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        香荷膠囊中香菇總多糖提取工藝

        2012-09-12 12:07:36范彥博周才新張義生石新華李赫宇
        食品研究與開發(fā) 2012年8期
        關(guān)鍵詞:清液項下香菇

        范彥博,周才新,張義生,石新華,李赫宇

        (1.武漢市中醫(yī)醫(yī)院,湖北武漢430014;2.武漢市中醫(yī)藥研究所國家中管局中藥制劑三級實驗室,湖北武漢430014;3.天津市益倍建生物技術(shù)有限公司,天津300457)

        香荷膠囊中香菇總多糖提取工藝

        范彥博1,2,周才新1,張義生1,石新華1,李赫宇3

        (1.武漢市中醫(yī)醫(yī)院,湖北武漢430014;2.武漢市中醫(yī)藥研究所國家中管局中藥制劑三級實驗室,湖北武漢430014;3.天津市益倍建生物技術(shù)有限公司,天津300457)

        研究香荷膠囊中香菇總多糖的最佳提取工藝。采用正交試驗法,考察加水量、提取時間和提取次數(shù)3個因素對提取工藝的影響;采用紫外分光光度法進行測定。香荷膠囊中香菇總多糖的最佳提取工藝為:加入12倍量水,沸水提取3次,每次1 h。優(yōu)選的工藝簡便可行、穩(wěn)定性好。

        香荷膠囊;香菇;正交試驗;提取工藝

        Abstract:To optimize the extraction process of polysaccharide in Xianghe Capsule.The optimum extraction was investigated by the orthogonal design and UV-spectrophotometry.The optimum extraction conditions:ratio of solid to liquid 12∶1,boiling water extraction for 1h and repeated the extraction for 3 times.This optimized process is simple,stable and efficient.

        Key words:xianghe capsule;lentinus edodes;orthogonal design;extraction process

        香荷膠囊由香菇、苦丁茶、山楂等藥食同源的中藥飲片組成,具有調(diào)血脂的功效。本文是關(guān)于香荷膠囊中香菇總多糖提取工藝的正交設計實驗。處方中香菇總多糖單獨提取,現(xiàn)代研究表明[1],香菇總多糖提取物具有良好的治療高脂血證的作用,故確定香菇采用水作為溶劑水浴提取。本文以香菇總多糖的含量為考察指標,采用正交試驗法,優(yōu)選香荷膠囊中香菇的提取工藝,為香荷膠囊的研制提供參考。

        1 材料與儀器

        1.1 材料

        香菇購自咸寧康進飲片公司。

        1.2 儀器

        AB-135-S型萬分之一電子天平:瑞士梅特勒-托利多儀器有限公司;SP-756P型紫外分光光度計:上海光譜儀器有限公司;TGL-16B型離心機:上海菲恰爾分析儀器有限公司。

        1.3 試劑

        葡聚糖對照品(分子量 5×105)(sigma),無水乙醇、氫氧化鈉、CuSO4·5H2O、檸檬酸鈉、無水硫酸鈉、濃硫酸、苯酚等試劑均為分析純。

        2 方法與結(jié)果

        2.1 溶液的制備

        2.1.1 試液的制備

        1.乙醇溶液(80%):20mL水中加入無水乙醇80mL,混勻。

        2.氫氧化鈉溶液(100 g/L):稱取100 g氫氧化鈉,加水溶解并稀釋至1 L,加入固體無水硫酸鈉至飽和,備用。

        3.銅試劑儲備液:稱取 3.0 g CuSO4·5H2O、30.0 g 檸檬酸鈉,加水溶解并稀釋至1 L,混勻,備用。

        4.銅試劑溶液:取銅試劑儲備液 50 mL,加水50 mL,混勻后加入固體無水硫酸鈉12.5 g并使其溶解。臨用新配。

        5.洗滌劑:取水50 mL,加入10 mL銅試劑溶液、10 mL氫氧化鈉溶液,混勻。

        6.硫酸溶液(10%):取100 mL濃硫酸加入到800 mL左右水中,混勻,冷卻后稀釋至1 L。

        7.苯酚溶液(50 g/L):稱取精制苯酚 5.0 g,加水溶解并稀釋至100 mL,混勻。

        2.1.2 對照品溶液的制備

        精密稱取干燥至恒重的葡聚糖對照品0.5008 g,加水溶解,定容至50 mL,混勻,再精密移取1 mL,置100 mL容量瓶中,加水至刻度,混勻。(每1 mL含葡聚糖 0.1002 mg)。

        2.1.3 供試品溶液的制備

        稱取已干燥的香菇粗粉(40目)20 g,加入10倍量水水浴提取1h,濾過后將提取液定容至1000mL,混勻。準確移取上述提取液5 mL,置于50 mL離心管中,加入無水乙醇20 mL,混勻,沉淀5 min后,以3000 r/min離心5 min,棄去上清液。殘渣用80%乙醇溶液數(shù)毫升洗滌,離心后棄去上清液,反復操作3次~4次。殘渣用水溶解并定容至5mL,混勻。準確移取上述水溶液2mL,置于20 mL離心管中,各加入100 g/L氫氧化鈉溶液2.0 mL、銅試劑溶液2.0 mL,沸水浴煮沸2 min,冷卻,以3000 r/min離心5 min,棄去上清液。殘渣用洗滌液數(shù)毫升洗滌,離心后棄去上清液,反復操作3次,殘渣用10%硫酸溶液2 mL溶解并轉(zhuǎn)移至50 mL容量瓶中,加水稀釋至刻度,混勻,即得。

        2.2 檢測波長的選擇

        在300 nm~600 nm波長范圍內(nèi)對對照品溶液進行掃描,結(jié)果對照品溶液在485 nm波長處有最大吸收峰,故選擇測定波長為485 nm。

        2.3 線性范圍

        精密移取 2.1.2項下對照品溶液 0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL,分別置 25 mL 比色管中,準確補充水至2.0 mL,加入50 g/L苯酚溶液1.0 mL,使混勻,小心加入濃硫酸10.0 mL,混勻,置沸水浴中煮沸2 min,冷卻至室溫后用分光光度計,在485 nm波長處,以試劑空白為參比,1 cm比色皿測定吸光度值。以吸光度值(A)為縱坐標,濃度(C)為橫坐標,進行線性回歸,回歸方程為 Y=22.282X-0.0008,相關(guān)系數(shù) r=0.9996,結(jié)果表明在0.02 mg/mL~0.10 mg/mL范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系。

        2.4 精密度試驗

        精密吸取2.1.2項下對照品溶液1.0 mL,置25 mL比色管中,按2.2項下自“準確補充水至2.0 mL”起操作,在同一條件下分別測定吸光度,重復測定6次,RSD為0.213%,表明精密度良好。

        2.5 穩(wěn)定性試驗

        精密吸取供試品溶液2.0 mL,置25 mL比色管中,分別在 0、2、4、8、12、24 h 按 2.2 項下自“準確補充水至2.0 mL”起操作,測定吸光度,RSD為1.13%,表明供試品溶液在24 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。

        2.6 重現(xiàn)性試驗

        取已干燥的香菇粗粉(40目)6份,每份20 g,精密稱定,照2.1.3項下的方法依法制備,精密吸取各供試品溶液2.0 mL,置5支25 mL比色管中,按2.2項下自“準確補充水至2.0 mL”起操作,在同一條件下分別測定吸光度,RSD為2.82%,表明重現(xiàn)性良好。

        2.7 加樣回收試驗

        取已知含量的香菇粗粉6份,每份5.0 g,精密稱定,分別加入一定量的葡聚糖對照品,照2.1.3項下的方法依法制備,精密吸取各供試品溶液2.0 mL,置6支25 mL比色管中,按2.2項下自“準確補充水至2.0 mL”起操作,依法測定,加樣回收率為99.4%,RSD為0.99%,結(jié)果見表1。

        表1 加樣回收試驗結(jié)果Table 1 Results of recovery test

        3 香菇總多糖提取工藝的正交設計實驗

        為系統(tǒng)考察香菇水提的工藝參數(shù),選取加水量、提取時間、提取次數(shù)作為考察因素,以總多糖的含量為考察指標,選用L9(34)正交表設計。

        3.1 因素水平表的設定

        以加水量(A)、提取時間(B)、空白(C)、提取次數(shù)(D)作為考察因素,每個因素設置3個水平,因素、水平見表2。

        表2 香菇提取工藝正交試驗因素水平表Table 2 Mushroom extracting technolgy orthogonal experiment factor level table

        3.2 方法

        3.2.1 供試品提取

        稱取已干燥的香菇粗粉(40目)20 g,按正交表中條件水浴提取,濾過后將各提取液定容至1000 mL,混勻。

        3.2.2 沉淀粗多糖

        準確移取3.2.1項下9份溶液各5 mL,分別置于50 mL離心管中,各加入無水乙醇20 mL,混勻,沉淀5 min后,以3000 r/min離心5 min,棄去上清液。殘渣用80%乙醇溶液數(shù)毫升洗滌,離心后棄去上清液,反復操作3次~4次。殘渣用水溶解并定容至5mL,混勻。

        3.2.3 供試品測定液的制備

        準確移取3.2.2項下9份溶液各2mL,分別置于20mL離心管中,各加入100 g/L氫氧化鈉溶液2.0 mL、銅試劑溶液2.0 mL,沸水浴煮沸2 min,冷卻,以3000 r/min離心5 min,棄去上清液。殘渣用洗滌液數(shù)毫升洗滌,離心后棄去上清液,反復操作3次,殘渣用10%硫酸溶液2 mL溶解并轉(zhuǎn)移至50 mL容量瓶中,加水稀釋至刻度,混勻,即得。

        3.2.4 供試品測定

        準確移取3.2.3項下9份供試品測定液各2.0 mL置于25 mL比色管中,加入50 g/L苯酚溶液1.0 mL,混勻,小心加入濃硫酸10.0 mL,混勻,置沸水浴中煮沸2 min,冷卻至室溫,用紫外分光光度計,在485 nm波長處,以試劑空白為參比,1 cm比色皿測定吸光度值。由標準曲線算出總多糖含量。

        3.3 實驗結(jié)果與方差分析結(jié)果

        正交試驗設計及結(jié)果見表3,方差分析結(jié)果見表4。

        表3 正交試驗設計及結(jié)果Table 3 Orthogonal experimental design and results

        表4 方差分析結(jié)果Table 4 Results of variance analysis

        比較表3中各因素的極差大小,可知各因素對總多糖含量的影響順序為D>A>B。由表4方差分析可知:提取次數(shù)與加水量有顯著性差異,說明此因素對總多糖含量影響較大,提取時間無顯著性差異,其對總多糖含量影響較小。綜合以上分析,最佳提取工藝條件為A3B1D3,即:加入12倍量水,提取3次,每次1 h。

        3.4 驗證試驗

        取已干燥的香菇粗粉3份(20 g/份),按上述最佳提取工藝條件進行驗證試驗,紫外分光光度法測定香菇總多糖的含量,結(jié)果見表5。

        表5 驗證試驗結(jié)果Table 5 Results of verification test

        結(jié)果表明:經(jīng)正交試驗優(yōu)選的最佳提取工藝基本穩(wěn)定、可行。

        4 討論

        1)現(xiàn)代研究表明,香菇水提浸膏和香菇總多糖提取物具有良好的治療高脂血證的作用,另由于多糖溶解于熱水而不溶于乙醇,故本實驗以水作為提取溶劑水浴提取。

        2)本文采用正交設計研究香荷膠囊中香菇的提取工藝,試驗結(jié)果表明香菇粗粉加入12倍量水,提取3次,每次1 h,所得香菇總多糖含量較高,且該提取工藝穩(wěn)定,方法簡便、可行,適用于規(guī)?;纳a(chǎn)。

        [1]王慧銘,夏道宗,夏明,等.香菇多糖降血脂作用及其機制的研究[J].浙江中西醫(yī)結(jié)合雜志,2005,15(10):599-602

        Extraction Process of Polysaccharide in Xianghe Capsule

        FAN Yan-bo1,2,ZHOU Cai-xin1,ZHANG Yi-sheng1,SHI Xin-hua1,LI He-yu3
        (1.Wuhan Hospital of Traditional Chinese Medicine,Wuhan 430014,Hubei,China;2.3-level Traditional Chinese Medicine Preparation Laboratory of State Administration of TCM of the PRC,Wuhan 430014,Hubei,China;3.Tianjin UBasic Health Biological Technology Limited Company,Tianjin 300457,China)

        2012-05-31

        范彥博(1982—),男(漢),中藥師,博士,主要從事中藥學研究工作。

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