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        大孔樹脂吸附分離紫蘇莖總黃酮的工藝研究

        2012-11-05 07:35:38吳元鋒孟耀庭毛建衛(wèi)劉士旺
        關(guān)鍵詞:紫蘇大孔極性

        吳元鋒,孟耀庭,毛建衛(wèi),黃 俊,劉士旺

        (1.浙江科技學(xué)院 生物與化學(xué)工程學(xué)院,杭州310023;2.浙江省農(nóng)產(chǎn)品化學(xué)與生物加工技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,杭州310023)

        紫蘇(Pefilla frutescens(L.)Britt)別名赤蘇、紅蘇、紅紫蘇、香蘇,系唇形科紫蘇屬一年生草本植物,目前中國各地均有栽培,主產(chǎn)于江蘇、安徽、湖南等地,分布于全國20多個省(自治區(qū)、直轄市),具有極為廣泛的資源價值,是中國傳統(tǒng)的藥食植物,且富含黃酮類化合物[1]。紫蘇葉、莖、籽可分別入藥,藥效各有不同,紫蘇葉具有解表散寒,行氣和胃功效;紫蘇梗具有理氣寬中,止痛,安胎功效;紫蘇籽具有降氣消痰,平喘,潤腸功效[2]。李秀信的實(shí)驗(yàn)表明,紫蘇莖中含有黃酮類、二氫黃酮類、黃酮醇類和二氫黃酮醇類等多種黃酮類化合物[3]。

        國內(nèi)已有學(xué)者對大孔樹脂吸附純化紫蘇總黃酮[4]、紫蘇葉總黃酮[5]、白蘇的地上部分總黃酮[6]等工藝進(jìn)行了研究。本研究以紫蘇莖總黃酮為原料,選用5種不同類型的吸附樹脂D-101、AB-8、DM130、ADS-7和ADS-17進(jìn)行試驗(yàn),通過靜態(tài)吸附篩選出最適合紫蘇莖總黃酮純化的大孔樹脂,然后對上樣總黃酮質(zhì)量濃度、上樣速率、解吸濃度、洗脫速率等進(jìn)行動態(tài)吸附試驗(yàn),得出優(yōu)化的分離工藝,為大孔樹脂吸附分離紫蘇莖總黃酮奠定基礎(chǔ)。

        1 試驗(yàn)部分

        1.1 儀器與試劑

        1.1.1 主要儀器

        T6新世紀(jì)紫外現(xiàn)代分光光度計(jì),RE-200型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器,SHZ-CB型循環(huán)水式多用真空泵,數(shù)顯恒溫水浴鍋,自動部分收集器,電子天平,GZX-9070MBE數(shù)顯鼓風(fēng)干燥箱。

        1.1.2 材料與試劑

        原料:紫蘇莖,產(chǎn)自浙江衢州。

        標(biāo)準(zhǔn)品:二水櫟精(純度98%),購自上海阿拉丁。

        主要試劑:無水乙醇、冰醋酸、石油醚、醋酸鈉、無水三氯化鋁均為分析純。

        大孔樹脂:D-101、AB-8、DM130、ADS-7、ADS-17,購自滄州寶恩吸附材料科技有限公司。

        1.2 實(shí)驗(yàn)方法

        1.2.1 粗提物的制備

        粉碎干燥紫蘇樣品,以60%乙醇為提取劑,料液比為1∶30,提取時間為60min,提取溫度50℃,進(jìn)行超聲波輔助提取,得到紫蘇提取液,將紫蘇提取液濃縮得浸膏。

        1.2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

        采用氯化鋁法:二水櫟精標(biāo)準(zhǔn)品(純度98%)用50%乙醇配成0.1mg/mL溶液,分別精密吸取該標(biāo)準(zhǔn)溶液0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6mL于25mL容量瓶中,加8mL1.5%三氯化鋁溶液與4mL pH 5.5的醋酸鈉緩沖液,然后用50%乙醇溶液定容,靜置0.5h后,于紫外分光光度計(jì)415nm處測定,得回歸方程Y=0.519 6 X+0.033 1,R2=0.995 2。

        1.2.3 樹脂靜態(tài)吸附量及解吸率的測定

        三角瓶中加入經(jīng)過預(yù)處理的D-101、AB-8、DM130、ADS-17和ADS-7大孔樹脂各2g,加入質(zhì)量濃度為0.46mg/mL的紫蘇黃酮提取液各30mL,置于25℃搖床上震蕩24h后測溶液未被吸附的黃酮含量,按下式計(jì)算靜態(tài)吸附量:

        式中:A1—黃酮吸附量,mg/g;C0、C1—初始、殘余黃酮質(zhì)量濃度,mg/mL;V—料液體積,mL;W—大孔樹脂質(zhì)量,g。

        根據(jù)樹脂的吸附量,選擇2種吸附率較大的樹脂,加入70%的乙醇后放入搖床解吸,根據(jù)下式計(jì)算解吸率:

        式中:A2—解析率;C2、C3—吸附飽和時,解吸液黃酮質(zhì)量濃度,mg/mL。

        1.2.4 大孔樹脂靜態(tài)吸附曲線

        大孔樹脂濾至沒有水流出,精確稱取2g大孔樹脂放入100mL三角瓶中,加入30mL紫蘇莖總黃酮提取液(質(zhì)量濃度為0.46mg/mL),放入25℃搖床中進(jìn)行吸附實(shí)驗(yàn),每1h吸取1mL溶液,分光光度法測定溶液中黃酮含量,共吸附12h,得出大孔樹脂靜態(tài)吸附曲線。

        1.2.5 大孔樹脂吸附紫蘇莖總黃酮工藝的確定

        1.2.5.1 上樣黃酮質(zhì)量濃度對吸附的影響 分別配制質(zhì)量濃度為0.46、0.15、0.05mg/mL的黃酮溶液,大孔樹脂濕法裝柱,用大量水淋洗后分別上樣3種不同質(zhì)量濃度黃酮溶液,每1柱床體積(BV)收集1瓶,上樣流速為1BV/h,直至流出液黃酮質(zhì)量濃度為上樣液的1/10(即穿透)。

        1.2.5.2 上樣流速對吸附的影響 選擇上樣液質(zhì)量濃度為0.15mg/mL,依次用0.6、1、2BV/h流速上樣,測定流出液黃酮質(zhì)量濃度,直至流出液黃酮質(zhì)量濃度為上樣液的1/10。

        1.2.5.3 乙醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)對洗脫的影響 大孔樹脂經(jīng)過紫蘇黃酮吸附飽和后,分別用50%、70%、90%的乙醇溶液洗脫,流速為1BV/h,分別測定流出液黃酮質(zhì)量濃度,得出解吸曲線。

        1.2.5.4 乙醇洗脫速率對洗脫的影響 大孔樹脂經(jīng)過紫蘇黃酮吸附飽和后,分別以1BV/h、2BV/h、3BV/h流速洗脫,乙醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)為70%,分別測定流出液黃酮質(zhì)量濃度,得出解吸曲線。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 大孔樹脂對紫蘇莖總黃酮的吸附量

        按1.2.3方法,分別計(jì)算出5種大孔樹脂對總黃酮的靜態(tài)吸附量,結(jié)果見表1。

        由于大孔樹脂極性、孔徑、比表面積、孔容等不同,故不同的大孔樹脂對吸附分離的影響很大。在所選擇的5種大孔樹脂中,D-101是非極性,AB-8是弱極性,DM130是中等極性,ADS-7和ADS-17是極性大孔樹脂。從表1可以看出,5種型號大孔樹脂中,以AB-8對吸附量最高,其次是D-101,這可能是由于AB-8是弱極性吸附樹脂,因此對于極性較弱的總黃酮有較好的吸附性能。非極性的D-101樹脂對總黃酮也有較好的吸附效果。而中等極性和極性的大孔樹脂對紫蘇黃酮吸附效果較差。在下面的解析率實(shí)驗(yàn)中,選取AB-8和D-101樹脂進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)。

        表1 大孔樹脂對紫蘇莖總黃酮的吸附量Table 1 Adsorption capacity of macroporous resin to total flavonids of stem of Pefilla frutescens

        2.2 大孔樹脂對紫蘇莖總黃酮的解吸率

        靜態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)中吸附飽和的AB-8、D-101大孔樹脂用70%乙醇解吸12h,其解吸率結(jié)果見表2。從表2可以看出,從吸附量和解吸率來看,AB-8樹脂都優(yōu)于D-101樹脂。這是因?yàn)樽咸K莖總黃酮是弱極性物質(zhì),在弱極性柱上更容易被吸附,同時可能是由于比表面積較大的原因,也較容易被洗脫,故解析率更高,因此在靜態(tài)吸附和動態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)中,選擇AB-8為吸附樹脂。

        表2 AB-8、D-101大孔樹脂的解吸率Table 2 Desorption capacity of macroporous resin AB-8and D-101

        2.3 AB-8對紫蘇莖總黃酮靜態(tài)吸附曲線繪制

        選擇AB-8大孔樹脂,按1.2.4方法,測定不同時間總黃酮濃度,繪制靜態(tài)吸附曲線,如圖1所示。從圖1中可看出,總黃酮的初始質(zhì)量濃度為0.46mg/mL,1h后即降到0.29mg/mL,但此后吸收率變化開始變小,3h后吸附率基本趨于穩(wěn)定,吸附量不再明顯變化。

        2.4 不同上樣質(zhì)量濃度對AB-8吸附的影響

        按1.2.5.1方法,試驗(yàn)不同上樣質(zhì)量濃度對AB-8大孔樹脂吸附性能的影響,結(jié)果見圖2。

        從上樣質(zhì)量濃度對吸附性能的影響來看,上樣總黃酮質(zhì)量濃度為0.46mg/mL時,穿透點(diǎn)出現(xiàn)最早,在6BV附近即可穿透,此時總黃酮質(zhì)量濃度較高,可能造成大孔樹脂使用周期短,樹脂再生次數(shù)增多;而上樣總黃酮質(zhì)量濃度為0.05mg/mL時,穿透點(diǎn)出現(xiàn)最晚,在11BV附近才穿透,這將會使生產(chǎn)周期過長;上樣總黃酮質(zhì)量濃度0.15mg/mL時,穿透點(diǎn)出現(xiàn)在8BV附近。因此,選擇最佳上樣質(zhì)量濃度為0.15mg/mL。

        2.5 不同上樣速率對AB-8吸附性能的影響

        進(jìn)樣質(zhì)量濃度為0.15mg/mL時,對不同上樣速率下進(jìn)行大孔樹脂吸附性能試驗(yàn),3種不同上樣流速下的吸附性能如圖3所示。由圖3可知,上樣流速在0.6BV/h時,穿透點(diǎn)出現(xiàn)最晚,在11BV處才穿透;上樣流速為1BV/h時,穿透點(diǎn)在8BV處出現(xiàn);而上樣流速為2BV/h時,6BV處即可實(shí)現(xiàn)穿透。黃酮溶液越慢通過樹脂柱,越能和樹脂充分接觸,從而提高吸附效果,但是流速慢會導(dǎo)致整個吸附時間大大延長。而流速太快,導(dǎo)致穿透點(diǎn)過早出現(xiàn),吸附效果也會變差,紫蘇莖總黃酮在樹脂上吸附量會變小。因此,從工業(yè)化生產(chǎn)成本上綜合考慮,取上樣流速為1BV/h,此時吸附效果較好,生產(chǎn)周期也較短。

        2.6 不同乙醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)洗脫對AB-8洗脫性能的影響

        按1.2.5.3方法,依次采用3種不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)的乙醇溶液對大孔樹脂進(jìn)行洗脫,解吸曲線見圖4。

        從不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)乙醇溶液對洗脫效果的影響來看,總的效果是乙醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)越高,總黃酮洗脫的速率越快,但差別不是很大。另外,還測定了3種質(zhì)量分?jǐn)?shù)乙醇溶液的洗脫率,50%、70%、90%質(zhì)量分?jǐn)?shù)乙醇溶液對總黃酮的洗脫率分別為87.79%、95.35%、91.56%。綜合來看差別不大,但是乙醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)選在70%稍好。

        2.7 不同洗脫速率對大孔樹脂洗脫性能的影響

        按1.2.5.4方法,選擇3種洗脫流速進(jìn)行洗脫,洗脫曲線如圖5所示。

        從圖5中可以看出,洗脫速率越快,總黃酮出峰時間越早。洗脫流速為3BV/h時,洗脫體積為2 BV時黃酮質(zhì)量濃度即達(dá)到最大;洗脫流速為2BV/h時,對應(yīng)的洗脫體積為3BV;而洗脫流速為1BV/h時,洗脫體積為4BV后流出液總黃酮質(zhì)量才開始下降。另外,測定了3種洗脫流速下總黃酮的洗脫率,洗脫速率下為1、2、3BV/h時,AB-8大孔樹脂對總黃酮的洗脫率分別為95.35%、93.56%和76.67%。因此,洗脫速率為3BV/h時,出峰時間最短,但洗脫率最低;洗脫速率為1BV/h時,洗脫率最高,但是出峰時間最長,而且拖尾嚴(yán)重,生產(chǎn)周期較長。因此,選擇最佳洗脫速率為2BV/h。

        2.8 大孔樹脂吸附后總黃酮純度比較

        根據(jù)氯化鋁法測定吸附前后黃酮的含量,得出大孔樹脂吸附前紫蘇莖總黃酮純度為11.3%;經(jīng)過大孔樹脂吸附純化后的總黃酮純度為50.7%,說明AB-8樹脂適合分離以紫蘇莖為原料提取得到的總黃酮。

        圖5 不同洗脫流速對AB-8洗脫性能的影響Fig.5 Effect of elution rate on desorption capacity of macroporous resin AB-8

        3 結(jié) 語

        本研究從吸附性能、上樣質(zhì)量濃度、上樣速率、洗脫濃度、洗脫速率等方面考察了紫蘇莖總黃酮的分離工藝。靜態(tài)吸附試驗(yàn)表明,AB-8大孔樹脂對紫蘇莖總黃酮的吸附量較高;動態(tài)吸附試驗(yàn)表明,上樣速率與上樣質(zhì)量濃度分別為1BV/h和0.15mg/mL,乙醇洗脫的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為70%,洗脫速率為2BV/h時,總黃酮洗脫率為93.56%,總黃酮純度可提高4.5倍。

        [1] 劉大川,王靜,蘇望懿,等.紫蘇的開發(fā)研究及進(jìn)展[J].武漢工業(yè)學(xué)院學(xué)報(bào),2000(4):1-3.

        [2] 鄒盛勤,劉坤,陳武.紫蘇不同部位中烏索酸和齊墩果酸的含量比較[J].食品工業(yè)科技,2008(4):284-286.

        [3] 李秀信,汪曉峰,王蘭珍,等.紫蘇莖中黃酮類化合物的提取及鑒定[J].西北農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2002,11(4):49-51.

        [4] 聶犇,余陳歡,王芳芳,等.大孔樹脂分離純化紫蘇總黃酮的工藝研究[J].中華中醫(yī)藥學(xué)刊,2008(2):423-425.

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