摘要:脂肪酶是生物脂肪代謝過(guò)程中的重要酶系,在酶工程中具有重要應(yīng)用價(jià)值。本研究利用花生未成熟種子的cDNA文庫(kù),克隆了3種脂肪酶基因。序列分析表明,花生3種脂肪酶均具有保守的氨基酸序列和催化活性位點(diǎn),分屬不同的脂肪酶家族。利用半定量RT-PCR對(duì)花生3種脂肪酶進(jìn)行表達(dá)研究表明,它們?cè)诟鹘M織中的表達(dá)模式各不相同,其中AhLipase2在種子萌發(fā)時(shí)期的子葉中表達(dá)量高,可能起到分解儲(chǔ)藏油脂,為幼苗生長(zhǎng)提供營(yíng)養(yǎng)的作用。
關(guān)鍵詞:花生;脂肪酶;基因克??;表達(dá)分析
中圖分類(lèi)號(hào):Q785文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)號(hào):A文章編號(hào):1001-4942(2013)01-0001-08
三酰甘油脂肪酶廣泛存在于生物體中,其主要功能是將三酰甘油(TAG)水解成甘油和游離的脂肪酸,同時(shí)具有水解和轉(zhuǎn)?;幕钚浴T谟土献魑锓N子萌發(fā)過(guò)程中,種子儲(chǔ)藏油脂的分解為幼苗生長(zhǎng)提供能量和碳骨架。脂肪酶催化脂肪分解的第一步反應(yīng),對(duì)于種子萌發(fā)和萌發(fā)后幼苗的生長(zhǎng)具有重要意義。油料作物種子在儲(chǔ)藏過(guò)程中因?yàn)閿D壓等原因可能引起脂肪分解的啟動(dòng),導(dǎo)致游離脂肪酸的積累,也是脂肪酶作用的結(jié)果,這些游離脂肪酸的氧化和降解作用導(dǎo)致食物的酸敗降低種子質(zhì)量,并且影響了種子提取的食用油的質(zhì)量。脂肪酶不僅是生物生理過(guò)程的重要酶系,還具有重要的工業(yè)利用價(jià)值。多種真菌和細(xì)菌來(lái)源的脂肪酶被分離純化,并廣泛應(yīng)用于去垢劑、食品、造紙、有機(jī)合成、生物催化等方面[1]。
脂肪酶是脂肪代謝的重要酶系。在種子形成后期,TAG被儲(chǔ)存在種子油體中,由磷脂單分子層包被,脂肪酶只有附著在油水分界面時(shí)才會(huì)起作用[2]。種子萌發(fā)時(shí)期,磷脂酶使油體的磷脂單分子層產(chǎn)生缺陷,使脂肪酶能夠與TAG底物結(jié)合[3]。三酰甘油脂肪酶能夠在油/水表面將TAG水解成自由的脂肪酸和甘油,自由脂肪酸進(jìn)入乙醛酸循環(huán)體,最終轉(zhuǎn)變成葡萄糖,為幼苗初期的生長(zhǎng)提供能量[4]。但脂肪酶與脂肪相互作用的機(jī)理還不甚清楚,是脂肪代謝研究的重要問(wèn)題[5]。在植物中,從玉米、蓖麻 (Ricinus communis)和紫苑草 (Vernonia galamensis)等種子中已經(jīng)純化出脂肪酶[6,7]。近年來(lái),一些在植物中編碼三酰甘油脂肪酶活性蛋白的基因被克隆[8~11]。對(duì)于植物來(lái)源的脂肪酶,一般根據(jù)N端序列可以將其分為三類(lèi),第一類(lèi)存在于葉綠體中,第二類(lèi)缺少N端信號(hào)序列,可能分布于胞質(zhì)溶膠,第三類(lèi)分布于線粒體中[12]。
目前商業(yè)化的脂肪酶主要來(lái)源于微生物,而植物脂肪酶具有潛在的重要價(jià)值,如利用植物脂肪酶來(lái)轉(zhuǎn)化植物油脂,生產(chǎn)生物柴油等[13]。花生是重要的油料作物,種子含油量高達(dá)50%以上,其中的三酰甘油為種子萌發(fā)和幼苗生長(zhǎng)提供了充足的養(yǎng)分,脂肪酶在種子發(fā)育和萌發(fā)過(guò)程中起重要的作用。另外,脂肪酶還關(guān)系到花生的儲(chǔ)存和籽粒的品質(zhì),對(duì)下游加工具有重要影響。本實(shí)驗(yàn)室已經(jīng)對(duì)花生脂肪酸合成過(guò)程的基因進(jìn)行了詳細(xì)分析[14~16],本研究對(duì)脂肪降解酶基因進(jìn)行克隆和分析,為全面了解花生油脂代謝奠定基礎(chǔ)。
1材料與方法
11植物材料
本研究以大田種植的魯花14號(hào)花生品種為材料,收集不同發(fā)育時(shí)期的種子,在液氮中速凍,保存于-80℃超低溫冰箱中,用于RNA的提取和cDNA文庫(kù)的構(gòu)建。在盆栽條件下取萌發(fā)7天的花生子葉和萌發(fā)15天的真葉、莖、根,從大田生長(zhǎng)的花生植株上收集花、果針和不同發(fā)育時(shí)期的種子在液氮中速凍,保存于-80℃超低溫冰箱中,用于RNA提取和基因表達(dá)的研究。
12試驗(yàn)方法
121文庫(kù)構(gòu)建和EST測(cè)序用于花生cDNA文庫(kù)構(gòu)建的mRNA來(lái)源于不同發(fā)育階段的花生未成熟種子。200~500 mg花生種子用于總RNA 的提取,試驗(yàn)方法按照RNAgent 試劑盒(Promega) 說(shuō)明進(jìn)行。mRNA 的分離和純化按照PolyATtract mRNA Isolation Systems 試劑盒(Promega) 進(jìn)行。cDNA的合成和文庫(kù)構(gòu)建按Stratagene pBluescript II cDNA文庫(kù)構(gòu)建試劑盒進(jìn)行。從文庫(kù)中隨機(jī)挑取克隆,用EZNA Plasmid Minipreps DNA Purification System(Omega Bio-Tek, USA) 制備質(zhì)粒DNA。純化的質(zhì)粒DNA用作模板,以T3或T7通用引物用BigDye Terminator v31 Cycle Sequencing Kit (ABI) 在ABI 3730XL 測(cè)序儀上進(jìn)行測(cè)序。
122花生脂肪酶基因的克隆及序列分析通過(guò)測(cè)序獲得大量花生EST序列。將含有較多不可讀堿基的低質(zhì)量序列、長(zhǎng)度小于300 bp 的序列、載體序列以及引物序列去除。用Cap3軟件對(duì)EST 序列聚類(lèi)分析。將獲得的contig和單個(gè)的EST 序列用BlastX 在最新NCBI 數(shù)據(jù)庫(kù)中(http://wwwncbinlmnihgov/BLAST/)進(jìn)行比對(duì)注釋。用Lasergene SeqMan II Module (DNAStar) (http://www DNAStarcom) 進(jìn)行編碼序列的預(yù)測(cè)。多序列比較用ClustalW183 software (http://wwwchembnetorg/software/ClustalWhtml) 進(jìn)行。在不同蛋白序列比較中不同顏色氨基酸殘基的標(biāo)出用BoxShade program (http://wwwchembnetorg/software/BOX_formhtml) 進(jìn)行。
花生脂肪酶亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)使用TargetP11 Server (http://wwwcbsdtudk/services/ TargetP/)和 WoLF PSORT(http://wolfpsortorg/)。
123花生脂肪酶基因的表達(dá)分析從花生根、莖、葉、花、果針、種子以及種子萌發(fā)過(guò)程中的子葉中提取總RNA,以5 μg總RNA為模板,用PrimeScript 1st Strand cDNA Synthesis 試劑盒(TaKaRa)合成第一鏈cDNA。根據(jù)克隆的花生脂肪酶基因序列設(shè)計(jì)基因特異性引物,以cDNA 為模板擴(kuò)增目的基因片段,以花生actin 基因作為陽(yáng)性對(duì)照和模板加樣參考。
2結(jié)果與分析
21花生脂肪酶cDNA序列的克隆
從花生未成熟種子cDNA 文庫(kù)中隨機(jī)挑選克隆,提取質(zhì)粒DNA,以T3和T7通用引物進(jìn)行大規(guī)模EST測(cè)序。對(duì)獲得的近 20 000條花生EST進(jìn)行聚類(lèi)分析,將獲得的contig群和singleton與NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中的序列比較,進(jìn)行初步功能注釋。其中3條EST與數(shù)據(jù)庫(kù)中擬南芥等植物的脂肪酶基因有高度的同源性,且含有完整的開(kāi)放讀碼框,分別命名為AhLipase1 (GenBank登錄號(hào): GU902981),AhLipase2 (GenBank登錄號(hào): GU902982),AhLipase3 (GenBank登錄號(hào): GU902983)。AhLipase1基因ORF長(zhǎng)度2 085 bp,編碼蛋白長(zhǎng)度695 aa,相對(duì)分子量783 kD,預(yù)測(cè)的等電點(diǎn)(pI, isoelectric point)為688;AhLipase2基因ORF長(zhǎng)度1 248 bp,編碼蛋白長(zhǎng)度416 aa,相對(duì)分子量457 kD,預(yù)測(cè)的pI為660;AhLipase3基因ORF長(zhǎng)度1 029 bp,編碼蛋白長(zhǎng)度343 aa,相對(duì)分子量382 kD,預(yù)測(cè)的pI為848。各基因的開(kāi)放讀碼框和對(duì)應(yīng)編碼蛋白的序列如圖1所示。
花生3個(gè)脂肪酶蛋白間的差異較大,相互之間的相似性低于50%,而與GenBank中蛋白比對(duì)結(jié)果表明均屬于脂肪酶:AhLipase1與蓖麻(EEF39083)和毛果楊(EEE98509)脂肪酶蛋白相似性達(dá)74%;AhLipase2與苜蓿脂肪酶蛋白(AAR29056)相似性達(dá)81%。AhLipase3與蓖麻的另一脂肪酶蛋白(EEF51361)相似性達(dá)83%,與苜蓿的一個(gè)未知蛋白(ACJ85575)最為相近,相似性達(dá)89%。所以,預(yù)測(cè)花生的3種脂肪酶分別屬于不同的脂肪酶類(lèi)型。
22花生脂肪酶序列分析
不同生物的脂肪酶蛋白均包含10個(gè)氨基酸組成的保守序列位點(diǎn):[LIV]-X-[LIVAFY]- [LIAMVST]-G-[HYWV]-S-X-G-[GSTAC],此基序中的絲氨酸為脂肪酶的活性位點(diǎn),花生3種脂肪酶蛋白均含有此保守序列位點(diǎn)(圖1)。而3種脂肪酶活性位點(diǎn)的氨基酸組成有所不同:AhLipase1為L(zhǎng)QFTGHSLGG,AhLipase2為PHYVGHSLGT,AhLipase3為IWLAGHSLGS。
根據(jù)推導(dǎo)的花生3種脂肪酶蛋白序列,使用TargetP 軟件對(duì)花生脂肪酶的亞細(xì)胞定位進(jìn)行研究,預(yù)測(cè)結(jié)果表明:花生AhLipase1氨基端具有質(zhì)體轉(zhuǎn)運(yùn)肽,轉(zhuǎn)運(yùn)肽由40個(gè)氨基酸組成,相對(duì)分子量約為42 ku,轉(zhuǎn)運(yùn)肽切割位點(diǎn)預(yù)測(cè)在R和S之間(圖1);AhLipase2 可能為分泌型蛋白,參與次生代謝過(guò)程,氨基端可能具有24個(gè)氨基酸組成的信號(hào)肽,信號(hào)肽切割位點(diǎn)預(yù)測(cè)在G和S之間(圖1);AhLipase3 氨基端無(wú)轉(zhuǎn)運(yùn)肽,可能存在于細(xì)胞質(zhì)中。
23花生脂肪酶與其他植物來(lái)源的脂肪酶蛋白序列比較
在GenBank蛋白保守結(jié)構(gòu)域數(shù)據(jù)庫(kù)檢索分析表明,3種花生脂肪酶都屬于酯酶和脂肪酶蛋白(Esterases and lipases)超級(jí)家族,均具有Lipase class 3 (Pfam 登錄號(hào)PF01764) 保守結(jié)構(gòu)域。該保守區(qū)域包括一個(gè)由Ser-Asp-His/Glu 組成的三聯(lián)體催化活性中心,該活性位點(diǎn)包埋在蛋白結(jié)構(gòu)內(nèi)部,由一個(gè)“蓋子”所覆蓋,使其不能接近底物;當(dāng)?shù)鞍赘街谟退缑鏁r(shí),“蓋子”會(huì)打開(kāi),使脂類(lèi)底物接近活性位點(diǎn)。其中的絲氨酸活性位點(diǎn)位于保守序列 [LIV]-X-[LIVFY]-[LIVMST]-G-[HYWV]-S-X-G-[GSTAC]中(圖1),在AhLipase1中,活性位點(diǎn)分別位于:Ser-460、Asp-521 和His-609,AhLipase1保守區(qū)與其他植物脂肪酶的保守區(qū)相似性很高,10個(gè)氨基酸的保守序列與蓖麻和楊樹(shù)中的序列完全相同,其他活性位點(diǎn)周?chē)陌被嵝蛄幸埠鼙J兀▓D2A)。在AhLipase2中,活性位點(diǎn)分別位于:Ser-187、Asp-266和His-305,其保守序列與其他植物中的對(duì)應(yīng)序列相似,但保守性不如Lipase1中高(圖2B),10個(gè)氨基酸的保守序列的第一位為脯氨酸,不屬于保守序列模式中的典型氨基酸殘基,與大多數(shù)同源序列也不同,但與水稻(BAD09017)(圖2B)、高粱(XP_0022444703)和二穗短柄草(Brachypodium distachyon,XP_003572437)等植物的相應(yīng)氨基酸相同。在AhLipase3中,活性位點(diǎn)分別位于:Ser-164、Asp-254和His-302,與其他植物同源蛋白比較表明,活性位點(diǎn)及其周?chē)男蛄休^保守(圖2C)。
選擇與花生3種脂肪酶同源性較高的其他植物來(lái)源的24個(gè)脂肪酶蛋白進(jìn)行比較,進(jìn)化樹(shù)顯示,在單子葉和雙子葉植物中均有三種脂肪酶的同源蛋白。這些蛋白明顯分為三類(lèi),其中AhLipase1與AhLipase3所在的大類(lèi)親緣關(guān)系較近。AhLipase1與蓖麻和楊樹(shù)的兩個(gè)蛋白最為相似;AhLipase2與擬南芥的一個(gè)蛋白最相似,與豆科的苜蓿和大豆的兩個(gè)蛋白也較為相似;AhLipase3所在的大類(lèi)中,雙子葉植物和單子葉植物中的脂肪酶明顯分為兩類(lèi),AhLipase3與苜蓿的兩種脂肪酶蛋白最相似(圖3)。 24花生脂肪酶表達(dá)分析
對(duì)花生中3種脂肪酶基因表達(dá)研究表明,AhLipase1在種子發(fā)育過(guò)程中高表達(dá),在花生其它組織中表達(dá)量很低,在種子萌發(fā)時(shí)期的子葉中不表達(dá);結(jié)合轉(zhuǎn)運(yùn)肽預(yù)測(cè)的結(jié)果,AhLipase1可能在質(zhì)體上起作用,參與三酰甘油合成與分解的動(dòng)態(tài)過(guò)程。AhLipase2在種子萌發(fā)過(guò)程中高表達(dá),在花和種子發(fā)育不同時(shí)期也有表達(dá),在果針中有微弱表達(dá),而在營(yíng)養(yǎng)器官根、莖、葉中幾乎不表達(dá)。AhLipase3在各種組織中均有表達(dá),在果針和根中的表達(dá)量相對(duì)較高(圖4)。比較花生3種脂肪酶在RNA水平的表達(dá)模式可以看出,脂肪酶參與花生生長(zhǎng)的全過(guò)程,不同的脂肪酶分工不同,AhLipase2最有可能參與到三酰甘油的分解,為幼苗生長(zhǎng)提供能量。
3討論
隨著基因工程的發(fā)展,近年來(lái)已有多種植物來(lái)源的脂肪酶基因被克隆。但現(xiàn)有的脂肪酶還不能達(dá)到工業(yè)、農(nóng)業(yè)等應(yīng)用的要求,克隆新的脂肪酶基因,改良其性質(zhì)使其高效表達(dá),滿(mǎn)足工業(yè)、農(nóng)業(yè)應(yīng)用的要求是脂肪酶研究的重要內(nèi)容。本研究克隆的AhLipase2基因預(yù)測(cè)參與到花生種子萌發(fā)時(shí)期降解存儲(chǔ)的油脂,具有生物和工業(yè)研究的價(jià)值。
本研究從花生種子中克隆了3種花生脂肪酶基因,三者序列差異很大,在其他植物中也存在他們各自的同源序列,其RNA水平在不同組織中也各不相同,證明不同的脂肪酶參與到花生生長(zhǎng)發(fā)育的各個(gè)時(shí)期?;ㄉN子含油量高,但不耐儲(chǔ)藏,儲(chǔ)藏過(guò)程中油脂的降解使游離脂肪酸含量增高,導(dǎo)致酸敗使花生口味下降,影響花生油的質(zhì)量?;ㄉ久冈谟椭纸獾牡谝徊狡鹱饔?,研究其作用機(jī)理和調(diào)控因素將為減少花生收后損失奠定理論基礎(chǔ)。
植物中的脂肪酸以多種形式存在,如儲(chǔ)藏的甘油三酯和組成細(xì)胞膜的磷脂,這些脂類(lèi)分解由不同的脂肪酶完成,因此,植物中的脂肪酶組成一個(gè)大的家族,其序列上的差異決定了功能和底物的不同。本研究克隆的脂肪酶是從花生種子cDNA文庫(kù)中得到的,參與種子發(fā)育和萌發(fā)等過(guò)程,花生中可能還存在其他在種子中不表達(dá)或表達(dá)量低的脂肪酶,需要對(duì)這些脂肪酶進(jìn)行全面的克隆分析,并對(duì)脂肪酶的細(xì)胞定位進(jìn)行進(jìn)一步的驗(yàn)證,研究其底物特異性和催化特征,對(duì)其蛋白功能和酶學(xué)特性進(jìn)行進(jìn)一步鑒定,從而確定各個(gè)脂肪酶的功能。
參考文獻(xiàn):
[1]Sharma R, Chisti Y, Banerjee U C Production, purification, characterization, and applications of lipases [J] Biotechnol Adv, 2001, 19(8): 627-662
[2]Martinelle M, Holmquist M, Hult K On the interfacial activation of Candida antarctica lipase A and B as compared with Humicola lanuginosa lipase [J] Biochim Biophys Acta, 1995, 1258(3):272-276
[3]Noll F, May C, Kindl H Phospholipid monolayer of plant lipid bodies attacked by phospholipase A2 shows 80 nm holes analyzed by atomic force microscopy [J] Biophys Chem, 2000, 86(31):29-35
[4]Eastmond P J SUGAR-DEPENDENT1 encodes a patatin domain triacylglycerol lipase that initiates storage oil breakdown in germinating Arabidopsis seeds [J] Plant Cell, 2004, 18:665-675
[5]Balashev K, Jensen T R, Kjaer K, et al Novel methods for studying lipids and lipases and their mutual interaction at interfaces Part I Atomic force microscopy [J] Biochimie, 2001, 83(5): 387-397
[6]Fuchs C, Vine N, Hills M J Purification and characterization of the acid lipase from the endosperm of castor oil seeds [J] J Plant Physiol, 1996, 149: 23-29
[7]Ncube I, Gitlesen T, Adlercreutz P, et al Fatty acid selectivity of a lipase purified from Vernonia galamensis seed [J] Biochim Biophys Acta, 1995, 1257(2):149-156
[8]Eastmond P J Cloning and characterization of the acid lipase from castor beans [J] J Biol Chem,2004, 279(44): 45540-45545
[9]El-Kouhen K, Blangy S, Ortiz E, et al Identification and characterization of a triacylglycerol lipase in Arabidopsis homologous to mammalian acid lipases [J] FEBS Lett, 2005, 579(27): 6067-6073
[10]Matsui K, Fukutomi S, Ishii M, et al A tomato lipase homologous to DAD1 (LeLID1) is induced in post-germinative growing stage and encodes a triacylglycerol lipase [J] FEBS Lett, 2004, 569(1-3): 195-200
[11]張慧莉, 高劍峰, 劉偉 陸地棉脂肪酶基因克隆及氨基酸序列分析[J] 西北植物學(xué)報(bào), 2008, 28(9): 1734-1737
[12]Beisson F, Ferte N, Bruley S, et al Oilbodies as substrates for lipolytic enzymes [J] Biochim Biophys Acta, 2001, 1531: 47-58
[13]Huang Y, Zheng H, Yan Y Optimization of lipase-catalyzed transesterification of lard for biodiesel production using response surface methodology [J] Appl Biochem Biotech, 2010, 160(2): 504-515
[14]Li M J, Li A Q, Xia H, et al Cloning and sequence analysis of putative type II fatty acid synthase genes from Arachis hypogaea L [J] J Biosci, 2009, 34(2):227-238
[15]Li M J, Xia H, Zhao C Z, et al Isolation and characterization of putative acetyl-CoA carboxylases in Arachis hypogaea L [J] Plant Mol Biol Rep, 2010, 28: 58-68
[16]Li M J, Wang X J, Su L, et al Characterization of five putative acyl carrier protein (ACP) isoforms from developing seeds of Arachis hypogaea L [J]Plant Mol Biol Rep, 2010, 28: 365-372