胥光熱,彭永權(quán),林 靜,劉應(yīng)才
(1.遂寧市中心醫(yī)院 心血管內(nèi)科,四川 遂寧 629000;2.瀘州醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院 心血管內(nèi)科,四川 瀘州 646000;3.四川大學(xué)華西醫(yī)院 心血管內(nèi)科,四川 成都 610041)
槲皮素(quercetin,Que)是醋柳總黃酮的主要單體之一,廣泛存在于蔬菜、水果及植物藥中,在心血管保護(hù)方面起重要作用。近年來(lái)發(fā)現(xiàn)Que具有抗氧化的生物學(xué)活性。研究表明其抗氧化主要表現(xiàn)在促進(jìn)電子轉(zhuǎn)移,清除自由基(活性氧/活性氮);螯合過(guò)度金屬離子;維持和再生α-生育酚等。Que對(duì)冠心?。–HD)具有防治作用已得到研究的充分證實(shí)。EPCs對(duì)冠狀動(dòng)脈疾病的內(nèi)皮修復(fù)過(guò)程起著重要的作用,其數(shù)量和功能受損可導(dǎo)致內(nèi)皮損傷與修復(fù)之間的動(dòng)態(tài)平衡破壞。因此,外周血EPCs數(shù)量和功能與冠狀動(dòng)脈的血管損傷密切相關(guān),是冠心病的危險(xiǎn)因素[1]。氧化應(yīng)激引起EPCs數(shù)量減少和功能減弱,促進(jìn)冠心病的發(fā)生發(fā)展[2]。但對(duì)于Que如何防治冠狀動(dòng)脈粥樣硬化的進(jìn)展,目前尚無(wú)定論。因此,我們通過(guò)體外培養(yǎng)臍血內(nèi)皮祖細(xì)胞,觀(guān)察Que在氧化應(yīng)激條件下對(duì)EPCs的影響,以探討Que治療冠心病可能的機(jī)制。
槲皮素、成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(b-FGF)、DiI標(biāo)記的乙?;兔芏戎鞍祝―iI-ac-LDL)、FITC標(biāo)記的荊豆凝集素-1(FITC-UEA-1)、Annexin V-FITC/PI雙染細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒、Anisomycin購(gòu)自美國(guó)Sigma,人纖連蛋白購(gòu)自Milipure,血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF)購(gòu)自Pepro Tech,優(yōu)質(zhì)胎牛血清購(gòu)自Hyclone公司,鼠抗人p-JNK抗體、小鼠SP檢測(cè)試劑盒、DAB顯色試劑盒購(gòu)自中山金橋,鼠抗人CD133單克隆抗體購(gòu)自北京博奧森,F(xiàn)ITC-兔抗鼠IgG購(gòu)自武漢博士德,WST-1檢測(cè)試劑盒購(gòu)自碧云天。
1.2.1 EPCs的分離、誘導(dǎo)、培養(yǎng) 臍血(每份60 mL)取自瀘州醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院婦產(chǎn)科足月健康分娩的新生兒,告知產(chǎn)婦用于科學(xué)研究并得到其認(rèn)可。按1∶3的比例加入明膠,常溫下靜置30min,收集上清液,離心1000 r/min,10min,棄上清液,用無(wú)血清DMEM培養(yǎng)基稀釋混勻后按3∶2加入人淋巴細(xì)胞分離液上,離心2000 r/min,20 min,小心吸取中間白膜層單個(gè)核細(xì)胞,用DMEM培養(yǎng)基離心洗滌2遍,再用M199培養(yǎng)基調(diào)整密度為4×106/mL接種于纖連蛋白包被培養(yǎng)瓶中,另加10%胎牛血清,1%青鏈霉素,VEGF 50 ng/mL,b-FGF 1 ng/mL飽和濕度、5%二氧化碳的37℃孵箱中培養(yǎng),每3~4 d換夜;繼續(xù)培養(yǎng)至7~8 d,PBS洗滌掉非貼壁細(xì)胞,收集貼壁細(xì)胞供進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)用。
1.2.2 EPCs鑒定 ①細(xì)胞形態(tài)學(xué)鑒定:倒置相差顯微鏡下觀(guān)察細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化。②免疫熒光檢測(cè)表面標(biāo)志CD133:培養(yǎng)7 d的貼壁細(xì)胞行細(xì)胞爬片,40 g/L多聚甲醛固定30min后,3%H2O2孵育10 min,用Triton-100打孔,血清封閉后,加鼠抗人CD133抗體(1∶300稀釋?zhuān)?℃冰箱過(guò)夜,滴加FITC標(biāo)記的兔抗鼠IgG,37℃孵育60min,熒光顯微鏡下觀(guān)察拍照。③細(xì)胞免疫熒光雙染色鑒定:細(xì)胞培養(yǎng)至9 d后行細(xì)胞爬片。待細(xì)胞貼壁完全后進(jìn)行Dil-ac-LDL熒光染色鑒定。細(xì)胞在含Dil-ac-LDL(2.4μg/mL)的培養(yǎng)液中37℃孵育1 h,然后2%的多聚甲醛固定10min,均勻滴加濃度為10μg/mL FITC-UEA-1于上述標(biāo)本上,繼續(xù)在孵箱培養(yǎng)1 h。PBS漂洗后在熒光顯微鏡下觀(guān)察顯示紅色熒光為ac-LDL陽(yáng)性細(xì)胞,顯示綠色熒光為UEA-1陽(yáng)性,染色雙陽(yáng)性為正在分化的EPCs。
細(xì)胞培養(yǎng)至第7天后用不含EDTA的0.25%胰酶消化貼壁細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞密度為2×106/mL,按照每孔2mL接種于6孔板,隨機(jī)分為空白對(duì)照組、H2O2(500μmol/L)氧化應(yīng)激模型組、Que(60、90和120μmol/L)預(yù)處理30min后H2O2再處理8 h共同干預(yù)組,繼續(xù)培養(yǎng)24 h后施加上述不同的干預(yù)因素。
將培養(yǎng)7 d的細(xì)胞以2×103個(gè)均勻接種于96孔板,待細(xì)胞完全貼壁后用不含血清的M199培養(yǎng)液培養(yǎng)24 h,使細(xì)胞生長(zhǎng)同步化。同時(shí)再加入各種干預(yù)因素繼續(xù)培養(yǎng)24和48 h后,每孔加入10μL WST-1溶液,繼續(xù)孵育2 h,置酶標(biāo)儀450 nm波長(zhǎng)測(cè)定OD值。每個(gè)實(shí)驗(yàn)組均設(shè)6個(gè)復(fù)孔同時(shí)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
雙染免疫熒光法EPCs凋亡的觀(guān)察:培養(yǎng)待檢測(cè)細(xì)胞,PBS洗滌2次后,加入Binding Buffer懸浮細(xì)胞,再分別加入5μL的FITC-Annexin-v、PI混勻,室溫避光反應(yīng)10min,將蓋玻片倒置于載玻片上,于熒光顯微鏡雙色濾光片(FITC和羅丹明)下觀(guān)察,F(xiàn)ITC-Annexin-v熒光信號(hào)呈綠色,PI熒光信號(hào)紅色。在1 h內(nèi)上機(jī)檢測(cè),同時(shí)收集細(xì)胞懸浮液,流式細(xì)胞儀檢測(cè)并計(jì)算各組細(xì)胞的凋亡率。
1.6.1 免疫細(xì)胞化學(xué)法檢測(cè)EPCs p-JNK蛋白表達(dá) 取出培養(yǎng)7 d的細(xì)胞在6孔板中爬片,40 g/L多聚甲醛固定30 min鐘后,3%H2O2孵育10 min,用Triton-100打孔,血清封閉后,滴加1∶100稀釋的鼠抗人p-JNK一抗,用PBS緩沖液(0.01 mol/L,pH 7.4)代替一抗作為陰性對(duì)照,4℃冰箱過(guò)夜,滴加二抗,37℃孵育30min,PBS液代替一抗作陰性對(duì)照,DAB顯色,蘇木精復(fù)染。梯度乙醇脫水,二甲苯透明,中性樹(shù)膠封固,光鏡觀(guān)察陽(yáng)性信號(hào)。
1.6.2 JNK激動(dòng)劑對(duì)EPCs凋亡的影響 將上述細(xì)胞隨機(jī)分為空白對(duì)照組、JNK激動(dòng)劑Anisomycin 10μmol/L+H2O2(500μmol/L)組、JNK 激動(dòng)劑 Anisomycin 10μmol/L+Que (60、90 和 120μmol/L)+H2O2(500μmol/L) 組,JNK 激動(dòng)劑組先加入10μmol/L Anisomycin預(yù)處理1 h后再施加其他干預(yù)因素,流式細(xì)胞儀檢測(cè)各組的凋亡率。
①剛分離的單個(gè)核細(xì)胞倒置相差顯微鏡下呈圓形,胞體透亮,折光性好,散在分布于培養(yǎng)液中。3~4 d后,圓形細(xì)胞逐漸拉長(zhǎng),呈梭形貼壁生長(zhǎng),并有少量細(xì)胞突起(見(jiàn)圖1A)。培養(yǎng)7 d后梭形細(xì)胞較前明顯增多,細(xì)胞體積增大,部分視野可呈集落樣生長(zhǎng),有一定的方向性(見(jiàn)圖1B)。
圖1 內(nèi)皮祖細(xì)胞的形態(tài)學(xué)特征(×200)
②早期EPCs以表達(dá)CD133、CD34為主,晚期可表達(dá)KDR。其中CD133在EPCs向成熟內(nèi)皮細(xì)胞分化過(guò)程中其數(shù)量迅速減少。因此,可作為EPCs區(qū)別成熟內(nèi)皮細(xì)胞的分子標(biāo)志[3]。細(xì)胞免疫熒光檢測(cè)CD133陽(yáng)性細(xì)胞呈綠色,陽(yáng)性率達(dá)95%以上。見(jiàn)圖2。
③DiI-ac-LDL染色呈紅色(見(jiàn)圖3),F(xiàn)ITC-UEA-1染色呈綠色(見(jiàn)圖4),DiI-ac-LDL和FITC-UEA-1免疫熒光雙染色陽(yáng)性的細(xì)胞呈黃色,定義為內(nèi)皮祖細(xì)胞[4],陽(yáng)性率>90%。見(jiàn)圖5。
圖2 CD133陽(yáng)性細(xì)胞的免疫熒光檢測(cè)
圖3 DiI-ac-LDL染色
圖4 FITC-UEA-1染色
圖5 內(nèi)皮祖細(xì)胞
在正常培養(yǎng)條件下,與空白對(duì)照組比較,60~90μmol/L的 Que可以促進(jìn) EPCs的增殖,120μmol/L的Que則表現(xiàn)出抑制EPCs增殖的作用,與培養(yǎng)24 h比,在48 h對(duì)EPCs的抑制作用較為明顯,差異有顯著性(P <0.05)(見(jiàn)表 1);在氧化應(yīng)激條件下,與空白對(duì)照組比較,H2O2組EPCs增殖能力明顯降低,差異有顯著性(P<0.01),加入60~120 μmol/L的Que處理后,H2O2誘導(dǎo)的EPCs損傷后的細(xì)胞增殖能力得到明顯改善,且具有明顯的時(shí)間和濃度依賴(lài)性,與H2O2組比較,差異有顯著統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P <0.01)(見(jiàn)表 2)。
表1 在生理?xiàng)l件下Que對(duì)EPCs增殖的影響(,n=6)
表1 在生理?xiàng)l件下Que對(duì)EPCs增殖的影響(,n=6)
注:1) 與對(duì)照組比較,P <0.05;2) 與對(duì)照組比較,P <0.01;3)與60μM Que組比較,P <0.05;4)48 h與 24 h相比,P <0.05
OD值24 h 48 h對(duì)照組 - 0.2920±0.0112 0.2983±0.0091 Que 60 0.3266±0.00672) 0.3561±0.00612)4)Que 90 0.3416±0.00552)3) 0.3712±0.00752)3)4)Que 120 0.2882±0.01021) 0.2616±0.00382)4)組別劑量/(μmol/L)
免疫熒光觀(guān)察結(jié)果顯示綠色的為凋亡早期細(xì)胞,紅色為死亡細(xì)胞,核桔黃色而膜綠色為凋亡晚期細(xì)胞。流式細(xì)胞儀檢測(cè)結(jié)果發(fā)現(xiàn)Que在60~120μmol/L范圍內(nèi)隨著濃度的增加,且抗EPCs凋亡作用逐漸增強(qiáng)。在60、90、120μmol/L濃度的Que作用下,凋亡率依次為(27.43±0.37)%、(23.12±0.45)%和(22.43±0.16)%,與 H2O2誘導(dǎo)組(36.58±0.45)%的凋亡率比較,差異有顯著性(P<0.01);與 90μmol/L Que+H2O2組比較,120μmol/L Que+H2O2組的凋亡率無(wú)明顯差異(P<0.05)(見(jiàn)表3,圖6)。免疫細(xì)胞化學(xué)p-JNK陽(yáng)性表達(dá)細(xì)胞胞漿和胞核出現(xiàn)棕黃色顆粒,隨著槲皮素濃度的增加,p-JNK陽(yáng)性表達(dá)產(chǎn)物逐漸減少,染色變得淺淡(見(jiàn)圖7)。Que能夠抑制加入JNK激動(dòng)劑后EPCs凋亡率的 增 加 ,Anisomycin+Que(60μmol/L、90μmol/L、120μmol/L)+H2O2組的凋亡率依次為 (42.36±0.53)%、(38.32±0.15)%和(35.78±0.27)%,與 Anisomycin+H2O2組(47.35±0.64)%比較,差異有顯著性(P<0.05)。見(jiàn)表 4,圖8。
表2 在氧化應(yīng)激條件下Que對(duì)EPCs增殖的影響(,n=6)
表2 在氧化應(yīng)激條件下Que對(duì)EPCs增殖的影響(,n=6)
注:1) 與對(duì)照組比較,P <0.01;2) 與 H2O2組比較,P <0.01;3)與60μM Que組比較,P <0.05;4)與 90μM Que組比較,P <0.05;5)48 h與24 h比較,P<0.05
OD值24 h 48 h對(duì)照組 - 0.2920±0.0112 0.2983±0.0091 H2O2 500 0.1175±0.00441) 0.1033±0.00551)Que+H2O2 60 0.1336±0.00372) 0.1526±0.00482)5)Que+H2O2 90 0.1568±0.00492)3) 0.1743±0.00492)3)5)Que+H2O2 120 0.1838±0.00512)4) 0.2039±0.00672)4)5)組別 劑量/(μmol/L)
圖6 H2O2誘導(dǎo)的EPCs凋亡的流式細(xì)胞儀檢測(cè)
圖7 免疫細(xì)胞化學(xué)法p-JNK蛋白表達(dá)
表3 Que對(duì)H2O2誘導(dǎo)的EPCs凋亡的影響(,n=6)
表3 Que對(duì)H2O2誘導(dǎo)的EPCs凋亡的影響(,n=6)
注:1) 與對(duì)照組比較,P <0.01;2) 與 H2O2組比較,P <0.01;3)與90μM Que+H2O2組比較,P<0.05
組別劑量/(μmol/L)凋亡率/%對(duì)照組 - 13.52±0.36 H2O2 500 36.58±0.451)Que+H2O2 60 27.43±0.582)3)Que+H2O2 90 23.12±0.372)Que+H2O2 120 22.43±0.162)
表4 JNK激動(dòng)劑對(duì)H2O2誘導(dǎo)的EPCs凋亡的影響(,n=6)
表4 JNK激動(dòng)劑對(duì)H2O2誘導(dǎo)的EPCs凋亡的影響(,n=6)
注:?與 Anisomycin+H2O2組比較,P<0.05
組別劑量/(μmol/L)凋亡率/%對(duì)照組 - 13.52±0.36 Anisomycin+H2O2 - 47.35±0.64 Anisomycin+Que+H2O2 60 42.36±0.53?Anisomycin+Que+H2O2 90 38.32±0.30?Anisomycin+Que+H2O2 120 35.78±0.54?
圖8 JNK激動(dòng)劑對(duì)H2O2誘導(dǎo)的EPCs凋亡的影響
內(nèi)皮祖細(xì)胞(EPCs)最早由ASAHARA[5]分選出來(lái),隨后的研究發(fā)現(xiàn),EPCs在周?chē)懿∽兯碌娜毖M織和心肌梗死區(qū)的血管新生和血管形成中發(fā)揮著重要的作用。CAROLINE博士的小組對(duì)43名正常受試者、44名穩(wěn)定性心絞痛患者以及33名急性冠脈綜合癥患者進(jìn)行10個(gè)月的隨訪(fǎng)后指出冠心病患者外周血內(nèi)皮祖細(xì)胞數(shù)量,形成集落數(shù),細(xì)胞增殖能力明顯降低。EPCs數(shù)量和功能受損可導(dǎo)致內(nèi)皮損傷與修復(fù)之間的動(dòng)態(tài)平衡破壞,其數(shù)量減少是預(yù)示動(dòng)脈粥樣硬化疾病進(jìn)展的獨(dú)立因素[6]。
目前,Que類(lèi)藥物正在成為預(yù)防和治療冠心病的手段之一。研究表明,Que的攝入量與冠心病的發(fā)病率和死亡率呈負(fù)相關(guān)[7],Que的內(nèi)皮保護(hù)作用可能與抗氧化及抑制炎癥介質(zhì)的作用有關(guān),Que可以作用于NF-κB和激活蛋白-1(AP-1)而起抗炎作用,保護(hù)內(nèi)皮的完整性;Que可以抑制COX-2而起抗炎作用;Que通過(guò)抑制單核細(xì)胞對(duì)血管壁的黏附而起到抗炎保護(hù)內(nèi)皮的作用。此外,還有研究表明Que能抑制血管平滑肌細(xì)胞的增生肥大。Que具有內(nèi)皮保護(hù)作用,但Que對(duì)EPCs功能的影響目前尚無(wú)相關(guān)研究。以往研究發(fā)現(xiàn),Que可抑制腫瘤細(xì)胞增殖,誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡,而對(duì)遭受H2O2等氧化刺激因子的正常細(xì)胞來(lái)說(shuō),Que可通過(guò)阻斷JNK及ERK兩條途徑達(dá)到抑制凋亡的發(fā)生[8]。H2O2誘導(dǎo)EPCs凋亡與氧化還原信號(hào)調(diào)節(jié)機(jī)制有關(guān)[9],200μmol/L H2O2可使凋亡信號(hào)調(diào)節(jié)激酶1(ASK1)活化,P38和JNK表達(dá)增加,EPCs凋亡增多[10],而 500μmol/L H2O2可造成EPCs的氧化應(yīng)激損傷模型[11]。Que可通過(guò)JNK信號(hào)通路抑制細(xì)胞凋亡,而H2O2誘導(dǎo)EPCs氧化損傷使JNK活化增加,EPCs凋亡增多。但目前國(guó)內(nèi)外尚無(wú)有關(guān)Que能否直接影響EPCs數(shù)量和功能的研究。
在本研究中,WST-1結(jié)果示:H2O2組EPCs較正常對(duì)照組增殖能力明顯降低,加入60~120μmol/L的Que處理后,H2O2誘導(dǎo)的EPCs損傷后的細(xì)胞增殖能力得到明顯改善,且具有明顯的時(shí)間和濃度依賴(lài)性。而在基礎(chǔ)狀態(tài)下,60~90μmol/L的Que處理的EPCs較正常對(duì)照組增殖,而120μmol/L的Que則表現(xiàn)出抑制EPCs增殖的作用??梢?jiàn)Que對(duì)不同狀態(tài)的EPCs作用是不同的,對(duì)于不同狀態(tài)的EPCs需要尋找最佳的Que濃度。具體機(jī)制尚不清楚,可能與高濃度(通常在100μmol/L以上)的Que產(chǎn)生的細(xì)胞毒性有關(guān)。H2O2作為活性氧可促進(jìn)大量氧自由基產(chǎn)生和脂質(zhì)過(guò)氧化反應(yīng)而誘發(fā)氧化應(yīng)激損傷,抑制細(xì)胞功能、促進(jìn)細(xì)胞衰老和凋亡,Que(60~120μmol/L)和H2O2共同干預(yù)組與 H2O2組比較能顯著改善氧化應(yīng)激條件下EPCs增殖功能的抑制,減少EPCs的凋亡,且具有濃度依賴(lài)性,這與之前報(bào)道的Que呈劑量依賴(lài)性的促進(jìn)H2O2誘導(dǎo)血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖的結(jié)果較一致[12]。但更高濃度的槲皮素對(duì)氧化應(yīng)激條件下EPCs增殖和凋亡的影響還有待進(jìn)一步研究。
此外,本研究還顯示Que在60~120μmol/L范圍內(nèi)隨著濃度的增加,抗H2O2誘導(dǎo)損傷的EPCs凋亡作用均逐漸增強(qiáng)。有學(xué)者認(rèn)為H2O2可使凋亡信號(hào)調(diào)節(jié)激酶1(ASK1)活化,P38和JNK表達(dá)增加,H2O2是誘導(dǎo)者,JNK是氧化損傷的維持因子。本研究中通過(guò)免疫細(xì)胞化學(xué)檢測(cè)H2O2組p-JNK蛋白表達(dá)明顯高于其它實(shí)驗(yàn)組,這可能與H2O2使EPCs的ASK1活化增加,導(dǎo)致JNK的持續(xù)激活從而使EPCs凋亡增多有關(guān)。Que能夠抑制加入JNK激動(dòng)劑后EPCs凋亡率的增加,且免疫組化顯示加入Que后p-JNK陽(yáng)性表達(dá)產(chǎn)物減少,推測(cè)Que對(duì)EPCs氧化應(yīng)激損傷的保護(hù)作用除了與其抗炎、抗氧化、清除氧自由基有關(guān)外,還可能通過(guò)JNK信號(hào)通路抑制EPCs凋亡。MA[13]等報(bào)道氧化型低密度脂蛋白(oxLDL)可通過(guò)Akt/eNOS途徑引起EPCs的凋亡,oxLDL通過(guò)下調(diào)Akt的磷酸化水平來(lái)抑制其下游eNOS的活性并使其表達(dá)水平降低,導(dǎo)致NO產(chǎn)量減少,從而引起EPCs的凋亡。而他汀類(lèi)藥物促進(jìn)EPCs動(dòng)員和改善其功能的分子機(jī)制與PI3K-Akt依賴(lài)的eNOS活化有關(guān)。研究表明Que可保護(hù)H2O2誘導(dǎo)血管內(nèi)皮細(xì)胞的損傷及修復(fù),其作用可能與NO水平有關(guān)[14],而NO由NO合酶(NOS)催化而形成,Que的抗EPCs凋亡的作用機(jī)制是否與Akt/eNOS信號(hào)通路是是下一步研究探討的重點(diǎn)。
[1]VOLKER ADAMS,KARSTEN LENK,AXEL LINKE,et al.Increase of circulating endothelial progenitor cells in patients with coronary artery disease after exercise-induced ischemia[J].Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology, 2004, 24:684-690.
[2]LIU L,WEN T,ZHENG XY.Remnant-like particles accelerate endothelial progenitor cells senescence and induce cellular dys-function via an oxidative mechanism[J].Atherosclerosis,2009,202(2):405-414.
[3]PEICHEV M,NAIYER AJ,PEREIRA D,et al.Expression of VEGFR-2 and CD133 by circulating human CD34 (+)cells identifies a population of functional endothelial precursors[J].Blood,2000,95:952-958.
[4]VASA M,FICHTLSCHERER S,AICHER A,et al.Number and migratory activity of circulating endothelial progenitor cells inversely correlate with risk factors for coronary artery disease[J].Cir Res,2001,89(1):E1-7.
[5]ASAHARA T,MUROHARA T,SULLIVAN A,et al.Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogenesis[J].Science,1997,275(5):964-967.
[6]CAROLINE SCHMIDT-LUCKE,LOTHAR R?SSIG,STEPHAN FICHTLSCHERER,et al.Reduced number of circulating endothelial progenitor cells predicts future cardiovascular events[J].Circulation,2005,111:2981-2987.
[7]PERE-VIZCAINO F,DUARTE J,ANDRIANTSITOHAINA R.Endothelial function and cardiovascular disease:effects of quercetin and wine polypheonls[J].Free Radic Res,2006,40(10):1054-1065.
[8]ISHIKAWA Y,KITAMURA M.Anti-apoptotic effect of quercetin:intervention in the JNK-and ERK-mediated apoptotic pathways[J].Kidney Int,2000,58(3):1078-1087.
[9]CASE J,INGRAM DA,HANELINE LS.Oxidative stress impairs endothelial progenitor cell function[J].Antioxid Redox Signal,2008,10(11):1895-1907.
[10]INGRAM DA,KRIER TR,MEAD LE.Clonogenic endothelial progenitor cells are sensitive to oxidative stress[J].Stem Cells,2007,25(2):305-312.
[11]GENSCH C,CLEVER Y,WERNER C,et al.The PPAR-?agonist pioglitazone increases neoangiogenesis and prevents apoptosis of endothelial progenitor cells[J].Atherosclerosis,2007,192(1):67-74.
[12]LIN R,LI X,CHEN W,YANG YC,et al.Effect of quercetin on cell cycle and nitroxide in hydrogenperoxide-induced of endothelial cells[J].Chinese Pharmacological Bulletin,2001,17(2):211-213.
[13]MA FX,ZHOU B,CHEN Z,et al.Oxidized low density lipoprotein impairs endothelial progenitor cells by regulation of endothelial nitric oxide synthase[J].J Lipid Res,2006,47(6):1227-1237.
[14]URBICH C,DIMMELER S.Risk factors for coronary artery disease,circulating endothelial progenitor cells,and the role of HUMG-COA reductase inhibitors[J].Kidney Int,2005,67:1672-1676.