吳亮亮，楊會成，廖妙飛，鐘明杰，郝云彬，鄭 斌，*

（1.浙江海洋學院食品醫(yī)藥學院，浙江舟山 316000;2.浙江省海洋開發(fā)研究院，浙江舟山 316100)

不同對蝦中多酚氧化酶的提取比較及在蝦體的分布研究

吳亮亮1，楊會成2，廖妙飛2，鐘明杰2，郝云彬2，鄭 斌2，*

（1.浙江海洋學院食品醫(yī)藥學院，浙江舟山 316000;2.浙江省海洋開發(fā)研究院，浙江舟山 316100)

用丙酮法和勻漿浸提法分別對南美白對蝦和中華管鞭蝦進行多酚氧化酶的提取，結果表明，在同樣的提取條件下，中華管鞭蝦的酶活大于南美白對蝦，勻漿浸提法提取的酶活比丙酮法高1.5倍;同時對中華管鞭蝦的提取條件料液比、緩沖液pH、浸提時間、水浴溫度做了研究，通過正交實驗得到當料液比1∶4，緩沖液pH8，浸提時間3h，水浴溫度45℃條件下提取的酶具有最大的活性;進一步研究中華管鞭蝦的多酚氧化酶在蝦體中的分布情況，得出蝦頭部位多酚氧化酶含量較高，蝦尾和蝦身含量較低。

對蝦，多酚氧化酶，酶活力，酶分布

酚氧化酶（Phenoloxidase，PO)，又稱多酚氧化酶（Polyphenoloxidase，PPO)或酪氨酸酶（Tyrosinase)[1]。它分布很廣，在微生物、植物、動物和人體中都有存在。研究發(fā)現(xiàn)，該酶是生物體合成黑色素的關鍵酶[2]。而蝦褐變的主要原因是多酚氧化酶在有氧條件下催化體內(nèi)的L-多巴和酪氨酸轉(zhuǎn)化為多巴色素和其他發(fā)色基團，進一步氧化形成黑色素物質(zhì)，因此對PPO的研究日益引起國內(nèi)外學者的關注。我國是蝦類養(yǎng)殖和捕撈大國，僅2010年對蝦養(yǎng)殖產(chǎn)量就已達116萬t，約占世界對蝦產(chǎn)量的43.7%，仍有增長的趨勢。2008年我國出口到美國的對蝦數(shù)量已占據(jù)第四位，但由于蝦類黑變嚴重以及違法添加劑的過量使用，引起蝦體品質(zhì)下降，有害殘留物超標，導致其價格在亞洲的對蝦輸出國中墊底，僅為4766美元/t，比美國的進口對蝦平均價格低31%，出口日本的對蝦價格也比市場平均價格低27%。因此，蝦類的黑變抑制和鮮度維持，直接關系到我國的出口創(chuàng)匯以及人們的食用安全。國內(nèi)外大量研究表明，蝦類的黑變與自身所攜帶的多酚氧化酶密切相關，因此，研究海水蝦類PPO分布規(guī)律以及黑變機理，對于延長海水甲殼類貨架期，實現(xiàn)優(yōu)質(zhì)優(yōu)價具有重要意義。本文以南美白對蝦和中華管鞭蝦為原料，研究其PPO的提取方法和最佳提取條件，以及PPO在中華管鞭蝦體的分布情況，為進一步研究蝦類的褐變原理以及褐變的有效抑制提供依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

新鮮的南美白對蝦、中華管鞭蝦 購自舟山北門菜場，大小均勻，帶回實驗室存于-18℃冰箱中;L-3-（3，4-二羥基苯基)-2-甲基丙氨酸（L-DOPA) 上海安譜科學儀器公司;三（羥甲基)氨基甲烷、丙酮（分析純) 國藥集團化學試劑有限公司。

UV-2102C型紫外可見分光光度計 上海儀器有限公司;電熱恒溫水浴鍋 上海分析儀器廠;CR21G冷凍離心機 日本日立。

1.2 實驗方法

1.2.1 提取方法的選擇 丙酮法[3-4]：稱取半解凍后的蝦（帶頭)20g，加入80mL預冷至-18℃的丙酮（W/V= 1∶4)，用高速組織勻漿機打碎，真空抽濾（0.5MPa)，然后用冰丙酮反復沖洗殘渣，冷凍干燥得丙酮粉。取5g丙酮粉加入500mL pH8.0的預冷Tris-HCl緩沖液，磁力攪拌20min，然后在轉(zhuǎn)速12000r/min，溫度4℃條件下，冷凍離心10min，所得上清液即為粗酶液。樣品加入2.5mL的L-3-（3，4-二羥基苯基)-2-甲基丙氨酸（L-DOPA)，45℃水浴10min，在490nm處比色測定吸光值。

勻漿浸提法[4]：稱取半解凍后的蝦（帶頭)20g，與80mL pH8.0的Tris-HCl（W/V=1∶4)混合后，4℃下破碎成肉糜，靜置3h，然后于4℃，12000r/min條件下，冷凍離心10min，后取其上清液，作為粗酶液。樣品加入2.5mL的L-DOPA，45℃水浴10min，在490nm處比色測定吸光值。

1.2.2 提取條件的篩選 按照上述1.2.1中最佳提取方法，選擇料液比、pH、浸提時間、水浴溫度4個因素作為優(yōu)化提取條件的效應因子，并逐一研究。

1.2.2.1 料液比對提取酶活的影響 固定其他條件，分別加入pH8.0的預冷Tris-HCl緩沖液20、40、60、80、100mL，最后比色測定吸光值。

1.2.2.2 緩沖液pH對提取酶活的影響 固定其他條件，分別加入pH為6.0、7.0、8.0、9.0、10.0的預冷Tris-HCl緩沖液80mL，最后比色測定吸光值。

1.2.2.3 浸提時間對提取酶活的影響 固定其他條件，分別靜置浸提2、3、4、5、6h，最后比色測定吸光值。

1.2.2.4 水浴溫度對提取的影響 固定其他條件，分別在25、35、45、55、65℃水浴，最后比色測定吸光值。

1.2.3 正交實驗 采取4因素3水平正交實驗設計，研究料液比、緩沖液pH、浸提時間、水浴溫度4個變量對中華管鞭蝦的PPO提取效果的影響，并依次設定A、B、C、D，按正交表L9（34)安排實驗，各因素正交水平如表1。

表1 正交實驗因素水平表Table 1 Factor list of orthogonal experiment

1.2.4 PPO在中華管鞭蝦體分布研究 分別取中華管鞭蝦的蝦頭、蝦身、蝦尾各20g左右，按照1.2.1中勻漿浸提法，比色測定不同部位的酶的酶活[5]。

蛋白質(zhì)濃度的測定[6-7]：稱取10mg牛血清白蛋白，溶于蒸餾水中并定容至100mL，制成100μg/mL的標準蛋白質(zhì)溶液。稱取100mg考馬斯亮藍G-250，溶于50mL 95%乙醇中，加入85%（m/v)的磷酸100mL，最后用蒸餾水定容到1000mL，制成考馬斯亮藍G-250試劑。

繪制標準曲線，同時準確吸取1.0mL樣品溶液于一支干燥潔凈的試管中，加入考馬斯亮藍G-250試劑5mL，搖勻，室溫靜置2min，以標準曲線1號管為對照，用分光光度計在595nm處比色，記錄吸光值，計算結果。

1.2.5 酶活 每分鐘吸光值增加0.001定義為1個酶活力單位（A490×103/min)[8]。

2 結果與討論

2.1 PPO提取方法的選擇

表2 兩種提取方法酶活的對比Table 2 Contrast of enzyme activity on two extraction methods

通過表2可以看出，采用勻漿浸提法提取的兩種蝦中PPO的酶活都比丙酮法提取的結果高，其中勻漿浸提中華管鞭蝦和南美白對蝦得到的PPO的酶活分別是丙酮法的1.5倍和1.4倍。并且無論采用哪種方法提取PPO，中華管鞭蝦的酶的酶活均高于南美白對蝦。因此后續(xù)實驗均采用中華管鞭蝦做PPO的提取對象。

2.2 勻漿浸提法最佳提取條件的選擇

2.2.1 料液比對提取PPO活性的影響 由圖1可以看出，酶的活性隨著緩沖液體積的增大而增大，在緩沖液體積為80mL，即料液比1∶4時達到最大值，原因可能是緩沖液體積較少時，不能夠與樣品充分接觸，提取的酶較少;當緩沖液超過80mL時，緩沖液過多，稀釋了酶液，從而導致酶的濃度降低。

圖1 料液比對提取PPO的影響Fig.1 The effect of different ratio of sample weight to the solvent volume on extraction

2.2.2 緩沖液pH對提取PPO活性的影響 從圖2中可以看出，當緩沖液pH為8時，提取的PPO的酶活最大，此時酶活為36.9A490×103/min;當緩沖液pH高于8或者低于8時，提取的PPO酶活都會降低。原因可能是PPO催化底物反應需要適宜的pH，高于或低于此pH都會影響PPO的活性。

圖2 緩沖液pH對提取的影響Fig.2 The effect of different pH on extraction

2.2.3 浸提時間對提取PPO活性的影響 由圖3可以看出，總趨勢是酶的活性隨著浸提時間的延長而逐漸增大，在2～4h區(qū)間內(nèi)，隨著浸提時間的延長，酶的活性增大較快，這段時間可能是勻漿后的原料蝦中的PPO濃度比緩沖液中的高，所以能不斷地溶于緩沖液中，從而使浸提效率不斷升高;浸提4h之后，酶的活性略有下降，一方面可能是緩沖液提取的PPO速率達到一個平衡，另一方面可能是由于環(huán)境等其他原因?qū)е翽PO分子結構被破壞，從而使整體的酶的活性略有降低。

圖3 浸提時間對提取的影響Fig.3 The effect of different extraction time on extraction

2.2.4 溫度對提取PPO活性的影響 從圖4可以看出，隨著溫度的升高，酶活先升高后降低，在45℃酶活達到最大34.5A490×103/min，當溫度高于45℃時，酶的活性很快降低。當溫度在25～45℃范圍內(nèi)，溫度較低，酶的活性不高;在達到45℃時，接近于酶的最適溫度，發(fā)揮最大活性;當超過45℃時，酶活會降低;當溫度達到65℃，酶由于高溫導致失活，活性迅速降低。

圖4 溫度對提取的影響Fig.4 The effect of different temperatures on extraction

2.3 正交實驗結果

表3PPO提取正交實驗結果Table 3 Result of the orthogonal test

由表3可知，4個因素對PPO提取的影響順序是B> A>D>C，由K值和極差值R可知，在料液比1∶4、緩沖液pH8.0、浸提3h、水浴溫度45℃條件下，提取的酶活最大，重復三次平行實驗驗定此條件下的酶活為35.80、38.20、37.70A490×103/min，平均值為37.23A490×103/min。這與單因素實驗稍有不同的是浸提時間，由于浸提時間極差值最小，對PPO的提取影響較小，而且浸提時間過長導致酶暴露于細胞外時間過長，活性有所降低，所以考慮實驗的各種因素，浸提時間可定為3h。

2.4 PPO在中華管鞭蝦中的分布

2.4.1 考馬斯亮藍法測蛋白質(zhì)標準曲線

圖5 蛋白質(zhì)標準曲線Fig.5 Protein standard curve

2.4.2 PPO在中華管鞭蝦體分布實驗結果 從表4可以看出，從蝦頭提取的PPO的酶活最大，酶的比活力也最大，可以初步得出PPO在蝦頭的含量最大，蝦身和蝦尾提取的PPO的酶活要低一些，且蝦尾的PPO的酶活和比活力都高于蝦身。而實際生產(chǎn)中，蝦死亡后最開始黑變的部位是頭部，接著肌肉變軟，各種微生物入侵蝦體，在多種酶和微生物的作用下蝦體開始腐敗，隨后尾部逐漸出現(xiàn)黑色斑點，殼肉逐漸脫離，最后是蝦身變黑[9-10]。這與實驗所得出的PPO在整蝦的分布基本相符合，可以初步判斷PPO主要集中在頭尾，蝦身部分比較少，活性較低。因此，今后對PPO的研究實驗將更多地集中在蝦頭部分。

表4 PPO在中華管鞭蝦體分布結果Table 4 The distribution of PPO in solenocera crassicornis

3 結論

3.1 通過對南美白對蝦和中華管鞭蝦PPO的提取方法的研究，可以看出用勻漿浸提法提取的酶活較高，丙酮提取法對PPO的分子結構有一定的破壞作用。

3.2 中華管鞭蝦勻漿浸提法最佳條件為：料液比1∶4，緩沖液pH8.0，浸提時間3h，水浴溫度45℃，此條件下PPO的酶活最大為37.23A490×103/min。

3.3 中華管鞭蝦PPO主要分布于蝦頭，提取的酶活和比活力最大，其次是蝦尾，蝦身酶活和比活力最低。對蝦類黑變主效應因子多酚氧化酶提取及分布規(guī)律的研究，將為后續(xù)保鮮劑的開發(fā)以及實際生產(chǎn)過程中的防護起到積極作用。

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Study on extraction of polyphenoloxidase and enzyme distribution on different shrimps

WU Liang-liang1，YANG Hui-cheng2，LIAO Miao-fei2，ZHONG Ming-jie2，HAO Yun-bin2，ZHENG Bin2，*
（1.School of Food and Pharmacy&Medical School，Zhejiang Ocean University，Zhoushan 316000，China;2.Zhejiang Marine Development Research Institute，Zhoushan 316100，China)

Extraction of polyphenoloxidase from penaeus vannamei and solenocera crassicornis were studied using two methods，acetone method and homogenate method.It was found that the activity of polyphenoloxidase in solenocera crassicornis was higher than that in penaeus vannamei under the same extraction condition.The enzyme activity extracted by homogenate method was 1.5 times higher than acetone method.Orthogonal test result showed that the optimal extraction conditions were as follows：Solid to solvent ratio 1∶4，pH8.0，extraction time 3h，extraction temperature 45℃.And the distributed rule of polyphenoloxidase in solenocera crassicornis was studied.The results indicated that polyphenoloxidase activity was higher in the part of prawn’s head than that in the part of body and trail.

shrimp;polyphenoloxidase;enzyme activity;enzyme distribution

TS254.1

A

1002-0306（2012)07-0055-04

2011－05－02 *通訊聯(lián)系人

吳亮亮（1986-)，男，碩士研究生，研究方向：水產(chǎn)品加工與應用。

國家國際科技合作專項（2010DFB33030);浙江省重點科技創(chuàng)新團隊項目（2011R09031);浙江省優(yōu)先主題重點農(nóng)業(yè)項目（2009C12008);“十二五”國家科技支撐計劃項目子課題（2012BAD29B06)。