張阿麗,張 弓,彭 晉,王全勝,馬 歡,鐘亞華,周福祥,謝叢華
(1.武漢大學(xué)中南醫(yī)院放化療科,武漢大學(xué)中南醫(yī)院腫瘤生物學(xué)行為湖北省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖北省腫瘤醫(yī)學(xué)臨床研究中心,湖北武漢 430071;2.華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院附屬協(xié)和醫(yī)院中西醫(yī)結(jié)合科,湖北武漢 430022)
卵巢癌是婦科惡性腫瘤的首要致死原因,2010年美國新報(bào)告卵巢癌患者21 880人,全年有13 850例卵巢癌患者死亡[1]。上皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)型(epithelial to mesenchymal transition,EMT)可使癌細(xì)胞獲得遷移、侵襲和轉(zhuǎn)移的能力,從而在腫瘤轉(zhuǎn)移中有重要的作用。因?yàn)閮?nèi)皮素-1(endothelin-1,ET-1)及內(nèi)皮素受體(ETAR)在卵巢癌原發(fā)灶和轉(zhuǎn)移灶中高表達(dá)[2],而且在腫瘤細(xì)胞中,ET-1/ETAR 自分泌通路通過誘導(dǎo)其纖維樣和侵襲表型,從而促進(jìn)腫瘤細(xì)胞EMT。ROCK為Rho GTPases的下游效應(yīng)分子,可以調(diào)節(jié)細(xì)胞骨架的組裝以及細(xì)胞黏附斑的形成,在EMT中起重要作用[3]。轉(zhuǎn)錄因子SLUG在卵巢癌細(xì)胞EMT中也起重要作用[4]。目前,ROCK與SLUG的關(guān)系,以及它們?cè)贓T-1誘導(dǎo)上皮卵巢癌細(xì)胞發(fā)生EMT中的作用還未見報(bào)道。本研究以人卵巢癌細(xì)胞SK-OV-3和CaOV3為研究對(duì)象,通過給予ET-1刺激或激活ROCK等,觀察該細(xì)胞侵襲能力及EMT表型相關(guān)基因的改變以及轉(zhuǎn)錄因子SLUG的變化,探討ROCK/SLUG通路在ET-1誘導(dǎo)上皮卵巢癌細(xì)胞EMT中的作用。
1.1 細(xì)胞與抗體 人卵巢癌細(xì)胞SK-OV-3,CaOV3購自武漢大學(xué)生物醫(yī)學(xué)保藏中心,培養(yǎng)在含1% 青-鏈霉素和10%FBS的RPMI 1640(美國Invitro-gen公司)中。兔抗纖連蛋白(fibronectin,F(xiàn)N)抗體,鼠抗β-actin抗體和兔抗ROCK抗體(美國Santa Cruz公司),鼠抗 E-cadherin抗體(美國 Zymed公司)。
1.2 細(xì)胞免疫熒光染色 培養(yǎng)在含10%FBS的RPMI 1640中的SK-OV-3和CaOV3(1×105/孔)生長在蓋玻片上24 h,無血清過夜后,用ET-1(美國MP Biomedicals公司)處理24 h,在-20℃用甲醇固定20 min,用5%正常羊血清封閉,β-tubulin抗體(美國Zymed公司,1∶100)4℃孵育過夜,PBS漂洗后,F(xiàn)ITC標(biāo)記的二抗室溫孵育1 h后,用Nikon E-clipse E600熒光顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)及β-tubulin微管蛋白的表達(dá),細(xì)胞核用PI染色。
1.3 Boyden小室體外侵襲實(shí)驗(yàn) Boyden小室體外侵襲實(shí)驗(yàn)用于確定細(xì)胞的體外穿過基質(zhì)膠Matrigel的能力,方法參見文獻(xiàn)[5]。實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)①:SK-OV-3和CaOV3無血清培養(yǎng)過夜后,用100 nmol·L-1ET-1刺激10 h后固定并用Diff-quick染色(美國VWR Scientific公司),每個(gè)孔計(jì)數(shù)5個(gè)視野的細(xì)胞數(shù)均數(shù),每個(gè)孔設(shè)3個(gè)復(fù)孔。實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)②:SK-OV-3和CaOV3無血清培養(yǎng)過夜后,用100 nmol·L-1ET-1刺激,同時(shí)加入ROCK抑制劑Y27632(LY),或單用ROCK顯性激活的突變體轉(zhuǎn)染,同時(shí)設(shè)無處理的細(xì)胞為對(duì)照組,24 h后固定并用Diff-quick染色(美國VWR Scientific公司),每孔計(jì)數(shù)5個(gè)視野的細(xì)胞均數(shù),每個(gè)孔設(shè)3個(gè)復(fù)孔。
1.4 蛋白的提取和Western blot檢測(cè) 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)①:SK-OV-3和CaOV3無血清培養(yǎng)過夜后,用100 nmol·L-1ET-1刺激24 h收集樣本,以未刺激的細(xì)胞為對(duì)照組。用RIPA裂解液(美國Pierce公司)提取細(xì)胞蛋白,參照我們前期的方法[6],Western blot檢測(cè)E-cadherin和纖連蛋白(fibronectin,F(xiàn)N)的表達(dá);實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)②:SK-OV-3和CaOV3種在6孔板中無血清過夜后,用100 nmol·L-1ET-1刺激,同時(shí)加入ROCK抑制劑Y27632(LY),或單用ROCK顯性激活的突變體轉(zhuǎn)染,同時(shí)設(shè)無處理的細(xì)胞為對(duì)照組。用RIPA裂解液(美國Pierce公司)提取細(xì)胞蛋白,參照我們前期的方法[6],Western blot檢測(cè)ROCK和FN的表達(dá)。
1.5 總RNA提取和實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè) 實(shí)驗(yàn)方案①:SK-OV-3和CaOV3種在6孔板中無血清過夜后,用100 nmol·L-1ET-1 刺激,分別在 0,3,6,12,24 h收集細(xì)胞,檢測(cè)SLUG、Snail和Twist轉(zhuǎn)錄水平;實(shí)驗(yàn)方案②:SK-OV-3和CaOV3種在6孔板中無血清過夜后,用100 nmol·L-1ET-1刺激,同時(shí)加入或不加 1 μmol·L-1ET-1 受體拮抗劑(endothelin A receptor,ETAR)(美國 Calbiochem 公司),24 h 后收集細(xì)胞,檢測(cè)SLUG轉(zhuǎn)錄水平;實(shí)驗(yàn)方案③:SK-OV-3和CaOV3種植在6孔板中無血清過夜后,轉(zhuǎn)染ROCK的顯性激活突變體后,分別在0,24,48,72 h收集細(xì)胞,檢測(cè)SLUG和E-cadherin的轉(zhuǎn)錄水平。
用TRIzol試劑(美國Gibco公司)提取細(xì)胞的總RNA??俁NA用RNA逆轉(zhuǎn)錄酶(美國Invitrogen公司)逆轉(zhuǎn)錄,并在第1鏈CDNA中加入寡核苷酸引物。應(yīng)用SYBR-Green的方法進(jìn)行real-time PCR,以GAPDH為內(nèi)參照。PCR條件:95℃ 1 min,55℃ 1 min,and 72℃ 1 min,30個(gè)循環(huán)。引物序列如下:GAPDH:sense 5'-TTAGCACCCCTGGCCAAGG-3'Antisense5'-CTTACTCCTTGGAGGCCATG-3';SLUG:sense5'-TGATGAAGAGGAAAGACTACAG-3'antisense5'-GCTCACATATTCCTTGTCACAG-3';Snail:sense 5'-CGAAAGGCCTTCAACTGCAAAT-3'antisense 5'-ACTGGTACTTCTTGACATCTG-3';TWIST:sense 5'-GGAGTCCGCAGTCTTACGAG-3'Antisense 5'-TCTGGAGGACCTGGTAGAGG-3';ROCK:sense 5'-GATGGATTGGATGCTTTGGTTTA-3'Antisense5'-GCTGAACAACCCAAGGACTA-3';E-cadherin:sense 5'-AGAATGACAACAAGCCCGAAT-3'antisense 5'-CGGCATTGTAGGTGTTCACA-3'。
1.6 報(bào)告基因分析 SK-OV-3和CaOV3種在6孔板中無血清過夜后,瞬時(shí)轉(zhuǎn)染1.5 μg含SLUG啟動(dòng)子的pGL3 basic質(zhì)粒與15 ng Renilla質(zhì)粒(promega)。它們共轉(zhuǎn)染 ROCK的顯性激活突變體[7](由美國賓西法尼亞大學(xué)生物工程系Chen CS教授惠贈(zèng))或者與ROCK抑制劑Y27632共同孵育。24 h后,使用熒光素酶報(bào)告檢測(cè)試劑盒 (美國Promega公司)檢測(cè)熒光素酶與Renilla的熒光值,用Luciferase熒光值/Renilla熒光值代表熒光素酶的活性。結(jié)果以±s表示,每組實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
2.1 ET-1誘導(dǎo)SK-OV-3和CaOV3細(xì)胞形態(tài),βtubulin微管蛋白,以及EMT標(biāo)志蛋白的變化 用100 nmol·L-1ET-1孵育 SK-OV-3和 CaOV3細(xì)胞24 h,共聚焦顯微鏡觀察胞質(zhì)中β-tubulin微管蛋白的變化。發(fā)現(xiàn)細(xì)胞失去上皮細(xì)胞的形態(tài)而變得有較長,較多的偽足,胞質(zhì)中β-tubulin微管蛋白(免疫熒光染色為綠色)被拉長,呈現(xiàn)為纖維細(xì)胞的表型(Fig 1A)。Boyden小室體外侵襲實(shí)驗(yàn)表明暴露給ET-1增加了細(xì)胞的體外侵襲力(Fig 1B);給予100 nmol·L-1ET-1刺激SK-OV-3和CaOV3細(xì)胞24 h,發(fā)現(xiàn)ET-1處理后Fibronectin表達(dá)量增加,是對(duì)照組的3倍多;而E-cadherin的表達(dá)降低。這些結(jié)果表明ET-1刺激影響了SK-OV-3和CaOV3 EMT基因的表達(dá)變化以及EMT相關(guān)形態(tài)的改變(Fig 1C)。
2.2 ET-1促進(jìn)SK-OV-3和CaOV3細(xì)胞轉(zhuǎn)錄因子SLUG的轉(zhuǎn)錄 在ET-1誘導(dǎo)SK-OV-3和CaOV3細(xì)胞EMT的同時(shí),我們用實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)E-cadherin的轉(zhuǎn)錄抑制因子如SLUG、Twist及Snail的表達(dá)變化。如Fig 2A和B,ET-1刺激24 h后,SLUG mRNA表達(dá)水平增加,但是Snail mRNA的水平?jīng)]有變化,而Twist mRNA水平下降。為了進(jìn)一步證實(shí)ET-1對(duì)SLUG mRNA的表達(dá)影響,我們分析了給予100 nmol·L-1ET-1 處理細(xì)胞 3、6、12、24 h 不同時(shí)間點(diǎn)情況下,SLUG mRNA的表達(dá)。結(jié)果發(fā)現(xiàn)ET-1作用3 h后SLUG mRNA水平即開始增加,在24 h時(shí)達(dá)到了最高點(diǎn)。而且,ET-1誘導(dǎo)SLUG mRNA的增加可以完全被ETAR拮抗劑BQ123所阻斷(Fig 2C和D)。這些結(jié)果表明在E-cadherin 3個(gè)主要的轉(zhuǎn)錄抑制因子中,SLUG是唯一一個(gè)能被 ET-1/ETAR刺激信號(hào)上調(diào)的因子。
Fig 1 ET-1 induced morphologic and related gene changes of EMT in CaOV3 and SK-OV-3 cells
2.3 ET-1活化 ROCK 促進(jìn) SK-OV-3和 CaOV3細(xì)胞EMT 為探討ET-1是否通過活化ROCK促進(jìn)SK-OV-3和CaOV3細(xì)胞EMT,我們用ET-1或ET-1聯(lián)合ROCK抑制劑Y27632或聯(lián)合使用ROCK的顯性激活突變體處理SK-OV-3和CaOV3細(xì)胞后檢測(cè)ROCK和間充質(zhì)標(biāo)記基因Fibronectin蛋白表達(dá)。如Fig 3A和B所示,在未處理組細(xì)胞,ROCK和Fibronectin的蛋白表達(dá)水平較低,當(dāng)ET-1處理后,ROCK和Fibronectin蛋白表達(dá)水平迅速升高;ROCK抑制劑Y27632能抑制ET-1對(duì)ROCK和Fibronectin蛋白表達(dá)的促進(jìn)作用。而當(dāng)ET-1與ROCK顯性激活突變體聯(lián)合使用時(shí),ROCK和Fibronectin蛋白表達(dá)明顯增加;如Fig 3C所示,Boyden小室體外侵襲實(shí)驗(yàn)表明:ET-1處理SK-OV-3和CaOV3細(xì)胞后,其侵襲力明顯增加,而ROCK的抑制劑Y27632能抑制其增加,轉(zhuǎn)染ROCK顯性激活突變體能促進(jìn)ET-1誘導(dǎo)的侵襲力增加。這些結(jié)果表明,ET-1通過活化ROCK誘導(dǎo)SK-OV-3和CaOV3細(xì)胞發(fā)生EMT,增強(qiáng)其侵襲力。
Fig 2 ET-1 increases the level of SLUG mRNA in SK-OV-3 and CaOV3 cells
2.4 ROCK上調(diào) SK-OV-3和 CaOV3細(xì)胞中SLUG的轉(zhuǎn)錄啟動(dòng)子活性,促進(jìn)SLUG轉(zhuǎn)錄,抑制E-cadherin轉(zhuǎn)錄 由于ROCK與上皮性腫瘤細(xì)胞的侵襲相關(guān),我們假設(shè)ROCK可能在轉(zhuǎn)錄水平激活SLUG并抑制上皮細(xì)胞標(biāo)志基因E-cadherin轉(zhuǎn)錄。如Fig 4A和B,實(shí)時(shí)定量PCR結(jié)果提示,ROCK顯性激活突變體轉(zhuǎn)染后24 h,SLUG mRNA水平增加,在轉(zhuǎn)染后48 h達(dá)到最高,同時(shí)E-cadherin mRNA減少;為確定SLUG是否為ROCK的下游靶基因,我們克隆SLUG啟動(dòng)子序列到熒光素酶(luciferase)基因的上游。熒光素酶分析提示,ROCK激活引起SLUG啟動(dòng)子活性增加2.5倍,ROCK抑制劑Y27632的明顯減少了SLUG啟動(dòng)子活性(Fig 4C)。該結(jié)果表明,ROCK通過上調(diào)SLUG啟動(dòng)子活性增加了SLUG的轉(zhuǎn)錄水平。
Fig 3 ET-1 induced EMT of CaOV3 and SK-OV-3 cells by active ROCK(±s,n=3)
約80%的卵巢癌為上皮來源的,上皮性卵巢癌被認(rèn)為是由正常卵巢上皮轉(zhuǎn)型而來,具有高度的侵襲和轉(zhuǎn)移能力。當(dāng)上皮性腫瘤獲得侵襲表型即向間充質(zhì)細(xì)胞表型轉(zhuǎn)化,此病理過程稱為EMT。EMT促進(jìn)了腫瘤細(xì)胞的運(yùn)動(dòng)和侵襲,是與腫瘤進(jìn)展及轉(zhuǎn)移相關(guān)的重要細(xì)胞過程。
Fig 4 ROCK increases SLUG mRNA synthesis by up-regulation of SLUG promoter activity,and then inhibits E-cadherin mRNA in CaOV3 and SK-OV-3 cells(±s,n=3)
基于以下證據(jù),本研究首次報(bào)道 ET-1活化ROCK/SLUG通路,誘導(dǎo)人卵巢癌細(xì)胞發(fā)生EMT。①ET-1與細(xì)胞ETAR結(jié)合,改變了許多關(guān)鍵基因的表達(dá),包括下調(diào)上皮細(xì)胞標(biāo)志蛋白E-cadherin的表達(dá),上調(diào)間充質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志蛋白Fibronectin的表達(dá),同時(shí)增強(qiáng)人卵巢癌細(xì)胞的侵襲力。②ET-1誘導(dǎo)了E-cadherin的主要抑制基因SLUG的轉(zhuǎn)錄和SLUG蛋白的表達(dá);而且,ETAR拮抗劑BQ123消除了ET-1對(duì)SLUG的誘導(dǎo)作用。③ ET-1通過活化ROCK信號(hào)誘導(dǎo)人卵巢癌細(xì)胞EMT發(fā)生。因?yàn)檗D(zhuǎn)染ROCK顯性激活突變體可與ET-1共同誘導(dǎo)EMT,反之,ROCK抑制劑Y27632,阻斷了ET-1對(duì)EMT的誘導(dǎo)作用。④ROCK通過上調(diào)SLUG基因轉(zhuǎn)錄啟動(dòng)子活性促進(jìn)SLUG基因的轉(zhuǎn)錄,同時(shí)抑制上皮細(xì)胞標(biāo)志E-cadherin的轉(zhuǎn)錄。這些表明在ET-1誘導(dǎo)人卵巢癌細(xì)胞發(fā)生EMT過程中,SLUG是ROCK下游靶基因,ROCK/SLUG通路在ET-1誘導(dǎo)人卵巢癌細(xì)胞發(fā)生EMT中起重要作用。因?yàn)樯掀ば阅[瘤進(jìn)展的兩個(gè)基本特征是喪失正常上皮的結(jié)構(gòu)以及和微環(huán)境的相互作用[3],所以本研究闡明了ET-1是通過活化ROCK/SLUG信號(hào)通路,從而促進(jìn)人卵巢癌細(xì)胞發(fā)生EMT以及惡性進(jìn)展與轉(zhuǎn)移。
E-cadherin的功能缺失被認(rèn)為是EMT的關(guān)鍵步驟。E-cadherin的缺失也導(dǎo)致上皮級(jí)性的完全喪失。E-cadherin的缺失可因基因突變,染色體缺失,蛋白酶的剪切或者上皮cadherin基因(epithelial cadherin gene,CDH1)啟動(dòng)子的沉默而引起[8]。CDH1啟動(dòng)子的沉默可因DNA高度的甲基化而引起或者轉(zhuǎn)錄因子如SLUG,Snail Twist與CDH1啟動(dòng)子區(qū)的E-box結(jié)合而抑制 CDH1啟動(dòng)子的活性[9-11]。SLUG、Snail為鋅指結(jié)合蛋白,屬于 Snail超家族成員[12]。在上皮細(xì)胞中外源性表達(dá)SLUG,Snail會(huì)引起EMT,表現(xiàn)為遷移和侵襲特征,此現(xiàn)象在卵巢癌中也觀察到[4]。本研究表明,ET-1誘導(dǎo)人卵巢癌細(xì)胞發(fā)生EMT時(shí),伴有SLUG mRNA的上調(diào),但是Snail mRNA的表達(dá)沒有變化。雖然兩個(gè)轉(zhuǎn)錄因子來自于相同的家族,但是可能會(huì)在不同的腫瘤環(huán)境和特殊的細(xì)胞類型中發(fā)揮不同的作用[9]。
Rho/ROCK信號(hào)通路涉及到多種癌細(xì)胞的運(yùn)動(dòng)和侵襲[13-14],包括人卵巢癌細(xì)胞[15-16]。SLUG 可以抑制上皮細(xì)胞表型基因 Cadherin的表達(dá)[17],促進(jìn)間充質(zhì)細(xì)胞表型基因如 Fibronectin的表達(dá)[18]。本研究發(fā)現(xiàn),ET-1誘導(dǎo) SLUG蛋白的表達(dá)可由ROCK抑制劑Y27632所逆轉(zhuǎn),相反,ROCK的顯性激活突變體可與ET-1協(xié)同增加SLUG的表達(dá),而且ROCK活化能上調(diào)SLUG基因的轉(zhuǎn)錄;本研究也觀察到ROCK抑制劑Y27632或ROCK的顯性激活突變體可以調(diào)節(jié)人卵巢癌細(xì)胞EMT相關(guān)蛋白如E-cadherin、Fibronectin的表達(dá)。
總之,本研究顯示,ET-1通過活化ROCK/SLUG信號(hào)通路,從而促進(jìn)人卵巢癌細(xì)胞發(fā)生EMT,這表明抑制ROCK/SLUG活化,有可能逆轉(zhuǎn)人卵巢癌的侵襲與轉(zhuǎn)移。
[1]Jemal A,Siegel R,Xu J,Ward E.Cancer statistics,2010[J].Cancer J Clin,2010,60(5):277-300.
[2]Salani D,Di Castro V,Nicotra M R,et al.Role of endothelin-1 in neovascularization of ovarian carcinoma[J].Am J Pathol,2000,157(5):1537-47.
[3]Bhowmick N A,Ghiassi M,Bakin A,et al.Transforming growth factor-beta1 mediates epithelial to mesenchymal transdifferentiation through a RhoA-dependent mechanism[J].Mol Biol Cell,2001,12(1):27-36.
[4]Kurrey N K,K A,Bapat S A.Snail and Slug are major determinants of ovarian cancer invasiveness at the transcription level[J].Gynecol Oncol,2005,97(1):155-65.
[5]Cano A,Pérez-Moreno M A,Rodrigo I,et al.The transcription factor snail controls epithelial-mesenchymal transitions by repressing E-cadherin expression[J].Nat Cell Biol,2000,2(2):76-83.
[6]王全勝,張阿麗,李仁康,等.高糖通過SGK1通路促進(jìn)人腎小球系膜細(xì)胞合成結(jié)締組織生長因子[J].中國藥理學(xué)通報(bào),2007,23(8):1015-20.
[6]Wang Q S,Zhang A L,Li R K,et al.High glucose stimulates synthesis of CTGF in HMC via SGK1 signaling pathway[J].Chin Pharmacol Bull,2007,23(8):1015-20.
[7]Bhadriraju K,Yang M,Alom Ruiz S,et al.Activation of ROCK by RhoA is regulated by cell adhesion,shape,and cytoskeletal tension[J].Exp Cell Res,2007,313(16):3616-23.
[8]Li Q,Mattingly R R.Restoration of E-cadherin cell-cell junctions requires both expression of E-cadherin and suppression of ERK MAP kinase activation in Ras-transformed breast epithelial cells[J].Neoplasia,2008,10(12):1444-58.
[9]Bolós V,Peinado H,Pérez-Moreno M A,et al.The transcription factor Slug represses E-cadherin expression and induces epithelial to mesenchymal transitions:a comparison with Snail and E47 repressors[J].J Cell Sci,2003,116(Pt 3):499-511.
[10]Batlle E,Sancho E,F(xiàn)rancí C,et al.The transcription factor snail is a repressor of E-cadherin gene expression in epithelial tumour cells[J].Nat Cell Biol,2000,2(2):84-9.
[11]Yang J,Mani S A,Donaher J L,et al.Twist,a master regulator of morphogenesis,plays an essential role in tumor metastasis[J].Cell,2004,117(7):927-39.
[12]Nieto M A.The snail superfamily of Zinc-finger transcription factors[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2002,3(3):155-66.
[13]Itoh K,Yoshioka K,Akedo H,et al.An essential part for Rho-as-sociated kinase in the transcellular invasion of tumor cells[J].Nat Med,1999,5(2):221-5.
[14]Manning TJ Jr,Parker J C,Sontheimer H.Role of lysophosphatidic acid and rho in glioma cell motility[J].Cell Motil Cytoskeleton,2000,45(3):185-99.
[15]Sawada K,Morishige K,Tahara M,et al.Alendronate inhibits lysophosphatidic acid-induced migration of human ovarian cancer cells by attenuating the activation of rho[J].Cancer Res,2002,62(21):6015-20.
[16]Zhao Y,Zong Z H,Xu H M.RhoC expression level is correlated with the clinicopathological characteristics of ovarian cancer and the expression levels of ROCK-I,VEGF,and MMP9[J].Gynecol Oncol,2010,116(3):563-71.
[17]Park S H,Cheung L W,Wong A S,et al.Estrogen regulates Snail and Slug in the down-regulation of E-cadherin and induces metastatic potential of ovarian cancer cells through estrogen receptor alpha[J].Mol Endocrinol,2008,22(9):2085-98.
[18]Olmeda D,Montes A,Moreno-Bueno G,et al.Snai1 and Snai2 collaborate on tumor growth and metastasis properties of mouse skin carcinoma cell lines[J].Oncogene,2008,27(34):4690-701.