金洲祥,王向昱
(溫州醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院 肝膽外科,浙江 溫州 325027)
合理的聯(lián)合用藥是腫瘤化療的基本原則,其目的是為了獲取藥物間的協(xié)同效應(yīng)。將各種化療藥物進行有機結(jié)合和多靶點治療以提高療效、降低毒性和克服耐藥成為當前腫瘤治療領(lǐng)域的一個新的研究熱點。目前對于晚期肝癌的藥物干預(yù)治療方案還是以5-氟尿嘧啶(5-FU)為主的綜合化療方案。5-FU本身不良反應(yīng)較大,長時間使用也存在耐藥性的問題,極大地限制了其在臨床上的大劑量應(yīng)用。因此尋求一種更有效的抗癌藥物或更有效的聯(lián)合用藥方案是提高肝癌臨床總體療效的關(guān)鍵。
有文獻報道三氧化二砷(arsenic trioxide,As2O3)在體外對肝癌細胞株有抑制增殖、誘導(dǎo)凋亡的作用,其機制是使肝癌細胞阻滯于S期,從而抑制細胞增殖[1-2],而5-FU是細胞周期特異性藥物,其抗肝癌作用主要是作用于S期細胞,因此,聯(lián)合用藥可能具有協(xié)同效應(yīng)。但是目前關(guān)于As2O3聯(lián)合5-FU應(yīng)用在肝癌治療中的相互作用關(guān)系鮮見報道,因此我們設(shè)計本實驗以研究體外As2O3聯(lián)合5-FU對小鼠肝癌細胞株H22增殖、凋亡的影響,為臨床上兩者聯(lián)合應(yīng)用治療肝癌提供實驗依據(jù)。
1.1 材料 小鼠肝癌H22細胞株購自南京凱基生物科技發(fā)展有限公司;0.1% As2O3溶液(亞砷酸)購于哈爾濱伊達藥業(yè)公司;5-FU注射液為天津金耀氨基酸有限公司產(chǎn)品;TUNEL試劑盒、RPMI 1640液體培養(yǎng)基購自南京凱基生物科技發(fā)展有限公司;四甲基偶氮唑鹽(MTT)試劑盒和二甲基亞砜(DMSO)均為南京凱基生物科技發(fā)展有限公司產(chǎn)品;10%胎牛血清、1% L-谷氨酰胺、100 U/mL青霉素、100μg/mL鏈霉素、0.25%胰酶消化液、EDTA消化液、3% H2O2、PBS均為杭州昊天生物技術(shù)有限公司產(chǎn)品。
1.2 MTT法檢測藥物對小鼠肝癌H22細胞生長的抑制作用
1.2.1 細胞培養(yǎng):小鼠肝癌H22細胞株接種于培養(yǎng)瓶中,在5% CO2、37 ℃及飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng),用含10%胎牛血清、1% L-谷氨酰胺、100 U/mL青霉素、100μg/mL鏈霉素的RPMI 1640培養(yǎng)液傳代培養(yǎng),24 h更換培養(yǎng)液1次,取傳代后處于對數(shù)生長期細胞用于實驗。細胞傳代方法按照文獻[3]介紹的方法。1.2.2 MTT法檢測藥物對小鼠肝癌H22細胞增殖率的影響:取對數(shù)生長期的H22細胞制成每毫升含5×104個細胞的懸濁液,加入96孔培養(yǎng)板(每孔細胞數(shù)為1×104個)中培養(yǎng)24 h后,參考有關(guān)文獻[4-5]來確定各實驗組的藥物濃度,分為對照組(不加藥物)、As2O3(終濃度分別為0.5、1.0和2.0μg/mL)組、5-FU(20 mg/L)組、As2O3(終濃度分別為0.5、1.0和2.0μg/mL)+5-FU(20 mg/L)組,按兩因素析因設(shè)計分為8組,每組設(shè)3復(fù)孔。放入37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)24、48及72 h后,每孔加MTT溶液(5 mg/mL)10μL,37 ℃繼續(xù)孵育4 h后,吸去孔內(nèi)培養(yǎng)液,每孔加100μL的DMSO,振蕩10 min,使著色劑充分溶解后用Quant型酶標儀(Bio-Tek公司)在單波長570 nm下測出各孔吸光度(OD)值。按下列公式計算細胞增殖抑制率:增殖抑制率(%)=(1-處理組平均OD值/對照組OD值)×100%。以上實驗重復(fù)3次。并計算藥物相互作用系數(shù)(CDI):CDI=AB/(A×B)(其中AB為兩藥聯(lián)合組與對照組OD值的比值,A或B是各單藥組與對照組OD值的比值)。如CDI<1,則兩藥作用性質(zhì)為協(xié)同;如CDI=1,則兩藥作用性質(zhì)為相加;如CDI>1,則兩藥作用性質(zhì)為拮抗[6-7]。
1.3 TUNEL熒光染色法檢測藥物對小鼠肝癌H22細胞凋亡率的影響 取對數(shù)生長期H22細胞接種于96孔板中,每孔細胞數(shù)為1×106個。培養(yǎng)24 h后棄去上清液,分組方法同1.2.2。37 ℃培養(yǎng)箱內(nèi)放置24、48、72 h后,0.25%胰蛋白酶消化收集各組細胞。參照TUNEL試劑盒說明書操作,檢測細胞凋亡率。結(jié)果判斷標準:用熒光顯微鏡觀察,凋亡細胞的細胞核著綠色,并呈固縮狀或碎片狀。每片觀察5個高倍視野,細胞凋亡率用100個細胞中凋亡細胞個數(shù)百分比來表示。以上各濃度組均為3個復(fù)孔,最后結(jié)果為3個復(fù)孔的均值。上述實驗重復(fù)3次。
1.4 統(tǒng)計學(xué)處理方法 用SPSS 10.0軟件分析結(jié)果。實驗數(shù)據(jù)均用±s表示,單處理因素各組間樣本均數(shù)的多重比較采用單因素方差分析和LSD-t檢驗,兩組比較采用成組t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 MTT法檢測藥物對H22細胞增殖的影響 結(jié)果顯示:在0.5~2.0μg/mL濃度范圍內(nèi)As2O3對小鼠肝癌H22細胞增殖呈明顯的抑制作用,且有時間-濃度依賴性,隨藥物濃度增加和作用時間的延長其抑制作用也增加;不同濃度的As2O3與5-FU聯(lián)合應(yīng)用后對小鼠肝癌H22細胞增殖的抑制作用均較各相應(yīng)單藥組明顯增加(P<0.01)。兩因素析因設(shè)計分析提示,As2O3聯(lián)合5-FU處理小鼠肝癌H22細胞24、48和72 h時兩藥交互作用有意義(P<0.01)。具體見表1、圖1-2。
兩藥聯(lián)合作用時,計算兩藥CDI值來判斷合用效果。結(jié)果表明:As2O3與5-FU聯(lián)合作用H22細胞24和48 h時,兩藥具有協(xié)同作用(CDI<1),作用72 h時,兩者之間為相加作用(CDI=1)。
表1 各組H22細胞的增殖抑制率(±s,%)
表1 各組H22細胞的增殖抑制率(±s,%)
作用時間(h) 5-FU(mg/L) As2O3(μg/mL)0 0.5 1.0 2.0 24 0 0 4.72±0.46 27.61±0.58 30.00±0.13 20 18.50±0.60 34.82±0.14 40.25±1.37 47.78±0.24 48 0 0 22.50±0.41 30.56±0.44 39.13±0.72 20 26.51±0.52 40.31±0.35 47.75±0.54 53.23±0.70 72 0 0 34.31±0.40 43.91±0.34 53.41±0.61 20 37.40±0.950 51.75±0.64 55.98±0.10 61.07±0.21
圖1 不同濃度As2O3對小鼠肝癌H22細胞株增殖的影響
圖2 不同濃度As2O3聯(lián)合5-FU對小鼠肝癌H22細胞株增殖的影響
2.2 TUNEL熒光染色法檢測藥物對H22細胞株凋亡的影響 單用As2O3或5-FU處理H22細胞,或經(jīng)不同濃度As2O3聯(lián)合5-FU作用24、48、72 h后,在熒光顯微鏡下均可觀察到H22細胞出現(xiàn)細胞凋亡的典型形態(tài)學(xué)改變,主要表現(xiàn)為凋亡細胞核染色質(zhì)著綠色并呈固縮狀或碎片狀。半定量計數(shù)結(jié)果表明,不同濃度As2O3聯(lián)合5-FU對H22細胞的凋亡誘導(dǎo)率均較各相應(yīng)的單藥組明顯增強,其誘導(dǎo)凋亡作用與藥物亦呈明顯的量效與時效關(guān)系。兩因素析因設(shè)計分析顯示,As2O3和5-FU處理H22細胞24、48和72 h,兩藥誘導(dǎo)細胞凋亡均有交互作用,P<0.01(見表2、圖3-4)。
目前研究認為,腫瘤的發(fā)生和發(fā)展不僅是腫瘤細胞增殖和分化異常所致,而且還是腫瘤細胞凋亡異常的結(jié)果[8]。因此,抑制腫瘤細胞增殖,誘導(dǎo)腫瘤細胞分化和凋亡,對臨床治療腫瘤有指導(dǎo)意義。臨床上化療是治療癌癥的一種重要的手段,通常為增強療效,都是聯(lián)合使用幾種藥物。合用具有不同作用的幾種藥物,可以殺死更多的癌細胞并可降低人體對某種特定藥物產(chǎn)生耐藥性的可能,同時以幾種方式攻擊癌細胞,比單用一種藥物更有療效。
5-FU屬細胞周期特異性藥物,主要作用于S期細胞,其作用機制是在體內(nèi)轉(zhuǎn)變?yōu)榉遴奏っ撗鹾塑账幔‵dUMP),在輔因子5,10-亞甲基四氫葉酸(CH2FH4)的參與下,代替正常的脫氧核苷酸(dUMP),與胸苷酸合成酶(TS)形成三聯(lián)復(fù)合物,使TS失活,從而阻斷dUMP甲基化轉(zhuǎn)變?yōu)槊撗跣剀账幔╠TMP)過程,影響細胞DNA的合成(S期),最終導(dǎo)致細胞死亡[9]。As2O3俗稱砒霜,是一種傳統(tǒng)中藥,19世紀,西方國家曾有人用砷劑(如含As2O3的Fowlers液)口服治療白血病。20世紀70年代我國學(xué)者首先發(fā)現(xiàn)其治療急性早幼粒細胞白血病(APL)效果顯著,并取得了較好的臨床療效,其作用機制是誘導(dǎo)APL細胞凋亡而抑制腫瘤生長[10]。近年來有報道稱,As2O3在體外對人的肝癌細胞株有抑制增殖、誘導(dǎo)凋亡、調(diào)控細胞周期等作用[1-2,11-12]。有研究證實As2O3較某些化療藥物具有更強的誘導(dǎo)肝癌細胞凋亡的效應(yīng)[13]。砷劑引起細胞凋亡的可能機制是:砷可直接與蛋白質(zhì)的巰基結(jié)合,影響巰基酶的活性,使蛋白質(zhì)滅活,引起細胞代謝異常,發(fā)生細胞凋亡[14];還能下調(diào)抑凋亡基因bcl-2,增加促凋亡基因bax的表達以及改變兩者之間的比例,促使Fas基因的表達增強,促進其凋亡[15]。劉琳等[1]研究發(fā)現(xiàn),As2O3選擇性誘導(dǎo)人肝癌細胞QGY-7701和QGY-7703凋亡,細胞周期延長,細胞集中在S期。
表2 各組H22細胞的凋亡率(±s,%)
表2 各組H22細胞的凋亡率(±s,%)
作用時間(h) 5-FU(mg/L) As2O3(μg/mL)0 0.5 1.0 2.0 24 0 1.95±0.17 14.20±0.38 25.38±0.37 31.11±0.40 20 35.04±0.79 44.92±0.60 53.25±0.60 61.22±0.42 48 0 2.01±0.12 20.25±0.33 40.10±0.38 59.36±0.32 20 60.00±0.44 66.93±0.51 74.72±0.53 85.34±0.44 72 0 2.31±0.19 22.07±0.10 42.16±0.64 62.66±0.28 20 64.42±1.05 69.66±0.40 78.02±0.13 87.67±0.93
圖3 各組H22細胞凋亡情況(TUNEL,×200)
圖4 不同濃度As2O3單獨或聯(lián)合20 mg/L 5-FU作用48 h后細胞凋亡率
目前關(guān)于聯(lián)合As2O3與其他抗腫瘤藥物體外殺傷肝癌細胞的協(xié)同作用的機制國內(nèi)外尚鮮見文獻報道。根據(jù)抗癌藥物的敏感標準,藥物的敏感性與其抑制腫瘤細胞增殖、誘導(dǎo)凋亡發(fā)生率有關(guān),抑制腫瘤細胞增殖的能力或誘導(dǎo)癌細胞凋亡的閾值與化療效果有著某種內(nèi)在聯(lián)系[16]。因此本實驗研究觀察了體外As2O3與5-FU單用和聯(lián)合處理小鼠肝癌H22細胞后,測定抑制腫瘤細胞增殖和誘導(dǎo)凋亡的能力,探討體外聯(lián)合用藥的特性,為進一步的體內(nèi)實驗提供可行性依據(jù)。
本實驗采用MTT法觀察As2O3聯(lián)合5-FU對小鼠肝癌H22細胞增殖的影響。結(jié)果證明,在0.5~2.0μg/mL濃度范圍內(nèi)As2O3對小鼠肝癌H22細胞呈明顯的抑制增殖作用,與近年來的相關(guān)報道[17]相一致。不同濃度的As2O3與5-FU聯(lián)合作用,對小鼠肝癌H22細胞的抑制增殖作用均較相同時間內(nèi)單用其中任何一種藥物時明顯增強,且隨著作用時間的延長和藥物濃度增加,作用效果也顯著增加。兩因素析因設(shè)計分析顯示,As2O3聯(lián)合5-FU處理小鼠肝癌H22細胞24、48和72 h,兩藥均有交互作用(P<0.01)。根據(jù)藥物受體動力學(xué)規(guī)律,若兩藥在任何劑量條件下合用均超過其中強藥的最大反應(yīng),則兩藥可能作用于不同受體。結(jié)合本實驗中As2O3與5-FU同時合用后對小鼠肝癌H22細胞的增殖抑制率明顯高于單獨使用,提示此兩藥在體外可能通過作用于不同的受體對腫瘤細胞產(chǎn)生殺傷作用。
CDI評價顯示,聯(lián)合用藥24和48 h時,作用性質(zhì)為協(xié)同;聯(lián)合用藥72 h時,作用性質(zhì)為相加。以上分析提示,在一定時間內(nèi)As2O3與5-FU合用后對小鼠肝癌H22細胞的增殖抑制作用明顯提高,兩者具有協(xié)同作用,藥物在不同時間相互作用的性質(zhì)不同,其機制有待進一步深入研究。
本實驗研究發(fā)現(xiàn),體外As2O3在0.5~2.0μg/mL 濃度范圍內(nèi)對小鼠肝癌H22細胞呈明顯的誘導(dǎo)凋亡作用。不同濃度的As2O3與5-FU聯(lián)合作用后,誘導(dǎo)小鼠肝癌H22細胞凋亡作用均較單用其中一藥物時增強,且隨著作用時間的延長和藥物濃度增加,作用效果也顯著增加。兩因素析因設(shè)計分析顯示,As2O3聯(lián)合5-FU處理H22細胞24、48和72 h,兩藥均有交互作用(P<0.01)。這說明As2O3能誘導(dǎo)小鼠肝癌H22細胞凋亡。聯(lián)合5-FU后能顯著提高細胞凋亡率,為我們下一步對體內(nèi)移植瘤影響的研究提供了理論和實驗依據(jù)。
[1] 劉琳, 王錦洪, 陳惠英, 等. 三氧化二砷選擇性誘導(dǎo)人肝癌細胞凋亡及相關(guān)基因的實驗研究[J]. 中華肝臟病雜志, 2000,8(6): 367-369.
[2] 余桂芳, 嚴躍紅, 陳益民. 三氧化二砷對人肝癌細胞生長及其侵襲轉(zhuǎn)移能力的影響[J]. 疑難病雜志, 2011, 10(4): 293-295.
[3] Cai J, Zhao XL, Liu AW, et al. Apigenin inhibits hepatoma cell growth through alteration of gene expression patterns[J]. Phytomedicine, 2011, 18(5): 366-373.
[4] Zhu Z, Luo Z, Li Y, et al. Human inhibitor of growth 1 inhibits hepatoma cell growth and influences p53 stability in a variant-dependent manner[J]. Hepatology, 2009, 49(2): 504-512.
[5] 李鵬, 毛勤生, 薛萬江, 等. FOXO3a在三氧化二砷誘導(dǎo)肝癌HepG2細胞周期阻滯中的作用[J]. 蘇州大學(xué)學(xué)報, 2011, 31(2): 188-192.
[6] 任瑋瑋, 李弘, 張洹. 三氧化二砷對肝癌BEL-7402細胞生長及端粒酶活性的影響[J]. 暨南大學(xué)學(xué)報: 醫(yī)學(xué)版, 2003, 4(2):25-27.
[7] 金洲祥, 李永國, 童洪飛. 白藜蘆醇體外抑制人胰腺癌細胞增殖的實驗研究[J]. 溫州醫(yī)學(xué)院學(xué)報, 2007, 37(5): 445-448.
[8] 馬麗, 陳旭. 失巢凋亡與腫瘤關(guān)系的研究進展[J]. 山東醫(yī)藥,2012, 52(12): 98-100.
[9] 張厚莉, 裴可靈, 崔淑香. 5-FU類藥物抗癌新調(diào)控機制研究進展[J]. 中華腫瘤防治雜志, 2012, 19(18): 1437-1440.
[10]Soignet SL, Maslak P, Wang ZG, et al. Complete remission after treatment of acute promyelocytic leukemia with arsenic trioxide[J]. N Engl J Med, 1998, 339(19): 1341-1348.
[11] Cui L, Zhang S, Zhang W, et al. Arsenic trioxide and promyelocytic leukemia protein-adenovirus synergistically inhibit in vitro and in vivo growth of a hepatoma cell line[J]. Oncol Res, 2010, 18(7): 305-314.
[12]Wang L, Zhang J, An Y, et al. A study on the thermochemotherapy effect of nanosized As2O3/MZF thermosensitive magnetoliposomes on experimental hepatoma in vitro and in vivo[J]. Nanotechnology, 2011, 22(31): 315-317.
[13] 李志紅, 王志明, 穆拉德. 三氧化二砷與阿霉素對人肝癌細胞株HepG2中survivin表達的影響[J]. 中國普通外科雜志,2005, 14(6): 441-444.
[14] 陳惠英, 王為, 秦叔逵. 三氧化二砷對人肝癌細胞株VEGF表達的影響[J]. 臨床腫瘤學(xué)雜志, 2000, 5(4): 封2.
[15] Zhong F, Zhang S, Shao C, et al. Arsenic trioxide inhibits cholangiocarcinoma cell growth and induces apoptosis[J].Pathol Oncol Res, 2010, 16(3): 413-420.
[16] 崔永安, 秦叔逵, 陳惠英, 等. 三氧化二砷對肝癌誘導(dǎo)血管內(nèi)皮細相關(guān)基因蛋白表達的影響[J]. 世界華人消化雜志,2005,13(9): 1142-1144.
[17]Lu YY, Zhou RL. Mechanism of enhanced invasiveness of human hepatocellular carcinoma by integrinα6β1[J]. Chin J Oncol, 2000, 22(4): 287-289.