安 申麗霞 盧德梅 楊少波
(1. 山東華康蜂業(yè)有限公司,日照 276500;2. 山東莒縣人民醫(yī)院,日照 276826)
1994年,Ash等(1994)在分子生物學(xué)研究結(jié)果的基礎(chǔ)上將11個種從芽孢桿菌屬中分離出來另立類芽孢桿菌屬,并將多粘類芽孢桿菌(Paenibacillus polymyxa)立為類芽孢桿菌屬的模式菌種[1]。大量的研究表明,類芽孢桿菌屬的某些細(xì)菌具有顯著的生防潛力,同時類芽孢桿菌還具有生長快、營養(yǎng)簡單、可生成具抗逆能力的芽孢等特點[2]。近幾年來,國內(nèi)外有關(guān)類芽孢桿菌應(yīng)用與動植物疾病生物防治的報道日益增多。
歐洲幼蟲腐臭病簡稱歐幼病,是蜜蜂幼蟲的一種細(xì)菌性消化道傳染病,在世界各地均有發(fā)生,具有傳播迅速、發(fā)病快的特點,中蜂(Apis cerana Cerana Fabricius)比意蜂(Apis mellifera ligustica Spinola)更容易受感染[3]。歐洲幼蟲腐臭病是由多種致病菌共同作用而引起的,但其主要病原是蜂房蜜蜂球菌(Melissococcus pluton)[4]。蜂房蜜蜂球菌是一種革蘭氏陽性菌,但有染色特性不穩(wěn)定,有時候可能為革蘭氏陰性菌,兼性厭氧[5-6]。蜂房蜜蜂球菌抵御不良環(huán)境的能力極強(qiáng),能在蜂尸上存活數(shù)年,在粉蜜里也能保持長久的毒性,所以歐洲幼蟲腐臭病是一種傳染性極強(qiáng)的蜜蜂傳染病。蜜蜂歐洲幼蟲腐臭病的防治方面的研究始于20世紀(jì)初,早期主要是以施用四環(huán)素、磺胺類抗生素為主[7]。隨著人們對無公害和綠色食品要求的與日俱增,蜂產(chǎn)品中多種抗生素殘留的檢測已經(jīng)成為許多國家蜂產(chǎn)品質(zhì)量檢測的必檢項目,美國、歐盟、日本等國家已禁止含有多種抗生素殘留的蜂產(chǎn)品進(jìn)入本國,這對我國蜜蜂歐洲幼蟲腐臭病的防治工作又提出了新的要求[8]。Paenibacillus brasilensis HK-1由本實驗室從蜂場土壤中分離獲得,該菌株對蜂房蜜蜂球菌、蜂房哈夫尼菌、幼蟲芽孢桿菌、蜜蜂球囊菌等常見的蜜蜂細(xì)菌病病原物具有較強(qiáng)的拮抗作用,且發(fā)酵性狀優(yōu)良[9]。本試驗研究了大孔吸附樹脂對Paenibacillus brasilensis HK-1菌株抗菌物質(zhì)的提取,為該菌株及其抗菌物質(zhì)在蜜蜂細(xì)菌疾病防治方面的應(yīng)用提供參考。
1.1.1 供試菌株
拮抗菌:Paenibacillus brasilensis HK-1由本實驗室分離鑒定
抗菌物質(zhì)效價指示菌:蜂房蜜蜂球菌(Melissococcus pluton)由本實驗室保存。
1.1.2 大孔吸附樹脂
AB-8、X-5、D3520、D4020、H103、Nka-9由南開大學(xué)提供。
1.1.3 培養(yǎng)基
菌株活化培養(yǎng)基:土豆 200g,牛肉膏 5.0g,葡萄糖 20g,瓊脂 15g,(NH4)2SO41.0g,MgSO41.0g,KH2PO40.6g, CaCO33.0g,蒸餾水1000mL。
菌株發(fā)酵培養(yǎng)基:土豆 200g,牛肉膏 5.0g,葡萄糖 20g,(NH4)2SO41.0g,MgSO41.0g,KH2PO40.6g,CaCO33.0g,蒸餾水 1000mL。
發(fā)酵液效價生物測定培養(yǎng)基:底層培養(yǎng)基:瓊脂 18 g,蒸餾水1000mL;上層培養(yǎng)基:NaCl 10g,蛋白胨 10g,酵母浸膏 5g,瓊脂 15g,蒸餾水1000mL,pH 6.8。
1.2.1 抗菌物質(zhì)效價的測定
生物檢測平板的制備:采用雙層平板法。底層:在直徑為90mm的無菌平皿中加入15mL融化的發(fā)酵液效價生物測定培養(yǎng)基。上層:取滅菌冷卻到50℃~55℃的上層培養(yǎng)基,加入3%的蜂房蜜蜂球菌菌懸液,按照10mL/皿加入培養(yǎng)皿中;冷凝后備用。
效價測定:采用牛津杯法[10]。在每個平板上以等距離均勻放置牛津杯(內(nèi)徑6mm±0.1mm,高10mm±0.1mm,外徑8mm±0.1mm)4個。向每個杯中準(zhǔn)確加入250μL不同濃度的抗菌物質(zhì)溶液,每個濃度設(shè)3個重復(fù)。37℃培養(yǎng)18 h后用游標(biāo)卡尺測量抑菌圈直徑。
1.2.2 抗菌物質(zhì)的發(fā)酵
發(fā)酵培養(yǎng)基經(jīng)121℃高壓滅菌20min,以2%的接種量將種子液接種到250mL三角瓶中。200r/min,28℃震蕩培養(yǎng)48h。發(fā)酵液100℃滅菌10min,4200r/min離心30min,取上清液備用。
1.3.1 大孔吸附樹脂吸附性能比較
取1.1.2節(jié)中處理好的大孔吸附樹脂1g/份,分別加入1.2.2節(jié)中HK-1菌株發(fā)酵液上清液10mL,150r/min震蕩吸附4h,測定發(fā)酵液原液、吸附殘液效價,計算大孔吸附樹脂對HK-1菌株抗細(xì)菌物質(zhì)的吸附率。每個處理2個重復(fù)。
1.3.2 大孔吸附樹脂解吸性能比較
取1.3.1節(jié)中篩選出的吸附性能優(yōu)良的大孔吸附樹脂1g/份,分別加入1.2.2節(jié)中HK-1菌株發(fā)酵液上清液10mL,150r/min振蕩吸附4h。然后分別用50%、75%的乙醇、甲醇和丙酮解吸劑,150r/min振蕩靜態(tài)解吸4h。測定發(fā)酵原液、解吸液、吸附殘液的效價,計算解吸率,比較各種大孔吸附樹脂的解吸性能。每個處理設(shè)置2個重復(fù)。
1.3.3 丙酮濃度對解吸效果的影響
以體積分?jǐn)?shù)為25%、50%、75%、90%的丙酮溶液為解吸劑,分別對吸附后的樹脂靜態(tài)解吸。測定發(fā)酵原液、解吸液、吸附殘液的效價,計算解吸率,比較不同濃度丙酮溶液的解吸效果。每個處理設(shè)置2個重復(fù)。
1.3.4 X-5樹脂飽和吸附量的測定
取篩選到的X-5樹脂1g/份,分別加入HK-1抗菌物質(zhì)粗物(發(fā)酵液上清經(jīng)以上篩選到的最佳吸附樹脂、解吸液吸附、解吸后,解吸液經(jīng)濃縮、冷凍干燥所得固體粉末為抗菌物質(zhì)粗物)5g/L的溶液5mL、10mL、20mL、30mL、40mL,150r/min振蕩吸附4h。測定抗菌物質(zhì)粗物溶液、吸附殘液的效價,計算樹脂的吸附量。每個處理設(shè)置2個重復(fù)。
1.3.7 90%丙酮溶液動態(tài)解吸曲線及動態(tài)解吸率的測定
X-5樹脂:提取液1:10(m/V),150r/min振蕩吸附4h。棄去上清液,樹脂用去離子水沖洗3次后裝入直徑16mm,柱長400mm的層析柱,先用3倍柱體積的30%丙酮溶液洗脫。然后用90%的丙酮溶液對進(jìn)行動態(tài)解吸。流速為1mL/min,用自動部分收集器分管收集解吸液,每10min收集一管,每管10mL,測定發(fā)酵原液、吸附殘液以及每管解吸液的效價,繪制解吸曲線并計算動態(tài)解吸率。
1.4.1 對熱的穩(wěn)定性
配制抗菌物質(zhì)粗物溶液(5g/L),分別于50℃、70℃、100℃水浴中處理10min、20min、40min、60min、80min、100min,牛津杯法測定其效價,比較抗菌物質(zhì)的效價變化。
1.4.2 抗菌物質(zhì)對酸堿的穩(wěn)定性
抗菌物質(zhì)粗物分別溶于pH為1.2、2.4、3.1、4.9、6.8、10.3和12.4的緩沖液溶液,室溫靜置12h,比較抗菌物質(zhì)效價變化。
1.4.3 對紫外線的穩(wěn)定性
抗菌物質(zhì)粗物水溶液置于紫外燈下40cm,分別輻照2h、4h、6h和8h,比較抗菌物質(zhì)效價變化。
以抗細(xì)菌活性物質(zhì)濃度的對數(shù)值為橫坐標(biāo),以抑菌圈直徑為縱坐標(biāo)制作的標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖1所示。可見,濃度的對數(shù)值與抑菌圈直徑呈線性關(guān)系,其決定系數(shù)R2=0.9935,可以滿足效價測定的要求。由此,可得到發(fā)酵液效價計算方程:Y=10(x+4.0913)/6.0594×n〔Y:發(fā)酵液效價(μg/mL);x:抑菌圈直徑(12.3mm 圖1 牛津杯法測定效價工作曲線 各種大孔吸附樹脂對HK-1抗菌物質(zhì)的吸附效果如圖2所示??梢钥闯?,大孔吸附樹脂X-5、AB-8、Nka-9對抗菌物質(zhì)吸附率達(dá)90%以上,其它幾種樹脂吸附性能較差。選擇X-5、AB-8、Nka-9樹脂繼續(xù)考察其解吸性能。 圖2 大孔吸附樹脂吸附性能比較 分別采用不同有機(jī)溶劑作為解吸劑對抗菌物質(zhì)進(jìn)行解吸。由圖3可以看出,同一種有機(jī)溶劑,濃度高的有機(jī)溶劑解吸效果優(yōu)于濃度低的有機(jī)溶劑;不同有機(jī)溶劑以75%的丙酮解吸效果最好。4種樹脂以X-5解吸效果最好,其靜態(tài)解吸率達(dá)68%。因此,選擇X-5為HK-1抗菌物質(zhì)的最佳吸附樹脂,進(jìn)一步篩選最佳解吸劑的濃度。 圖3 大孔吸附樹脂解吸性能比較 已篩選到的X-5樹脂為抗菌物質(zhì)的吸附樹脂,考察不同濃度丙酮對抗菌物質(zhì)的解吸效果。結(jié)果如圖4所示,丙酮濃度在40%~80%范圍內(nèi)解吸率逐漸升高,80%的丙酮解吸率最高,解吸率為73%。 圖4 丙酮濃度對解吸率的影響 以抗菌物質(zhì)粗物的質(zhì)量為橫坐標(biāo),吸附率為縱坐標(biāo),繪制X-5樹脂的吸附曲線,結(jié)果見圖5??梢钥闯?,隨著抗菌物質(zhì)粗物質(zhì)量的增加,吸附率逐漸降低,1g樹脂加入6mg抗菌物質(zhì)粗物時吸附率可達(dá)97.5%。試驗選取吸附率為97.5%時樹脂吸附的抗菌物質(zhì)的質(zhì)量為吸附量。經(jīng)測定X-5樹脂的飽和吸附量為5.85mg/g。 圖5 X-5樹脂對抗菌物質(zhì)的吸附量 以80%丙酮HK-1抗菌物質(zhì)進(jìn)行動態(tài)解吸。解吸曲線如圖6所示,解吸液中抗菌物質(zhì)濃度較為集中,解吸效果較好,經(jīng)計算各管的解吸率,結(jié)果總解析率為95.3%。這一結(jié)果說明,試驗篩選的樹脂和解吸劑均比較理想。 圖6 X-5樹脂的動態(tài)解吸曲線 利用微生物活體防治蜜蜂歐洲幼蟲腐臭病不僅有對其釋放風(fēng)險的擔(dān)憂,也受釋放技術(shù)及環(huán)境溫度、濕度等諸多因素的限制,所以研究者更期望從拮抗菌種提取活性物質(zhì)用于生物防治[11]。樹脂法提取活性物質(zhì)具有設(shè)備簡單、操作方便、生產(chǎn)周期短、能耗和成本低、無需添加輔料等優(yōu)點,利于工業(yè)化擴(kuò)大生產(chǎn)[12]。本研究采用大孔吸附樹脂X-5提取Paenibacillus brasilensis HK-1菌株發(fā)酵產(chǎn)生的抗菌物質(zhì),為該抗菌物質(zhì)的純化及其在蜜蜂歐洲幼蟲腐臭病防治方面的應(yīng)用提供了理論參考。 [1] 楊少波,劉訓(xùn)理. 多年類芽孢桿菌及其產(chǎn)生的生物活性物質(zhì)研究進(jìn)展[J]. 微生物學(xué)通報, 2008, 35(10): 1621-1625. [2] 魯紅學(xué), 周燚. 類芽孢桿菌在植物病害防治和環(huán)境治理中的應(yīng)用進(jìn)展[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2008, 36(30): 13244-13247. [3] 周婷, 馮峰, 董秉義. 中華蜜蜂的歐洲幼蟲腐臭病病原研究[J]. 昆蟲學(xué)報, 2000, 43: 104-108. [4] Govan V A, Brozel V, Allsopp M H, et al. A PCR Detection Method for Rapid Identification of Melissococcus pluton in Honeybee Larvae[J]. Applied Aand Environmental Microbiology, 1998, 64(5):1983-1985. [5] Alexander B, Philip S, David R, et al. The detection of Melissococcus pluton in honey bees (Apis mellifera) and their products using a hemi-nested PCR[J]. Apidologie, 2003, 34: 19-27. [6] Forsgren E, Cassel A, Imdorf A, et al. Distribution of Melissococcus plutonius in Honeybee Colonies with and without Symptoms of European Foulbrood [J]. Microb Ecol, 2005, 50: 369-374. [7] 周婷, 馮峰, 董秉義, 等. 中華蜜蜂的歐洲幼蟲腐臭病病原的藥物試驗研究[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報, 2001, 32(3): 283-288. [8] 張其安,王娟,楊少波. 蜜蜂細(xì)菌性疾病及其防治的研究進(jìn)展[J]. 中國蜂業(yè), 2011, 62: 25-30. [9] 張其安,王娟,楊少波. 一株蜜蜂 拮抗細(xì)菌的分離與鑒定[J]. 中國蜂業(yè), 2012, 63: 52-55. [10] 國家藥典委員會. 中華人民共和國藥典[M]. 北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2005:附錄84. [11] Klich M A, Lax A R, Bland J M, et al. Influence of iturin A on mycelial weight and aflatoxin production by asper-gilles parasiticus in shake culture [J]. Mycopathol ogia, 1993, 123: 35-38. [12] Ma CY, Tao GJ, Tang J, et al. Preparative separation and purification of rosavin in Rhodiola rosea by macroporous adsorption resins[J].Separation and Purification Technology, 2009, 69: 22-28.2.2 大孔吸附樹脂吸附性能的比較
2.3 大孔吸附樹脂解吸性能比較
2.4 丙酮濃度對解吸效果的影響
2.5 X-5樹脂飽和吸附量的測定
2.6 80%丙酮動態(tài)解吸曲線
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