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        一株海水細(xì)菌的分離鑒定及其脫硫效果的初步驗(yàn)證

        2012-10-21 08:31:34王李寶萬夕和張朝暉
        關(guān)鍵詞:弧菌硫化物海水

        王李寶,沈 輝,凌 云,黎 慧,萬夕和,鐘 非,張朝暉

        (江蘇省海洋水產(chǎn)研究所,江蘇南通 226007)

        沉積物是各種海洋污染物的源和匯,隨著海洋污染的加劇,沉積物中的有機(jī)質(zhì)、氮、磷、重金屬、硫化物等的含量逐漸增加,不但危害底棲生物的生存環(huán)境和水產(chǎn)品質(zhì)量,而且容易造成水體的二次污染,這種情況在海水養(yǎng)殖池塘里表現(xiàn)得尤為突出[1]。因此,去除沉積環(huán)境中的污染物,或?qū)κ芪廴镜某练e環(huán)境進(jìn)行生物修復(fù),是維持海水養(yǎng)殖健康發(fā)展的有效手段。

        迄今為止,已報(bào)道的自然界中有關(guān)氧化硫化物的微生物主要有絲狀硫細(xì)菌、光合硫細(xì)菌和無色硫細(xì)菌[2],其中脫硫桿菌屬Thiobacillus的8種桿菌能在厭氧條件下,利用硝酸鹽為電子受體同步去除硫化物[3]。由于以上脫硫微生物作為自養(yǎng)菌耐有機(jī)負(fù)荷的能力相對(duì)均較弱,且同步脫氮脫硫理論目前絕大部分是應(yīng)用在工業(yè)領(lǐng)域。本研究從異養(yǎng)硝化細(xì)菌中分離得到一株脫硫細(xì)菌NG6-3,并從形態(tài)學(xué)、生理生化及分子生物學(xué)方面對(duì)該菌進(jìn)行了初步研究,為今后利用該菌株對(duì)沉積物環(huán)境中硫化物進(jìn)行生物降解奠定一定的基礎(chǔ)。

        1 材料和方法

        1.1 硫化物氧化細(xì)菌的篩選和形態(tài)觀察

        1.1.1 沉積物樣品

        啟東呂四鎮(zhèn)某海水養(yǎng)殖池塘,多年蝦蟹混養(yǎng)池,離池底液面5~10 cm的暗黑色泥樣。

        1.1.2 分離和篩選培養(yǎng)基

        1.1.2.1 分離培養(yǎng)基

        采用普通的2116E培養(yǎng)基。

        1.1.2.2 篩選培養(yǎng)基

        (NH4)2SO40.5 g,蔗糖 5.00 g ,牛肉膏 1.00 g,Na2S 飽和液 1.5 mL,1 000 mL 陳海水,pH 7.6~7.8。

        1.1.3 分離和篩選步驟

        1.1.3.1 異養(yǎng)硝化細(xì)菌的分離

        按彭光浩等[4]方法,采用稀釋平板法分離得到菌株,并在平板上用格里斯(Griess)試劑直接點(diǎn)滴判定硝化活性,選取硝化活性較強(qiáng)者在分離培養(yǎng)基平板上劃線純化,作為脫硫細(xì)菌篩選的供試菌株。得純菌113株。

        1.1.3.2 脫硫細(xì)菌的篩選

        將上述純133株菌株分別接至2116E培養(yǎng)基(不含瓊脂)中,37℃培養(yǎng)24 h,再按2%(v/v)的接種量轉(zhuǎn)接至篩選培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng),適時(shí)測定培養(yǎng)基中硫化物含量,以篩選出具有硫化物降解能力的菌株。在113株菌株中篩選得到一株具有較強(qiáng)硫化物降解能力的菌株,編號(hào)NG6-3,用于后續(xù)研究。

        1.2 細(xì)菌初步鑒定

        1.2.1 形態(tài)學(xué)觀察

        將菌株NG6-3在分離培養(yǎng)基上,觀察菌落形態(tài),在光學(xué)顯微鏡下觀察革蘭氏染色情況、鞭毛形態(tài)及芽孢形態(tài)[5]。

        1.2.2 生理生化檢查

        取純培養(yǎng)的菌株NG6-3,分別接種于細(xì)菌生化特性鑒定用培養(yǎng)基中,按常規(guī)進(jìn)行氧化酶、接觸酶、糖(醇及苷)類代謝、H2S、吲哚、MR(V-P)試驗(yàn)、硝酸鹽還原、枸櫞酸鹽利用等,參照《常見細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》[5]進(jìn)行。并結(jié)合API-32E細(xì)菌鑒定系統(tǒng)的生化反應(yīng)結(jié)果,對(duì)NG6-3的種屬進(jìn)行初步判定[6]。

        1.2.3 16S rRNA基因序列測定與系統(tǒng)發(fā)育學(xué)分析

        1.2.3.1 菌株NG6-3基因組DNA的提取

        取對(duì)數(shù)培養(yǎng)期的菌懸液1.5 mL,采用酚-氯仿法提取細(xì)菌DNA[7-8]。加100 μL TE溶液溶解。

        1.2.3.2 菌株NG6-3部分序列分析

        以提取的DNA為模板,采用細(xì)菌通用引物(正向27F:5’-GAGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3’,反向1495R:5-CTACGGCTACCTTGTTACGA-3’,)進(jìn)行 16S rRNA 基因擴(kuò)增。反應(yīng)條件:96 ℃預(yù)變性 5 min;95 ℃變性30 s;52℃退火l min 30 s;72℃延伸l min 30s;30個(gè)循環(huán),延伸10 min。PCR產(chǎn)物經(jīng)檢測純化后,由上海生物工程技術(shù)公司進(jìn)行基因測序。

        對(duì)供試菌株NG6-3基因序列通過NCBI(NCBI菌株提交號(hào)EU081880.1)的Blast檢索系統(tǒng)進(jìn)行序列同源性分析,并用MEGA4.1軟件與從Genbank數(shù)據(jù)庫中獲得的序列相似性較高的菌株的序列進(jìn)行多序列匹配排列(Multiple Alignments),采用鄰接法(neighbor joining method)獲得分支系統(tǒng)樹,并通過Bootstrap法(1 000次重復(fù))檢驗(yàn)。

        1.2.4 菌種分類位置的確定

        根據(jù)供試菌株形態(tài)、培養(yǎng)及理化特性測定的結(jié)果,主要依據(jù)《Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology.9thed》[9]、《Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology》[10]及相關(guān)資料,進(jìn)行種屬分類位置判定。

        1.3 安全性試驗(yàn)

        設(shè)待測菌株、陽性對(duì)照菌和陰性對(duì)照實(shí)驗(yàn)組,每組設(shè)2個(gè)平行,每個(gè)平行隨機(jī)選取暫養(yǎng)7 d的健康凡納濱對(duì)蝦50尾;每尾注射待測菌株、陽性對(duì)照菌和陰性對(duì)照50 μL,每天記錄其死亡情況。陽性對(duì)照為鰻弧菌,陰性對(duì)照為不接種處理。每株菌用107cfu/mL、106cfu/mL、105cfu/mL和104cfu/mL 4個(gè)濃度進(jìn)行肌肉注射。

        1.4 脫硫效果的初步驗(yàn)證

        取50 mL以硫化鈉作為惟一硫源的液體培養(yǎng)基于250 mL的錐形瓶中,接種1 mL處于對(duì)數(shù)生長期的供試菌液,以沒有接種菌液的培養(yǎng)基作為空白對(duì)照。調(diào)節(jié)初始pH為7.8,在30℃,靜置培養(yǎng),定期測定菌體生長量及培養(yǎng)基中硫化物質(zhì)量濃度。硫化物的測定采用碘量法[11]。

        2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果

        2.1 菌株NG6-3的鑒定結(jié)果

        2.1.1 供試菌株的分離和形態(tài)學(xué)觀察

        從上述泥樣分離純化得到一株具有氨氧化能力和脫硫能力的菌株,命名為NG6-3。菌株NG6-3在2116E培養(yǎng)基上培養(yǎng)48 h后形成直徑為1.5 mm、乳白色、邊緣整齊的細(xì)小菌落,圓形,表面濕潤,光滑,呈蠟狀(圖1)。在1 000倍光學(xué)顯微鏡下觀察,菌株NG6-3革蘭氏陰性,細(xì)胞為橢圓形,無芽孢,細(xì)胞大小為 0.5~1.0 μm×1.0~2.0 μm(圖 2)。

        進(jìn)一步對(duì)菌株NG6-3做磷酸鎢負(fù)染,透射電鏡下觀察呈短桿狀,無鞭毛(圖3)。

        圖1 NG6-3的菌落形態(tài)Fig.1 The colony of strain NG6-3

        圖2 NG6-3的顯微形態(tài)Fig.2 The morphology of strain NG6-3

        2.1.2 理化實(shí)驗(yàn)結(jié)果

        供試菌株NG6-3在法國梅里埃公司API-32E系統(tǒng)生化反應(yīng)結(jié)果見表,相應(yīng)的軟件進(jìn)行供試菌株的所屬分析表明與弧菌屬的相似性較高(98%)。其中鳥氨酸脫羧酶、賴氨酸脫羧酶、L-阿拉伯糖醇、酚紅、吲哚產(chǎn)生、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖反應(yīng)呈陽性,主要的生化反應(yīng)結(jié)果見表1。

        2.1.3 16S rRNA基因序列和系統(tǒng)發(fā)育學(xué)分析

        利用細(xì)菌通用引物,對(duì)菌株的16S rDNA序列進(jìn)行擴(kuò)增并測序,得到序列長度為957 bp(GenBank登錄號(hào)為EU081880)。將序列在NCBI數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行BLAST分析,該菌株與弧菌屬中部分菌株(CP001805.1)的相似性為99%,其在系統(tǒng)分類中位置如圖4所示。有關(guān)弧菌屬的細(xì)菌能夠在海水環(huán)境中同步去除硫化物和銨態(tài)氮的研究在國內(nèi)外還未見報(bào)道。

        2.2 菌株NG6-3的安全性試驗(yàn)結(jié)果

        圖3 菌株NG6-3的電鏡照片F(xiàn)ig.3 Electronic micrograph of the isolated strain NG6-3

        圖4 根據(jù)16S rRNA序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.4 Phylogenetic tree based on 16S rRNA sequence

        表1 菌株NG6-3的API32E生理生化實(shí)驗(yàn)結(jié)果Tab.1 Bio-chemical characteristics of strain NG6-3 by API32E test

        注射待測菌,生理鹽水和陽性對(duì)照后,每天記錄死亡數(shù),計(jì)算其累積死亡率,用SPSS17.0軟件對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,結(jié)果見表2。

        表2 NG6-3安全性試驗(yàn)中各組凡納濱對(duì)蝦的累積死亡率(%)Tab.2 The cumulative mortality of Litopenaeus vannamei in safety test(%)

        NG6-3 的 107cfu/mL、106cfu/mL、105cfu/mL 和 104cfu/mL注射組與生理鹽水注射組在觀察的兩周時(shí)間內(nèi)均無死亡現(xiàn)象;而陽性對(duì)照鰻弧菌的107cfu/mL和106cfu/mL注射組均引起對(duì)蝦大量死亡,顯著高于其他注射組(P<0.05)。由此可知,NG6-3 對(duì)凡納濱對(duì)蝦無毒害作用。

        2.3 菌株NG6-3脫硫效果的初步研究

        接種有供試菌NG6-3的培養(yǎng)基中硫化物含量第2天就為對(duì)照組的44.3%,第5天開始,在培養(yǎng)基中幾乎測不到硫化物的存在,隨著硫化物含量的降低菌株生長量逐漸增大(圖5)。

        圖5 菌株NG6-3的硫化物出去除效果Fig.5 The removal effect of sulfide based on strain NG6-3

        3 討論

        目前報(bào)道的具有硫化物氧化能力的微生物有蝕陰溝硫桿菌Thiobacillus concretivorus[12]、酒色著色菌Chromatium vinosum[13]、氧化亞鐵硫桿菌 Thiobacillus ferrooxidans[13]、氧化硫硫桿菌 Thiobacillus thiooxidans[15]、排硫桿菌 Thiobacillus thioparus[16]、鏈霉菌 Streptomyces sp.strainSH91[17]和弓形菌 Arcobacter sp.[18]等?;【诤K蟹植紡V泛,是海水環(huán)境中的常見細(xì)菌,部分弧菌在一定條件下可導(dǎo)致海水養(yǎng)殖對(duì)象致病[19]?;【诤Kh(huán)境中長期存在,對(duì)環(huán)境中的各種營養(yǎng)物質(zhì)產(chǎn)生了依賴作用,可以利用環(huán)境中的不同物質(zhì)作為營養(yǎng)而生存?;【鷮賄ibrio的哈氏弧菌Vibrio harveyi、費(fèi)氏弧菌Vibrio fisher早期曾經(jīng)均被作為發(fā)光細(xì)菌用于在水環(huán)境污染物的檢測,后并被證實(shí)多種弧菌均為非致病菌[20]。本研究中分離得到一株既能利用Na2S,又能進(jìn)行氨氧化作用的細(xì)菌,并結(jié)合了初步的安全性試驗(yàn),排除了其潛在的致病性。對(duì)擴(kuò)大海水養(yǎng)殖環(huán)境改良菌的篩選范圍,提供了一個(gè)大膽的思路。

        早在上世紀(jì),BISOGNI等[21]利用富集培養(yǎng)的脫氮硫桿菌以硫代硫酸鹽和硫化物為電子供體進(jìn)行了小試的自養(yǎng)反硝化研究,表明脫氮硫桿菌是典型的能夠同時(shí)利用硫化物和硝酸鹽的細(xì)菌。同步去除氨氮和硫化物的研究最早集中在制藥廢水、食品發(fā)酵廢水、造紙廢水等工業(yè)廢水的處理中,將其方法借用到水產(chǎn)養(yǎng)殖環(huán)境修復(fù)應(yīng)用中來,也不失為一種捷徑。本研究就是基于此理論基礎(chǔ),先分離出一株具有較強(qiáng)能力的異養(yǎng)型氨氧化細(xì)菌,在此基礎(chǔ)上在分離出一株能利用Na2S的細(xì)菌,以期在同一環(huán)境中實(shí)現(xiàn)對(duì)氨氮和硫化物的同步去除作用。

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