熊建飛,周光明,何 強,許 麗,張 磊,吳利敏
(1.西南大學化學化工學院,發(fā)光與實時分析教育部重點實驗室,重慶400715;2.重慶大學三峽庫區(qū)生態(tài)環(huán)境教育部重點實驗室,重慶400045)
離子色譜法測定玄參中的單糖和低聚寡糖
熊建飛1,周光明1,何 強2,*,許 麗1,張 磊1,吳利敏1
(1.西南大學化學化工學院,發(fā)光與實時分析教育部重點實驗室,重慶400715;2.重慶大學三峽庫區(qū)生態(tài)環(huán)境教育部重點實驗室,重慶400045)
建立陰離子交換色譜-脈沖安培檢測法測定玄參中的葡萄糖、蔗糖、果糖和水蘇糖的方法。以METROSEP CARB 1(150mm×4.0mm)陰離子交換柱為分離柱,脈沖安培檢測,30mmol/L NaOH溶液為淋洗液等度洗脫,超聲水提法提取玄參中的糖。峰面積的相對標準偏差為0.56%~9.01%,線性范圍1~50mg/L,檢出限為0.0452~0.0921mg/L,相關(guān)系數(shù)R為0.9931~0.9998,加標回收率在96.52%~109.56%之間。該方法預(yù)處理簡單,準確度高,適用于快速測定玄參中的單糖和低聚寡糖。
陰離子交換,脈沖安培,等度洗脫,超聲水提,玄參,單糖,低聚寡糖
玄參為玄參科,玄參屬植物的干燥根,具有涼血滋陰、瀉火解毒的功效。玄參中含有多種成分,如有機酸類、黃酮類、環(huán)烯醚萜類、甾醇、揮發(fā)油、糖類等[1]。玄參中的糖類主要為單糖和低聚寡糖,胡禮勇等人[2]從玄參中分離得到一種四糖,并經(jīng)核磁共振譜圖分析鑒定為水蘇糖。水蘇糖是天然存在的一種四糖,具有多種生理功能:能夠促進體內(nèi)有益菌增殖,改善消化道內(nèi)環(huán)境;調(diào)節(jié)免疫、降血糖、降血脂,促進腸道對鈣、鎂等微量元素的吸收[3];在防癌、抗癌、抗衰老等方面也有重要作用。目前,關(guān)于中草藥的化學成分研究大多集中在酮類、苷類、萜類、有機酸、甾醇、脂類等[4-7],而糖類化合物的研究大多數(shù)是多糖類物質(zhì)[8],單糖和低聚寡糖的研究相對較少,因此測定玄參中單糖和低聚寡糖,尤其是水蘇糖的含量,可為進一步開發(fā)利用玄參提供參考依據(jù)。測定糖的方法主要有毛細管電泳色譜法[9]、氣相色譜法[10]、高效液相色譜法[11]等,它們大多有需要衍生化處理或靈敏度低等缺陷。離子色譜法測定糖,樣品前處理簡單,無需衍生,且靈敏度高。糖能夠在堿性環(huán)境中解離成陰離子,能夠用陰離子交換柱進行分離,在pH≥12的環(huán)境中糖能夠在電極上發(fā)生氧化還原反應(yīng),可以用脈沖安培檢測器檢測。離子色譜法測定的糖一般是單糖和二糖,而四糖的測定則較為少見。四糖的保留能力較強,往往需要在淋洗液中添加NaAc來減弱它的保留能力,有時還需要梯度洗脫[12],從而增加了實驗的復雜程度;而等度洗脫法避免了這些復雜的步驟,簡化了測定過程。
葡萄糖(分析純)、蔗糖、果糖(生化試劑) 成都市科龍化工有限公司;水蘇糖 分析純,Sigma公司;NaOH 分析純,重慶川東化工有限公司;玄參 購于本地中藥房;超純水。
(Metrohm)861 Advanced Compact IC、METROSEP CARB 1(150mm×4.0mm)陰離子交換柱、脈沖安培檢測器、IC-Net 2.3色譜工作站 瑞士萬通公司;電子天平 上海精天電子儀器有限公司;隔膜真空泵 天津市騰達過濾器件廠;超聲波清洗器 上海必能信超聲波有限公司;布氏漏斗,0.45μm微孔濾膜。
METROSEP CARB 1(150mm×4.0mm)陰離子交換柱,脈沖安培檢測,淋洗液30mmol/L NaOH溶液,柱溫32℃,流速1.0mL/min,再生液200mmol/L NaOH溶液,加標定性,外標法峰面積定量。
1.3.1 標準溶液的配制 分別精密稱取葡萄糖、蔗糖、果糖0.1000g,放入100mL容量瓶中,加入20mL去離子水,攪拌溶解置入100mL容量瓶中定容至刻度,配成1000mg/L作為儲備液;稱取水蘇糖0.0050g,放入100mL容量瓶中,配成50mg/L作為儲備液。
1.3.2 淋洗液的配制 準確稱取8.0g NaOH固體于100mL容量瓶中溶解,轉(zhuǎn)入1000mL容量瓶中定容,配成200mg/L的NaOH溶液作為再生液。同樣的方法稱取1.2g NaOH固體溶解后,轉(zhuǎn)入1000mL容量瓶中定容,配制成30mg/L的NaOH溶液作為淋洗液。
中草藥的化學成分較為復雜,常規(guī)方法難以達到理想的提取效果,近年來發(fā)展起來的超聲波提取技術(shù)是一種較為理想的提取方法。超聲波能夠破壞細胞結(jié)構(gòu),使其在瞬間破裂,使有效成分得以釋放,提高了提取效率[13]。糖類化合物具有較好的水溶性,可以用水作提取溶劑,因此本實驗采用超聲水提法提取玄參中的糖。
將玄參切碎,稱取0.1g,放入100mL小燒杯中,加入20mL去離子水,室溫超聲10min,用布氏漏斗過濾,將濾液定容至100mL,0.45μm微膜濾紙過濾,取濾液10mL于100mL容量瓶中定容,進樣。
實驗分別考察了5、10、15、20、25、30、35、40、50mmol/L NaOH溶液對分離度的影響,結(jié)果表明當NaOH溶液的濃度低于20mmol/L時,峰的分離度較差,隨著淋洗液濃度的增大,峰形逐漸變好,當濃度為30mmol/L時,各個峰分離度較好,大于30mmol/L時果糖與水蘇糖分離度變差。因此本實驗選擇30mmol/L NaOH溶液為淋洗液。
分別設(shè)定柱溫為20、25、30、32、40℃,實驗結(jié)果表明,降低溫度峰的分離度稍有改變,峰形較好,但柱壓逐漸增大,隨著溫度的升高分離度變差,綜合考慮選擇柱溫為32℃。
分別設(shè)定流速為0.5、0.8、1.0、1.2、1.6mL/min,實驗結(jié)果表明,改變流速對分離度的影響很小,隨著流速的增大保留時間縮短,但柱壓升高,為了保護色譜柱和縮短分離時間,選擇1.0mL/min為流速。
在以上優(yōu)化好的條件下,測得10mg/L混合標準溶液的譜圖,橫坐標為保留時間(min),縱坐標為峰高(nA),如圖1所示。
圖1 4種糖的標準色譜圖Fig.1 Standards chromatography of 4 kinds of monosaccharides
將10mg/L的標準溶液連續(xù)5次進樣,分別計算峰高、峰面積的相對標準偏差(RSD)。計算結(jié)果如表1所示,由表1可知保留時間和峰高的相對標準偏差較大,而峰面積的相對標準偏差較小,因此本實驗采用加標定性法進行定性分析,采用外標法對峰面積定量。
表1 相對標準偏差RSD測定結(jié)果(%)Table 1 The results of relative standard deviation(%)
圖2 提取率與超聲時間的關(guān)系Fig.2 Effect of ultrasonoscope on extraction rate
表2 線性方程、線性范圍和儀器檢出限Table 2 Linear regression equations,linear ranges and detection limits
稱取0.1g樣品6份,按1.4中樣品處理方法進行樣品前處理,分別超聲5、10、15、20、25、30min。超聲時間對糖提取效率的影響如圖2、圖3所示,橫坐標為超聲提取時間(min),縱坐標為提取率(質(zhì)量分數(shù)%)。由圖2、圖3可知,提取時間對葡萄糖、蔗糖、果糖提取率的影響較大,對水蘇糖影響較小,隨著超聲時間的延長,水蘇糖的提取率略有下降。實驗發(fā)現(xiàn),超聲時間越長,溶液雜質(zhì)越多,使得過濾時間延長,因此本實驗選擇超聲時間為10min。
分別配制1、3、5、10、30、50mg/L葡萄糖、蔗糖、果糖和水蘇糖的混合標準溶液。分別測定六個混合標準溶液,Y為峰面積,X為濃度,繪制標準曲線,根據(jù)S/N=3計算儀器檢出限,結(jié)果如表2所示。
取玄參樣品5份,分別編號為1、2、3、4、5,按照1.4中樣品處理方法對樣品進行前處理,按1.2中色譜條件進行測定,樣品色譜圖如圖4所示,橫坐標為保留時間(min),縱坐標為峰高(nA)。測定結(jié)果如表3所示,由表3可知,不同部位的玄參根中糖的含量有少許差距。
表3 樣品測定結(jié)果(質(zhì)量分數(shù)%)Table 3 The results of the samples(mass fraction%)
圖3 樣品色譜圖Fig.3 Standards chromatography of sample
同時稱取兩份樣品0.1012g,其中一份加入標準物質(zhì),按照1.4樣品處理方法對樣品進行處理,測得加標回收率如表4所示。
表4 加標回收率Table 4 The results of recovery percentage
實驗測得玄參中水蘇糖的平均含量為9.37%,含量較高,因此玄參可以作為提取水蘇糖的一種原料。水蘇糖可以從玄參中被分離純化,進而制成一種中成藥,以提高玄參的藥用價值。果糖與水蘇糖的分離度不是很好,可能是二者在所選用的陰離子交換柱上具有較強相互作用引起的。
[1]胡瑛瑛,黃真.玄參的化學成分及藥理作用研究進展[J].浙江中醫(yī)藥大學學報,2008,32(2):268-270.
[2]胡禮勇,鄧軍娥,柯偉,等.玄參寡聚糖 SnOS-A的分離純化、理化性質(zhì)和結(jié)構(gòu)研究[C].中國藥學會學術(shù)年會,2004.
[3]梁麗新.功能性低聚糖-水蘇糖[J].中國食品添加劑,2004(4):51-54.
[4]Jian Han,Min Ye,Man Xu,et al.Characterization of flavonoids in the traditional Chinese herbal medicine-Huangqin by liquid chromatography coupled with electrospray ionization mass spectrometry[J].Journal of Chromatography B,2007,848:355-362.
[5]DP Elder,D Snodin,ATeasdale.Analytical approaches for the detection of epoxides and hydroperoxides in active pharmaceutical ingredients,drug products and herbals[J].Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis,2010,51:1015-1023.
[6]張嫚麗,霍長虹,劉麗,等.土木香藥材HPLC指紋圖譜研究及土木香內(nèi)酯和異土木香內(nèi)酯測定[J].中草藥,2010,41(9):1539-1542.
[7]王寧,武衛(wèi)紅,李中文,等.基于近紅外光譜技術(shù)對雙黃連口服液中黃芩苷、綠原酸和連翹苷進行現(xiàn)場快速定量分析方法的研究[J].藥物分析雜志,2009,41(9):1477-1478.
[8]邵力成,尹登科,高向東.天然多糖免疫細胞受體的研究進展[J].藥物生物技術(shù),2006,13(5):389-392.
[9]Cristiana Campa,Edi Baiutti,Anna Flamigni.Capillary electrophoresis of sugar acids[J].Methods in Molecular Biology,2008,384:307-355.
[10]Zhang Wei,He Hongbo,Zhang Xudong.Determination of neutral sugars in soil by capillary gas chromatography after derivatization to aldononitrile acetatesSoil[J]. Biology & Biochemistry,2007,39:2665-2669.
[11]Paul B Filson,Benjamin E,Dawson-Andoh.Characterization of sugars from model and enzyme-mediated pulp hydrolyzates using high-performance liquid chromatography coupled to evaporative light scattering detection[J].Bioresource Technology,2009,100:6661-6664.
[12]李仁勇,梁立娜,牟世芬,等.離子色譜-脈沖安培檢測白醋和豆腐水中單糖和大豆低聚糖[J].分析化學,2009,37(5):725-728.
[13]汪茂田,謝培山,王忠東,等.天然有機化合物提取分離與結(jié)構(gòu)鑒定[M].北京:化學工業(yè)出版社,2004:36-37.
Determination of monosaccharides and oligosaccharides in figwort root by ion chromatography
XIONG Jian-fei1,ZHOU Guang-ming1,HE Qiang2,*,XU Li1,ZHANG Lei1,WU Li-min1
(1.Key Laboratory on Luminescence and Real-Time Analysis(Southwest University),Ministry of Education,School of Chemistry and Chemical Engineering,Southwest University,Chongqing 400715,China;2.Key Laboratory of Three Gorges Reservoir Region’s Eco-Environment,Ministry of Education,Chongqing University,Chongqing 400045,China)
An anion exchange chromatography-pulsed amperometric detection method has been proposed for determination of glucose,sucrose,fructose,stachyose in figwort root.The analytical column was METROSEP CARB 1(150mm×4.0mm).The elution was performed using 30mmol/L sodium hydroxide isocratic elution and the column temperature was 32℃.A ultrasonoscope was used for extracting sugars.The RSD of area ranged from 0.56%to 9.01%,the linear range was 1~50mg/L,the detection limits was 0.0452~0.0921mg/L,the related coefficient(R)was 0.9931~0.9998,and the spike recoveries ranged from 96.52%to 109.56%.The method was simple and had a high sensitivity.So this method can be applied for the determination of monosaccharides and oligosaccharides in figwort root.
anion exchange chromatography;pulsed amperometric detection;isocratic elution;ultrasonoscope;figwort root;monosaccharides;oligosaccharides
TS207.3
A
1002-0306(2012)07-0340-04
2011-06-15 *通訊聯(lián)系人
熊建飛(1984-),男,碩士研究生,研究方向:離子色譜。
國家科技部重大專項項目(2008ZX07315)。