亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        2011年國內(nèi)外免疫學(xué)重要進(jìn)展

        2012-07-30 13:32:14曹雪濤第二軍醫(yī)大學(xué)免疫學(xué)研究所暨醫(yī)學(xué)免疫學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室上海200433
        中國免疫學(xué)雜志 2012年1期
        關(guān)鍵詞:胞漿活化分化

        劉 娟 曹雪濤 (第二軍醫(yī)大學(xué)免疫學(xué)研究所暨醫(yī)學(xué)免疫學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海200433)

        劉 娟(1986年 -),2007年畢業(yè)于北京大學(xué)醫(yī)學(xué)部臨床醫(yī)學(xué)專業(yè),同年師從曹雪濤教授攻讀免疫學(xué)專業(yè),于2010年獲得免疫學(xué)碩士學(xué)位,目前攻讀博士學(xué)位。主要從事自身免疫性疾病發(fā)病機(jī)制的研究,研究方向?yàn)槊庖邞?yīng)答及其調(diào)節(jié)機(jī)制。

        曹雪濤(1964年-),教授,中國工程院院士?,F(xiàn)任中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院院長、第二軍醫(yī)大學(xué)免疫學(xué)研究所所長、醫(yī)學(xué)免疫學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室主任,任中國免疫學(xué)會(huì)理事長、亞大地區(qū)免疫學(xué)聯(lián)盟副主席、國際免疫學(xué)聯(lián)盟IUIS委員會(huì)委員、國家863計(jì)劃醫(yī)藥生物技術(shù)領(lǐng)域?qū)<摇?73免疫學(xué)項(xiàng)目首席科學(xué)家、國務(wù)院學(xué)位評議委員會(huì)學(xué)科評議組基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)組召集人。任《中國腫瘤生物治療雜志》主編、Cellular and Molecular Immunology共同主編,Annu Rev Immunol、Sci Transl Med、JImmunol、J Biol Chem、Eur J Immunol、Cancer Immunol Immunother、Mol Immunol、Cancer Science、Gene Therapy、Cell Res、Int Immunol、Mol Immunol、Int Immunolpharmacology等雜志編委。

        從事免疫識別與免疫調(diào)節(jié)的基礎(chǔ)研究、疾病的免疫治療與基因治療的應(yīng)用研究。以通訊作者在Nature Immunology、Immunity、Cancer Cell、Blood、J Immunol,Cancer Res,J Biol Chem等SCI收錄的國外雜志發(fā)表論文196篇。與國內(nèi)外學(xué)者合作在Nature Medicine、PNAS等發(fā)表SCI論文20余篇。論文被SCI他引4 000余次。編寫和共同主編專著5部,參編11部。獲得國家發(fā)明專利16項(xiàng)。培養(yǎng)的10名博士生獲得全國優(yōu)秀博士論文。

        回顧2011年,除了三位免疫學(xué)家獲得諾貝爾獎(jiǎng)令免疫學(xué)界感到振奮之外,我們欣喜地看到免疫學(xué)諸多領(lǐng)域取得了重要的突破性進(jìn)展,這些新進(jìn)展既有對免疫學(xué)經(jīng)典問題的深入認(rèn)識,如天然免疫應(yīng)答的啟動(dòng)及活化的新機(jī)制、適應(yīng)性免疫細(xì)胞的分化、發(fā)育、遷移及活化的新途徑,也包括新型免疫細(xì)胞亞群的鑒定和研究,如固有淋巴細(xì)胞(Innate lymphoid cells,ILCs)、濾泡調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(Follicular regulatory T cells,TFR),同時(shí)還包括免疫學(xué)的新興分支領(lǐng)域的進(jìn)展,如microRNA、表觀遺傳在免疫活化與調(diào)控中的作用。國內(nèi)免疫學(xué)研究也取得了重要成果,受到國際同行的關(guān)注和認(rèn)可。本文中,筆者將對2011年國內(nèi)外免疫學(xué)重要進(jìn)展進(jìn)行淺顯總結(jié),旨在共同學(xué)習(xí)免疫學(xué)的最新進(jìn)展,展望免疫學(xué)未來的發(fā)展方向。

        1 天然免疫識別及活化機(jī)制研究

        天然免疫系統(tǒng)通過相應(yīng)的模式識別受體(Pattern recognition receptors,PRRs)識別病原微生物上表達(dá)的病原相關(guān)分子模式(Pathogen-associated molecular patterns,PAMPs),激活其下游一系列的信號通路從而啟動(dòng)免疫應(yīng)答。目前認(rèn)為PRRs主要包括Toll樣受體家族(Toll-like receptors,TLRs)、維甲酸誘導(dǎo)基因I樣受體家族[Retinoic-acid-inducible gene I(RIG-I)-like receptors,RLRs]、核苷酸結(jié)合寡聚化結(jié)構(gòu)域樣受體家族[Nucleotide-binding oligomerization domain(NOD)-like receptors,NLRs]等。免疫系統(tǒng)通過識別病毒來源DNA或RNA誘導(dǎo)Ⅰ型IFN產(chǎn)生并激活抗病毒免疫應(yīng)答。機(jī)體針對RNA及DNA的識別受體包括定位于內(nèi)吞溶酶體的TLR3、TLR7、TLR8及TLR9等跨膜受體,以及包括RLR家族在內(nèi)的一些胞漿RNA或DNA受體。上述病毒識別的TLRs僅能識別在內(nèi)吞溶酶體中釋放的核酸,一旦病毒成分進(jìn)入胞漿中,則需要胞漿核酸受體對其識別并應(yīng)答。2011年,科學(xué)家在病毒核酸識別受體及機(jī)制方面取得了突破性進(jìn)展,定義了許多新的胞漿DNA或RNA識別受體,并深入揭示了機(jī)體區(qū)分外源性及內(nèi)源性核酸的分子機(jī)制。

        1.1 新型胞漿DNA受體 病毒DNA的識別機(jī)制及下游調(diào)控網(wǎng)絡(luò)正引起免疫學(xué)家的廣泛關(guān)注。此前,科學(xué)家發(fā)現(xiàn)的針對病毒DNA的模式識別受體主要包括DNA依賴的IFN調(diào)節(jié)因子激活物(DNA dependent activator of IFN-regulatory factors,DAI)、黑色素瘤缺失因子2(Absent in melanoma 2,AIM2)和DNA依賴性RNA聚合酶Ⅲ(DNA-dependent RNA polymerase Ⅲ,PolⅢ)[1]。最近,Unterholzner等[2]發(fā)現(xiàn)了一個(gè)新的胞漿DNA受體,IFI16(Gamma-interferon-inducible protein 16)。他們發(fā)現(xiàn),IFI16能與病毒DNA基序直接結(jié)合,并通過招募STING(Stimulator of interferon genes)激活下游 IRF3及 NF-κB通路,介導(dǎo)IFN-β的產(chǎn)生。有趣的是IFI16和AIM2都屬于PYHIN(Pyrin and HIN domain-containing protein)家族成員,且二者都發(fā)揮識別胞漿DNA的作用,分別介導(dǎo) IFN-β或 IL-1β的產(chǎn)生,提示 PYHIN蛋白在胞漿DNA識別中的重要作用。另一個(gè)新近報(bào)道的胞漿 DNA受體是 DDX41。DDX41屬于DEXDc(DEAD-like helicases superfamily)家族成員。Zhang等[3]證實(shí)DDX41能在樹突狀細(xì)胞胞漿中與外源性 DNA及STING蛋白相結(jié)合,并誘導(dǎo)轉(zhuǎn)錄因子NF-κB及IRF3活化,介導(dǎo)Ⅰ型IFN產(chǎn)生。病原體DNA被其受體識別之后一般引起Ⅰ型IFN產(chǎn)生。而最近,Zhang等[4]發(fā)現(xiàn)了一個(gè)誘導(dǎo)Ⅲ型干擾素IFN-λ1的胞漿DNA受體,Ku70。利用pull-down技術(shù),他們發(fā)現(xiàn)Ku70能與胞漿DNA結(jié)合,下調(diào)Ku70表達(dá)能阻斷IFN-λ1分泌,同時(shí),IFN-λ1的產(chǎn)生依賴于IRF-1及IRF-7的轉(zhuǎn)錄活化。

        1.2 新型胞漿RNA識別受體及機(jī)制 RLR家族成員RIG-I及MDA5,以及NLR家族成員NOD2被報(bào)道能識別胞漿RNA,激活抗病毒免疫應(yīng)答。近來,對胞漿RNA識別機(jī)制的研究有了新的進(jìn)展。Pichlmair等[5]發(fā)現(xiàn) IFIT1(Interferon-induced protein with tetratricopeptide repeats 1)能識別病毒來源的5'-ppp RNA,發(fā)揮抗病毒作用。5'-三磷酸基團(tuán)(5'-ppp)是病毒RNA被RIG-Ⅰ識別的結(jié)構(gòu)基礎(chǔ)[6]。利用親和蛋白質(zhì)組學(xué)技術(shù),他們發(fā)現(xiàn),IFIT1能特異性與5'-ppp RNA以納摩爾級親和力相互結(jié)合,并與IFIT家族的其他成員相互結(jié)合形成龐大的蛋白復(fù)合體,最終介導(dǎo)對病毒侵襲的抵抗作用[7]。此外,Zhang 等[8,9]報(bào)道了 2 個(gè)在髓系 DC(Myeloid dendritic cells,mDCs)中的胞漿 RNA 受體——DDX1-DDX21-DHX36復(fù)合體以及DHX9。通過對mDC中與poly I:C結(jié)合的蛋白進(jìn)行鑒定分析,他們發(fā)現(xiàn)DExD/H解旋酶家族的三個(gè)成員——DDX1、DDX21及DHX36能通過與TRIF蛋白形成功能復(fù)合體,識別胞漿中的dsRNA,進(jìn)而介導(dǎo)Ⅰ型IFN產(chǎn)生[10]。此外,他們還發(fā)現(xiàn),DExDc解旋酶家族的另一個(gè)成員DHX9也能參與識別mDC中的dsRNA。DHX9能特異性識別poly I:C的dsRNA基序,并與IPS-1(IFN-beta promoter stimulator 1,又稱為 MAVS/VISA/Cardif)相互作用,進(jìn)而活化NF-κB及IRF3通路,并介導(dǎo)Ⅰ型IFN及促炎因子的產(chǎn)生。

        不同于其他類型的PAMPs,DNA及RNA不僅廣泛表達(dá)于病原體特別是病毒中,也同時(shí)表達(dá)于宿主本身的細(xì)胞中。天然免疫系統(tǒng)對宿主DNA或RNA的識別與許多自身免疫性疾病及炎癥性疾病密切相關(guān)。因此,胞漿RNA受體如何區(qū)分外源性RNA及內(nèi)源性RNA是天然免疫應(yīng)答的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。例如,RIG-I對于5'-ppp RNA的特異性識別是保證天然免疫系統(tǒng)對外源性RNA特異性應(yīng)答的機(jī)制之一。近來,Jiang 等[11]、Kowalinski等[12]以及 Luo等[13]分別闡明了RIG-I識別5'-ppp RNA及 dsRNA的結(jié)構(gòu)基礎(chǔ),深入揭示了病毒RNA活化RIG-I信號途徑的分子機(jī)制。此外,Daffis等[14]及 Züst等[15]報(bào)道,2'-O-核糖甲基化(Ribose 2'-O-methylation)是天然免疫系統(tǒng)區(qū)分自我及外源RNA的結(jié)構(gòu)基礎(chǔ)。在高等真核生物mRNA及許多病毒RNA中都存在2'-O-核糖甲基化,然而其生物學(xué)意義卻不清楚。Daffis等[14]發(fā)現(xiàn)缺失2'-O-甲基化轉(zhuǎn)移酶的痘病毒及冠狀病毒突變體對IFN以及IFIT蛋白的抗病毒效應(yīng)更為敏感,提示病毒RNA的2'-O-核糖甲基化能幫助病毒逃避宿主的 IFIT1介導(dǎo)的抗病毒效應(yīng)。Züst等[15]發(fā)現(xiàn),缺失2'-O-甲基化轉(zhuǎn)移酶的冠狀病毒突變體能依賴RNA受體MDA5誘導(dǎo)更高水平的Ⅰ型IFN并對其更敏感,因此病毒mRNA的2'-O-核糖甲基化是一個(gè)病毒輔以逃避MDA5依賴的Ⅰ型IFN反應(yīng)的結(jié)構(gòu)基礎(chǔ)。他們的研究表明高等真核生物mRNA的2'-O-核糖甲基化是機(jī)體區(qū)別自身及外源RNA 的分子基礎(chǔ)[16]。

        1.3 TLR信號通路調(diào)節(jié)機(jī)制 TLR信號的激活是機(jī)體抵抗病原體侵襲的重要的天然免疫應(yīng)答之一,而TLR信號的過度活化被證實(shí)與許多自身免疫性疾病密切相關(guān)。因此,TLR信號的調(diào)節(jié)對維持有效的免疫應(yīng)答,從而避免免疫相關(guān)疾病的發(fā)生至關(guān)重要。近來,對于TLR通路的調(diào)控機(jī)制得到了更為深入的認(rèn)識。筆者實(shí)驗(yàn)室首次報(bào)道了MHCⅡ(Major histocompatibility complex classⅡ,主要組織相容性復(fù)合體Ⅱ類分子)在促進(jìn)TLR觸發(fā)的天然免疫應(yīng)答中的關(guān)鍵作用。MHCⅡ被認(rèn)為在抗原提呈中發(fā)揮關(guān)鍵作用,然而對其在TLR信號中的作用卻未見報(bào)道。Liu等報(bào)道[17],胞內(nèi)MHCⅡ分子通過與共刺激分子CD40與酪氨酸激酶Btk(Bruton's tyrosine kinase)相互作用,進(jìn)而維持Btk的活性,其下游通過與MyD88和TRIF相互作用促進(jìn)促炎因子及Ⅰ型IFN的產(chǎn)生[18]。此外,筆者實(shí)驗(yàn)室近期報(bào)道了E3泛素連接酶CHIP在TLR信號中的重要作用[19],證實(shí)CHIP[Carboxyl terminus of constitutive heat shock cognate 70(HSC70)-interacting protein,又 稱 為Stub1]通過招募酪氨酸激酶Src及非典型蛋白激酶C(Atypical protein kinase C ζ,aPKCζ)活化 IRF3 及IRF7,從而活化TLR4及TLR9信號介導(dǎo)的炎性細(xì)胞因子及Ⅰ型IFN產(chǎn)生。此外,Tun-Kyi等[20]報(bào)道了Pin1(Peptidyl-prolyl cis/trans isomerase 1)對TLR觸發(fā)的Ⅰ型IFN反應(yīng)的促進(jìn)作用。他們證實(shí)Pin1可被TLR7及TLR9的激動(dòng)劑誘導(dǎo)活化,并能與IRAK1相互作用,促進(jìn)IRF7的活化,進(jìn)而誘導(dǎo)Ⅰ型IFN產(chǎn)生。另據(jù) Saitoh等[21]報(bào)道,抗病毒蛋白 Viperin在pDC(Plasmacytoid dendritic cells)中被 TLR7或TLR9激活后,能與IRAK1及TRAF6相互作用,促進(jìn)IRAK1泛素化,進(jìn)而介導(dǎo)IRF7的活性及其下游Ⅰ型IFN產(chǎn)生。這些研究進(jìn)一步揭示了TLR受體介導(dǎo)的Ⅰ型IFN產(chǎn)生途徑的調(diào)控機(jī)制,并為相關(guān)疾病的治療方案提供了新的思路。

        TLR信號通路的負(fù)向調(diào)控機(jī)制一直是免疫學(xué)研究的熱點(diǎn)??茖W(xué)家新近報(bào)道了兩個(gè)TLR信號負(fù)調(diào)蛋白——孤兒核受體 SHP(Short heterodimer partner)和NLRX1。SHP能與其他核受體直接結(jié)合抑制基因的轉(zhuǎn)錄表達(dá),廣泛參與代謝及腫瘤發(fā)生過程[22]。據(jù) Yuk 等[23]最新報(bào)道,SHP 能通過抑制NF-κB的p65亞基的活化以及TRAF6的多聚泛素化,抑制TLR信號觸發(fā)的炎性因子產(chǎn)生[24]。該研究提示了代謝相關(guān)分子與免疫系統(tǒng)的密切關(guān)系。此外,Xia 等[26]和 Allen 等[27]分別報(bào)道了 NLR(Nucleotide binding domain and leucine-rich-repeat-containing protein family)家族成員之一——NLRX1,對TLR及RLR通路的負(fù)向調(diào)節(jié)作用。NLRs家族蛋白作為一類重要的PRRs,能識別病原體并激活天然免疫應(yīng)答[25],然而最新研究顯示了NLRX1在TLR信號通路及RIG-I信號通路中的負(fù)向調(diào)節(jié)作用。Xia等[26]報(bào)道,LPS刺激能迅速誘導(dǎo)NLRX1蛋白泛素化,并與TRAF6解離,進(jìn)而與IKK復(fù)合物相互作用,最終抑制 TLR觸發(fā)的 NF-κB活化。Allen等[27]的報(bào)道進(jìn)一步加深了對NLRX1調(diào)控效應(yīng)的認(rèn)識。他們發(fā)現(xiàn),NLRX1不僅能夠負(fù)向調(diào)控 LPS誘導(dǎo)的TRAF6-NF-κB信號通路,還能夠調(diào)節(jié)流感病毒誘導(dǎo)的RIG-I-MAVS通路,進(jìn)而抑制Ⅰ型IFN介導(dǎo)的抗病毒免疫。

        目前,對于TLR信號通路調(diào)控蛋白的尋找一般基于對TLR激動(dòng)劑誘導(dǎo)表達(dá)基因的大規(guī)模篩選,或與目的蛋白相互結(jié)合的組分的鑒定分析。免疫學(xué)家一直在尋找更為有效的研究策略來深層剖析TLR信號通路及其調(diào)控機(jī)制。近來,Chevrier等[28]報(bào)道了一種將轉(zhuǎn)錄表達(dá)譜、基因及小分子擾動(dòng)以及無偏磷酸化蛋白質(zhì)組學(xué)整合一體的系統(tǒng)研究方法,并利用該方法發(fā)現(xiàn)了35個(gè)TLR信號通路調(diào)節(jié)蛋白,其中包括一條由Plk2(Polo-like kinases 2)和Plk4(Polo-like kinases 4)介導(dǎo)的抗病毒信號通路。他們的工作展示了系統(tǒng)研究策略在研究復(fù)雜的信號通路并尋找有意義的干預(yù)靶點(diǎn)中的重要作用。

        1.4 RIG-I信號通路調(diào)節(jié)機(jī)制 RIG-I通過識別胞漿內(nèi)病毒RNA,激活下游信號通路,進(jìn)而誘導(dǎo)抗病毒反應(yīng)及Ⅰ型IFN產(chǎn)生,抵抗病毒復(fù)制和擴(kuò)散。與TLR信號通路相似,RIG-I介導(dǎo)的信號通路受到精密調(diào)節(jié),以確保適時(shí)、適度的抗病毒效應(yīng)[29]。近來,Hayakawa 等[30]報(bào)道了 ZAPS(Zinc-finger antiviral protein shorter isoform)對RIG-I信號的促進(jìn)作用。ZAPS是 PARP[poly(ADP-ribose)polymerase]家族成員,他們發(fā)現(xiàn),ZAPS受5'-ppp RNA誘導(dǎo)產(chǎn)生,與RIG-I相互作用并促進(jìn)其寡聚化和ATP酶活性,進(jìn)而誘導(dǎo)IRF3及NF-κB活化,最終誘導(dǎo)Ⅰ型IFN及細(xì)胞因子產(chǎn)生。

        MAVS(Mitochondrial antiviral signaling,又稱為IPS-1/CARDIF/VISA)是 RIG-I、MDA5 及 NOD2 信號通路中重要的接頭蛋白,介導(dǎo)了下游IRF3磷酸化及NF-κB活化,誘導(dǎo)Ⅰ型 IFN產(chǎn)生。然而,對于MAVS的活化機(jī)制,特別是結(jié)構(gòu)基礎(chǔ)認(rèn)識并不深入。Hou等[31]最近報(bào)道,RIG-I與5'-ppp RNA 及 K63 泛素鏈結(jié)合后,誘導(dǎo)MAVS形成龐大的阮病毒樣聚合體,活化IRF3及下游Ⅰ型IFN產(chǎn)生。他們的工作提示,MAVS蛋白的阮病毒樣構(gòu)象轉(zhuǎn)換能激活并放大抗病毒免疫應(yīng)答。

        STING(Stimulator of IFN gene,又稱為 MITA/ERIS)蛋白是RIG-I及DAI信號通路的重要的信號分子,參與誘導(dǎo)Ⅰ型IFN產(chǎn)生。北京大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院蔣爭凡教授課題組Chen等[32]最近報(bào)道STAT6在STING介導(dǎo)的抗病毒免疫中的關(guān)鍵作用。STAT6(Signal transducer and activator of transcription 6)通過介導(dǎo)胞外細(xì)胞因子信號參與適應(yīng)性免疫應(yīng)答,而其在天然免疫應(yīng)答中的作用未見報(bào)道。Chen等報(bào)道病毒感染后,STAT6被STING招募并與其相互作用,引起STAT6的磷酸化,下游激活免疫細(xì)胞歸巢相關(guān)基因表達(dá);同時(shí)體內(nèi)實(shí)驗(yàn)證實(shí)STAT6對機(jī)體抗病毒免疫應(yīng)答發(fā)揮關(guān)鍵作用。他們首次報(bào)道了STAT6在抗病毒免疫應(yīng)答中的重要作用,豐富了對于STING介導(dǎo)的信號通路的調(diào)節(jié)機(jī)制的認(rèn)識。

        綜上可見,近來在對天然免疫應(yīng)答的啟動(dòng)及活化機(jī)制的探索中取得顯著進(jìn)展,特別是對新型胞漿核酸識別受體、宿主及病原體來源核酸的鑒別機(jī)制,以及復(fù)雜的PRRs信號通路的正、負(fù)向調(diào)控及精密的相互調(diào)節(jié)機(jī)制的認(rèn)識有了新的突破。相信未來免疫學(xué)家在這些方向上的深入探索將會(huì)帶來更多有價(jià)值的發(fā)現(xiàn),也為免疫相關(guān)疾病的預(yù)防、治療提供新的思路,帶來可能的靶標(biāo)。

        2 固有淋巴細(xì)胞的表型及功能研究

        共同淋巴樣祖細(xì)胞(Common lymphoid progenitors,CLP)分化成為T細(xì)胞、B細(xì)胞及一類固有淋巴細(xì)胞(Innate lymphoid cells,ILCs)。ILCs是一類新近定義的細(xì)胞家族,所包含的各類細(xì)胞在進(jìn)化上高度保守,而功能及表型上具有異質(zhì)性。這類細(xì)胞包括自然殺傷細(xì)胞(Natural killer cells,NK cells)、淋巴樣組織誘導(dǎo)細(xì)胞(Lymphoid tissue-inducer cells,LTi cells),以及分泌 IL-5、IL-13、IL-17 和 IL-22 的固有免疫細(xì)胞。ILCs大量存在于粘膜組織中,在機(jī)體抗病原體天然免疫應(yīng)答、淋巴樣組織形成、組織重塑以及修復(fù)中發(fā)揮重要作用。ILCs的分化依賴于轉(zhuǎn)錄因子Id2(Inhibitor of DNA binding 2),不同細(xì)胞類型的分化又受不同的轉(zhuǎn)錄因子及細(xì)胞因子環(huán)境影響[33]。近來,關(guān)于ILCs不同類型細(xì)胞的分化發(fā)育、表型及功能的研究取得突破性進(jìn)展。

        2.1 RORγt+ILCs的分化及功能 RORγt+ILCs是一類表達(dá) RORγt,且分化過程依賴于轉(zhuǎn)錄因子RORγt以及IL-7的固有免疫細(xì)胞。此類細(xì)胞包括LTi細(xì)胞、分泌IL-17的固有免疫細(xì)胞(IL-17-producing ILC,ILC17)以及分泌IL-22的固有免疫細(xì)胞(IL-22-producing innate cells,ILC22)。LTi細(xì)胞參與淋巴樣組織形成,ILC17及ILC22參與抵抗胞外細(xì)菌感染;而ILC17及ILC22功能紊亂與自身免疫性疾病發(fā)生密切相關(guān)。

        所有的ILC細(xì)胞亞群的分化都依賴于轉(zhuǎn)錄因子Id2,然而特異性指導(dǎo)RORγt+ILCs分化的環(huán)境因素及調(diào)控機(jī)制并不清楚。近來,Possot等[34]發(fā)現(xiàn),胎兒RORγt+ILCs在胎肝微環(huán)境發(fā)育成熟;而成人RORγt+ILCs來源于骨髓中共同淋巴樣祖細(xì)胞(CLPs)并在外周依賴于Notch2信號發(fā)育成熟。他們同時(shí)還證實(shí),胎兒CLPs伴隨整合素α4β7和CXCR6的表達(dá),相繼失去B細(xì)胞及T細(xì)胞發(fā)育潛能,并最終發(fā)育成為RORγt+ILCs,提示CXCR6可作為ILC譜系發(fā)育的新的分子標(biāo)志。

        不同的轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控不同類別的ILCs分化。例如,轉(zhuǎn)錄因子NFIL3/E4bp4調(diào)控NK細(xì)胞分化,RORγt調(diào)控LTi細(xì)胞、ILC22及ILC17的分化。已有報(bào)道轉(zhuǎn)錄因子AHR(Aryl hydrocarbon receptor)參與調(diào)控Treg及Th17的分化,并調(diào)節(jié)T細(xì)胞分泌IL-22[35]。RORγt+ILCs表達(dá) AHR,而 AHR 在 ILCs分化發(fā)育中的作用卻未見報(bào)道。近來,Kiss等[31]和Lee等[38]分別報(bào)道了AHR對腸道 RORγt+ILC及ILC22的分化的關(guān)鍵性調(diào)控作用。Kiss等[36]研究證實(shí)飲食中的配體可誘導(dǎo)RORγt+ILC中AHR表達(dá),而AHR對腸道RORγt+ILC發(fā)育以及腸道淋巴樣濾泡形成發(fā)揮關(guān)鍵作用。同時(shí),Lee等[37]報(bào)道,AHR參與調(diào)控ILC22的分化發(fā)育以及后天的淋巴樣組織形成,進(jìn)而促進(jìn)機(jī)體對病原體侵襲的抵抗作用。此外,Li等[38]報(bào)道AHR對維持小腸上皮間淋巴細(xì)胞(Intraepithelial lymphocytes,IELs)發(fā)揮關(guān)鍵作用。IELs存在于機(jī)體皮膚及粘膜表面,形成抵抗外來病原體的第一道屏障。上述研究表明,AHR參與調(diào)控RORγt+ILC分化以及IELs形成,在調(diào)節(jié)腸道環(huán)境以及免疫系統(tǒng)的平衡中發(fā)揮重要作用。

        此外,據(jù) Sawa 等[39]報(bào)道,RORγt+ILCs是腸道IL-22的主要來源,而腸道共生菌以及適應(yīng)性免疫應(yīng)答抑制RORγt+ILCs分泌IL-22,相反上皮損傷能促進(jìn)其分泌IL-22。他們的研究揭示了腸道共生菌、RORγt+ILCs以及適應(yīng)性免疫應(yīng)答之間的精密的調(diào)控機(jī)制。

        2.2 ILC2的功能及調(diào)控 ILC2(Type 2 cytokineproducing innate lymphoid population,分泌2型細(xì)胞因子的ILCs)指一類在IL-25及IL-33作用下產(chǎn)生Th2型細(xì)胞因子IL-13及IL-15的固有淋巴細(xì)胞,包括nuocytes和自然輔助細(xì)胞(Natural helper cells,NH cells)。他們表達(dá)CD127、IL-17RB以及IL-33受體,參與抗胞外寄生蟲感染。

        ILC2在呼吸道免疫當(dāng)中的作用尚不明了。最近,Chang等[40]報(bào)道了NH細(xì)胞在呼吸道炎癥中的重要作用,首次證實(shí)了天然免疫應(yīng)答在病毒誘發(fā)的哮喘中的作用。他們發(fā)現(xiàn),流感病毒感染能導(dǎo)致哮喘的特征性體征氣道高敏性,而氣道高敏性的產(chǎn)生并不依賴于適應(yīng)性免疫應(yīng)答,卻依賴于NH細(xì)胞產(chǎn)生的IL-13[41,42]。他們的研究揭示了病毒誘導(dǎo)的哮喘的新機(jī)制,即固有免疫來源的IL-13的核心作用。

        多數(shù)ILC2的研究基于小鼠模型,對人類ILC2的研究并不深入。近來,Monticelli等[43]定義了一群定植于小鼠及人類肺臟的ILCs,其在表型和功能上符合ILC2的特征,對流感病毒感染后呼吸道上皮的維持和修復(fù)發(fā)揮重要作用。這群肺臟ILC2活化后分泌雙向調(diào)節(jié)蛋白(Amphiregulin),并通過與其受體EGFR 結(jié)合促進(jìn)上皮細(xì)胞增殖。此外,Mj?sberg等[44]也定義了一群人類CD127+CRTH2+CD161+ILCs,這群細(xì)胞能在IL-25及IL-33刺激后產(chǎn)生大量IL-13。CRTH2+ILCs存在于肺臟及胃部,在慢性鼻竇炎鼻息肉大量富集;通過產(chǎn)生IL-5及IL-13導(dǎo)致過敏性疾病的癥狀,而發(fā)揮致病性作用[45]。

        綜上可以看出,ILCs在抵抗病原體侵襲及組織修復(fù)、淋巴形成中的作用正得到不斷深入的研究。對各類ILCs亞群不同的表型及功能特點(diǎn)、分化發(fā)育的調(diào)控機(jī)制,以及ILCs與環(huán)境因素及其他免疫細(xì)胞、分子之間的相互作用的深入研究將有助于闡明其生理、病理學(xué)功能及意義,為尋找維持粘膜穩(wěn)態(tài),防治疾病發(fā)生提供新的策略。

        3 T細(xì)胞分化與功能調(diào)控

        T 細(xì)胞在轉(zhuǎn)錄因子 T-bet、GATA-3、RORγt及Foxp3的調(diào)控及不同細(xì)胞因子環(huán)境的影響下相應(yīng)分化成為Th1、Th2、Th17及Treg細(xì)胞亞群,分泌不同的細(xì)胞因子參與適應(yīng)性免疫應(yīng)答。近來,對不同細(xì)胞T細(xì)胞亞群的分化、發(fā)育、遷移及功能活化的調(diào)控機(jī)制有了新的認(rèn)識。

        3.1 Th2分化、活化及遷移調(diào)控 Th1與Th2是兩類經(jīng)典的T細(xì)胞亞群,分別通過分泌IFN-γ、IL-2,以及IL-4、IL-5、IL-9、IL-10及IL-13等發(fā)揮抗胞內(nèi)病原體感染及抗胞外寄生蟲感染功能,Th2同時(shí)參與介導(dǎo)體液免疫應(yīng)答。轉(zhuǎn)錄因子GATA3(GATA binding protein 3)通過對Th2型細(xì)胞因子表達(dá)基因的表觀修飾調(diào)控Th2分化[46]。但是,其作用靶點(diǎn)及機(jī)制尚不清楚。Tanaka等[47]近來發(fā)現(xiàn),Il4基因上的HS2(DNase I-hypersensitive site 2)元件是GATA-3的作用靶點(diǎn),介導(dǎo)了Il4基因H3K4三甲基化及H3K9、H3K14的乙?;?,并對GATA-3介導(dǎo)的IL-4分泌及過敏反應(yīng)發(fā)揮關(guān)鍵作用[48,49]。

        尿酸(Uric acid,UA)晶體被認(rèn)為是痛風(fēng)的致病因素之一,Kool等[50]報(bào)道,在哮喘病小鼠及人呼吸道中釋放大量UA,參與明礬(Alum)及房屋塵螨(House dust mite,HDM)誘導(dǎo)的Th2型細(xì)胞免疫應(yīng)答及過敏反應(yīng)。UA誘導(dǎo)的Th2型免疫應(yīng)答不依賴NLRP3炎性復(fù)合體,而依賴于經(jīng)STK(Spleen tyrosine kinase)及PI3-kinaseδ途徑活化的 DC。另據(jù) Kuroda等[51]報(bào)道,硅結(jié)晶和鋁鹽能以NALP3炎性復(fù)合體非依賴、PGE2(Prostaglandin E2)依賴的途徑誘導(dǎo)2型免疫應(yīng)答。NLRP3炎性復(fù)合體一直被認(rèn)為參與誘導(dǎo)了鋁鹽的佐劑效應(yīng)[52],Kool等及Kuroda等的研究從全新的角度對這一觀點(diǎn)進(jìn)行了補(bǔ)充,揭示了免疫原性顆粒物質(zhì)參與調(diào)控 Th2 細(xì)胞分化的機(jī)制[53,54]。

        上海生命科學(xué)院生化與細(xì)胞研究所孫兵課題組近期報(bào)道ECM1(Extracellular matrix protein-1,細(xì)胞外基質(zhì)蛋白)在Th2輸出外周淋巴器官過程中發(fā)揮重要作用,發(fā)現(xiàn)ECM1選擇性表達(dá)在Th2細(xì)胞中,參與Th2型免疫應(yīng)答及呼吸道過敏反應(yīng)[55]。深入研究表明,ECM1直接結(jié)合IL-2R抑制IL-2信號而促進(jìn)S1P1(Sphingosine-1 phosphate receptor)活化,進(jìn)而調(diào)控Th2細(xì)胞的遷移[56]。

        3.2 Th17分化及功能調(diào)控 Th17及其產(chǎn)生的細(xì)胞因子IL-17A、IL-17F、IL-21及IL-22在炎癥、自身免疫性疾病當(dāng)中發(fā)揮重要作用。IL-6、TGF-β,以及IL-21、IL-23、IL-1等細(xì)胞因子都參與了Th17的分化調(diào)控[57]。

        3.2.1 細(xì)胞因子對Th17的調(diào)控作用 IL-17及其受體IL-17R包含了六類配體(IL-17A-IL-17F)及五類受體(IL-17RA-IL-17RE)。IL-17A及其受體的研究較為深入,而其他各類配體、受體的特點(diǎn)、功能及信號途徑尚不明確。最近,中科院上海生命科學(xué)研究院健康科學(xué)研究所錢友存課題組[58]以及 Ramirez-Carrozzi等[59]同時(shí)報(bào)道了腸道上皮細(xì)胞在炎癥條件下分泌IL17C,通過與上皮細(xì)胞IL-17RE-IL-17RA復(fù)合體結(jié)合促進(jìn)促炎細(xì)胞因子及抗菌肽分泌,介導(dǎo)粘膜及皮膚的天然免疫應(yīng)答[60]。此外,美國M.D.安德森癌癥中心的董晨課題組Chang等[61]報(bào)道IL-17C與Th17細(xì)胞上表達(dá)的IL-17RE結(jié)合,通過IL-17RA-IL17RE受體復(fù)合物激活下游Act1及IκBζ促進(jìn)Th17細(xì)胞應(yīng)答及自身免疫性疾病發(fā)生。

        IL-23對Th17分化及功能發(fā)揮關(guān)鍵性調(diào)控作用,然而對其作用機(jī)制的研究并不深入。最近,Codarri等[62]及 EI-behi等[63]分別報(bào)道,粒細(xì)胞-巨噬細(xì)胞集落刺激因子(Granulocyte-macrophage colonystimulating factor,GM-CSF)在 IL-23誘導(dǎo)的 Th17免疫應(yīng)答及神經(jīng)系統(tǒng)炎癥中發(fā)揮關(guān)鍵作用。他們的研究表明,IL-23能上調(diào)Th17細(xì)胞中GM-CSF表達(dá),而GM-CSF對Th17細(xì)胞介導(dǎo)的中樞神經(jīng)系統(tǒng)炎癥發(fā)揮關(guān)鍵作用[64]。

        此外,上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院健康科學(xué)研究所臧敬五課題組[65]報(bào)道,神經(jīng)前體細(xì)胞(Neural progenitor cells,NPCs)體內(nèi)注射可通過誘導(dǎo)白血病抑制因子(Leukemia inhibitory factor,LIF)表達(dá)抑制Th17細(xì)胞分化,進(jìn)而抑制EAE的進(jìn)展。深入研究發(fā)現(xiàn)LIF通過上調(diào)ERK及SOCS3表達(dá),抑制STAT3活性,從而負(fù)向調(diào)控Th17細(xì)胞分化[66]。

        3.2.2 Th17轉(zhuǎn)錄水平調(diào)控 近期,Th17分化與功能的轉(zhuǎn)錄水平的調(diào)控機(jī)制研究也取得了新的進(jìn)展。據(jù)Lazarevic等[67]報(bào)道,Th1細(xì)胞的調(diào)控因子 T-bet能通過與Runx1(Runt-related transcription factor 1)相互作用進(jìn)而抑制Rorc轉(zhuǎn)錄,最終抑制Th17分化。此外,Yang等[68]報(bào)道了 STAT3和 STAT5在調(diào)控Th17分化中的相互拮抗的作用。他們發(fā)現(xiàn),STAT3和STAT5共同與Il17a-Il17f基因上多個(gè)位點(diǎn)直接結(jié)合,IL-2能促進(jìn)STAT5而限制STAT3的結(jié)合,進(jìn)而抑制Th17分化。另外,Ichiyama等[69]的研究報(bào)道了轉(zhuǎn)錄因子Eomesodermin能抑制Rorc及Il17a表達(dá);而TGF-β通過活化JNK進(jìn)而抑制Eomesodermin活性,介導(dǎo)了Th17的分化。

        代謝微環(huán)境對不同T細(xì)胞亞群的分化、功能產(chǎn)生重要影響。Dang等[70]近期報(bào)道缺氧誘導(dǎo)因子1(Hypoxia-inducible factor 1,HIF-1)對 Th17及 Treg的分化發(fā)育具有重要調(diào)節(jié)作用。他們發(fā)現(xiàn),HIF-1在Th17極性條件下被誘導(dǎo),并通過與 RORγt、STAT3及p300相互作用促進(jìn)Th17分化,同時(shí)通過介導(dǎo)Foxp3降解抑制Treg生成[71]。

        近年來,對于Th17分化及功能的調(diào)節(jié)機(jī)制得到了廣泛而深入的研究,未來的工作可能揭示更多的調(diào)控Th17分化的轉(zhuǎn)錄因子及細(xì)胞因子,Th17分泌的細(xì)胞因子的更多功能,以及Th17與其他各T細(xì)胞亞群直接更為廣泛而精細(xì)的相互作用,為Th17相關(guān)疾病的干預(yù)與治療帶來新的思路與視角。

        3.3 Treg分化與功能調(diào)控 Treg對維持免疫系統(tǒng)的自身耐受及免疫穩(wěn)態(tài)發(fā)揮重要作用。最近,關(guān)于Treg分化發(fā)育及功能特點(diǎn)的調(diào)控機(jī)制取得了新的進(jìn)展。

        Foxp3(forkhead family transcription factor)表達(dá)于Tregs中,對Treg的分化及功能產(chǎn)生關(guān)鍵性調(diào)控作用。而Treg是否及如何受其他轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控一直是免疫學(xué)研究的熱點(diǎn)。近期,Cretney等[72]報(bào)道,轉(zhuǎn)錄因子Blimp-1(B lymphocyte-induced maturation protein 1)和IRF4(Interferon regulatory factor 4)能夠促進(jìn)Treg獲得免疫抑制效應(yīng)。他們發(fā)現(xiàn),表達(dá)Blimp-1的Treg細(xì)胞具有免疫抑制效應(yīng)并分泌IL-10,而IRF-4對于Blimp-1表達(dá)及其Treg活性發(fā)揮關(guān)鍵作用[73]。此外,Maruyama 等[74]報(bào)道,Id3(Inhibitor of DNA binding 3)對于控制Treg分化發(fā)揮關(guān)鍵作用。他們發(fā)現(xiàn),Id3可解除GATA-3對Foxp3的抑制作用,進(jìn)而促進(jìn)Treg分化;同時(shí),Id3還能抑制Th17的分化[75]。有意思的是,Wang 等[76]的研究則提示 GATA-3對Treg功能的正向調(diào)節(jié)作用。他們發(fā)現(xiàn),GATA-3促進(jìn)Foxp3活性,并對Foxp3表達(dá)及Treg的外周耐受及免疫抑制功能發(fā)揮關(guān)鍵作用。

        以往的研究表明,各T細(xì)胞亞群的分化過程存在靈活性和可塑性[77]。近期,Beyer 等[78]報(bào)道SATB1(Special AT-rich sequence-binding protein-1)能誘導(dǎo)Treg細(xì)胞重新分化為效應(yīng)T細(xì)胞(Effector T cells,Teff)。他們發(fā)現(xiàn),F(xiàn)oxp3通過表觀修飾及miRNA的調(diào)控作用抑制 SATB1活性[79]。解除 Foxp3對SATB1的抑制作用可誘導(dǎo)Treg失去免疫抑制功能,活化效應(yīng)T細(xì)胞分化途徑及功能??梢钥闯?,Treg的分化及功能的調(diào)節(jié)機(jī)制仍然是免疫學(xué)關(guān)注的焦點(diǎn),未來也值得進(jìn)一步的深入探索。

        3.4 mTOR參與調(diào)控T細(xì)胞分化及記憶形成

        mTOR(mammalian target of rapamycin)是雷帕霉素在哺乳動(dòng)物體內(nèi)作用的蛋白激酶,在調(diào)節(jié)氨基酸代謝、能量代謝及細(xì)胞生存中發(fā)揮重要作用。近年來,關(guān)于mTOR在T細(xì)胞分化及活化中的重要角色被逐步揭示[80]。已有報(bào)道,mTOR能促進(jìn)效應(yīng)T細(xì)胞分化,而抑制Treg分化。mTOR存在于兩種多蛋白復(fù)合體(mTORC1以及mTORC2)中,然而這兩種蛋白復(fù)合物對T細(xì)胞功能的各自作用未見報(bào)道。Delgoffe等[81]近期報(bào)道,mTORC1信號能調(diào)節(jié) Th1及Th17分化而mTORC2信號則能調(diào)節(jié)Th2分化。

        已有報(bào)道m(xù)TOR在CD8+記憶T細(xì)胞的分化過程中發(fā)揮調(diào)控作用。最近,Li等[82]深入揭示了mTOR參與調(diào)節(jié)CD8+記憶T細(xì)胞形成及腫瘤免疫的作用機(jī)制。他們發(fā)現(xiàn),IL-7誘導(dǎo)的CD8+T細(xì)胞穩(wěn)態(tài)增殖(Homeostatic proliferation,HP)依賴于mTOR活性。HP誘導(dǎo)的mTOR促進(jìn)T-bet及CD122表達(dá),在IL-15作用下活化Eomesodermin以拮抗T-bet,進(jìn)而促進(jìn)CD8+記憶T細(xì)胞形成,并介導(dǎo)抗腫瘤效應(yīng)。

        3.5 miRNA參與調(diào)節(jié)T細(xì)胞功能及疾病發(fā)生MicroRNAs(miRNAs)在T細(xì)胞免疫應(yīng)答過程中發(fā)揮重要的調(diào)控作用。已有報(bào)道,miR-181a、miR-182、miR-146a、miR-155及miR-326等廣泛參與 T細(xì)胞亞群的分化及功能調(diào)控。最近,筆者實(shí)驗(yàn)室和Steiner等人分別報(bào)道了miRNA-29參與負(fù)向調(diào)節(jié)IFN-γ分泌,然而其內(nèi)在的分子機(jī)制不同[83]。我們發(fā)現(xiàn),miR-29通過直接靶向Ifng mRNA的3'UTR區(qū)抑制IFN-γ表達(dá)。通過建立表達(dá)miR-29 sponge的轉(zhuǎn)基因小鼠(GS29小鼠),證實(shí)該小鼠比對照小鼠產(chǎn)生更高水平的IFN-γ且更有效清除單核增生性李斯特菌感染,并能產(chǎn)生更強(qiáng)的Th1型免疫應(yīng)答及更有效抵抗結(jié)核卡介苗或分枝桿菌感染,提示miR-29通過直接靶向IFN-γ抑制抗胞內(nèi)菌免疫應(yīng)答[84]。有趣的是 Steiner等[85]報(bào)道,miR-29對 IFN-γ 的抑制作用依賴于靶向Tbx21及Eomes mRNA的3'UTRs區(qū),而非直接靶向Ifng。轉(zhuǎn)錄因子Tbx21和Eomes分別編碼T-bet和eomesodermin,參與IFN-γ生成??梢钥闯?,miR-29在調(diào)控IFN-γ產(chǎn)生中發(fā)揮重要作用,而其分子機(jī)制有待進(jìn)一步證實(shí)。

        此外,來自Rossi等[86]的研究報(bào)道m(xù)iR-125b特征性表達(dá)于初始CD4+T細(xì)胞中,調(diào)節(jié)多個(gè)T細(xì)胞分化相關(guān)分子的表達(dá),如 IFNG、IL2RB、IL10RA及PRDM1。另據(jù) Oertli等[87]報(bào)道,miR-155通過調(diào)節(jié)Th17/Th1分化參與機(jī)體抗幽門螺桿菌感染免疫。Blüml等[88]報(bào)道 miR-155 參與調(diào)控 Th17 極化,以及廣泛參與天然及適應(yīng)性免疫應(yīng)答,導(dǎo)致自身免疫性關(guān)節(jié)炎的發(fā)生。

        4 新型T細(xì)胞亞群:濾泡調(diào)節(jié)性T細(xì)胞

        濾泡輔助性 T細(xì)胞(T follicular helper cells,TFH)是近年來發(fā)現(xiàn)的一類新型T細(xì)胞亞群。TFH高表達(dá)CXCR6,定位于淋巴濾泡并促進(jìn)B細(xì)胞介導(dǎo)的體液免疫應(yīng)答。TFH的分化受IL-21調(diào)控,并依賴于轉(zhuǎn)錄因子Bcl-6[89]。TFH的功能紊亂參與了自身免疫性疾病的發(fā)生。

        最近,科學(xué)家又發(fā)現(xiàn)了定位于淋巴濾泡的另一群具有調(diào)節(jié)性作用的T細(xì)胞——濾泡調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(Follicular regulatory T cells,TFR)。Treg 細(xì)胞可通過調(diào)控T-bet、IRF-4及RORγt信號負(fù)向調(diào)節(jié)Th1、Th2及Th17型免疫應(yīng)答,而最近的研究表明TFR具有調(diào)節(jié)TFH介導(dǎo)的免疫應(yīng)答的效應(yīng)[90-92]。Chung等[93]、Linterman 等[94]及 Wollenberg 等[95]分別報(bào)道,一群表達(dá) CXCR5及Bcl-6的Treg能有效抑制TFH細(xì)胞增殖和生發(fā)中心反應(yīng),并將之命名為TFR。TFR來源于Foxp3+前體細(xì)胞,并依賴Bcl-6分化成為TFR。TFH的發(fā)現(xiàn)深入闡明了T細(xì)胞與B細(xì)胞相互作用的機(jī)制,并為B細(xì)胞介導(dǎo)的自身免疫性疾病的治療及免疫耐受的維持提供了可能的靶點(diǎn)[96,97]。

        5 B細(xì)胞分化發(fā)育調(diào)控機(jī)制

        B細(xì)胞是機(jī)體適應(yīng)性免疫應(yīng)答的重要效應(yīng)細(xì)胞,通過產(chǎn)生抗體介導(dǎo)體液免疫應(yīng)答;B細(xì)胞缺陷導(dǎo)致一系列原發(fā)性免疫缺陷病。CLPs經(jīng)歷pre-pro-B細(xì)胞、pro-B細(xì)胞、pre-B細(xì)胞等階段分化成為B細(xì)胞,這個(gè)過程受E2A、EbF1及Pax5等轉(zhuǎn)錄因子及IL-7及 Flt3配體(Flt3L)等細(xì)胞因子的共同調(diào)控[98]。近期,Yabas 等[99]和 Siggs 等[100]同期報(bào)道了翻轉(zhuǎn)酶ATP11C在早期B細(xì)胞發(fā)育中的關(guān)鍵作用。他們發(fā)現(xiàn),小鼠X染色體連鎖的ATP11C突變導(dǎo)致B細(xì)胞發(fā)育障礙。深入研究發(fā)現(xiàn),Atp11c突變小鼠pre-pro-B細(xì)胞數(shù)目正常,而pro-B細(xì)胞及pre-B細(xì)胞數(shù)目進(jìn)行性減少。磷脂酰絲氨酸(Phosphatidylserine,PS)正常情況下定位于細(xì)胞膜內(nèi)葉以提供信號蛋白的錨定位點(diǎn),而PS外翻常見于細(xì)胞凋亡情況下。翻轉(zhuǎn)酶ATP11C參與控制PS定位于細(xì)胞內(nèi)葉[101]。他們的研究首次揭示了磷脂活動(dòng)與B細(xì)胞發(fā)育的內(nèi)在聯(lián)系,可能為人類原發(fā)性免疫缺陷病治療帶來新的研究方向[102,103]。

        6 炎癥、感染及自身免疫性疾病發(fā)病機(jī)制研究

        免疫學(xué)基礎(chǔ)理論研究的根本目的是能夠揭示免疫相關(guān)疾病,如炎癥、感染及自身免疫性疾病的發(fā)生發(fā)展機(jī)制,進(jìn)而為疾病的預(yù)防、干預(yù)提供作用靶點(diǎn),促進(jìn)人類健康。

        骨性關(guān)節(jié)炎是一種以滑膜破裂為特征的進(jìn)行性骨關(guān)節(jié)疾病,嚴(yán)重危害人類健康。已有報(bào)道顯示骨性關(guān)節(jié)炎病變局部存在輕度炎癥反應(yīng),然而其發(fā)病的免疫學(xué)機(jī)制尚不明了。Wang等[104]近日報(bào)道了補(bǔ)體在骨性關(guān)節(jié)炎疾病病理中的核心作用。他們通過蛋白質(zhì)組學(xué)及轉(zhuǎn)錄組學(xué)技術(shù)發(fā)現(xiàn)補(bǔ)體在人類骨性關(guān)節(jié)炎患者的關(guān)節(jié)中高度表達(dá)并且活化,并通過C5、C6及CD59a基因敲除小鼠證實(shí)補(bǔ)體在關(guān)節(jié)炎疾病發(fā)展中發(fā)揮關(guān)鍵作用。最近,上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院瑞金醫(yī)院皮膚科鄭捷課題組報(bào)道,皮膚γδT細(xì)胞產(chǎn)生的IL-17在皮膚炎癥中發(fā)揮關(guān)鍵效應(yīng)。他們的研究表明,在人類銀屑病患者受損皮膚局部γδT富集并分泌大量IL-17;γδT細(xì)胞為IL-23刺激下皮膚IL-17的主要來源,在皮膚炎癥和增生中發(fā)揮重要作用[105],該研究可能為銀屑病治療提供可能的作用靶點(diǎn)。

        慢性乙型肝炎及肝細(xì)胞癌是危害人類健康的重大疾病。筆者實(shí)驗(yàn)室通過對人類健康肝臟、肝炎及肝癌患者的肝臟進(jìn)行microRNA組學(xué)研究,發(fā)現(xiàn)在人類肝臟中高度表達(dá)的9個(gè)miRNA。同時(shí)我們還發(fā)現(xiàn)miR-199a/b-3p在肝細(xì)胞癌患者肝臟中表達(dá)明顯降低,其表達(dá)降低程度與肝癌病人的不良預(yù)后密切相關(guān);功能實(shí)驗(yàn)表明miR-199a/b-3p通過靶向促肝癌激酶分子PAK4(p21-activated Protein Kinase 4)進(jìn)而抑制PAK4/Raf/MEK/ERK信號通路,最終抑制肝細(xì)胞癌的生長。此項(xiàng)研究揭示了miRNA及肝臟疾病中的重要作用,為肝癌治療找到了新的靶點(diǎn)[106]。中國科技大學(xué)田志剛課題組近期報(bào)道,肝臟NK細(xì)胞活性與慢性乙型肝炎患者肝損傷密切相關(guān)[107],該研究針對51例免疫活化慢性乙肝患者(Immune-activated patients,IA patients)、27 例免疫耐受乙肝病毒攜帶者(Immune-tolerant carriers,IT carriers)及26例健康志愿者的肝內(nèi)及外周NK細(xì)胞的表型及殺傷活性及肝臟病理進(jìn)行了隊(duì)列研究。結(jié)果表明,在IA患者體內(nèi),肝臟NK細(xì)胞受局部細(xì)胞因子環(huán)境影響表達(dá)活化性受體增多、殺傷活性增強(qiáng),且NK細(xì)胞殺傷活性與慢性乙肝感染過程中肝臟損傷程度具有相關(guān)性。

        對Th17分化的調(diào)控機(jī)制的研究能為自身免疫性疾病的治療帶來可能的靶點(diǎn)。而Solt等人[108]則進(jìn)一步證實(shí)了這種可行性。他們發(fā)現(xiàn)合成并鑒定了一個(gè)RORα和 RORγt的高親和力配體——SR1001,并證實(shí)SR1001能有效抑制Th17的分化和功能,以及自身免疫性疾病的進(jìn)展,在臨床治療中具有潛在價(jià)值[109]。

        1 Barbalat R,Ewald SE,Mouchess M L et al.Nucleic acid recognition by the innate immune system[J].Annu Rev Immunol,2011;29:185-214.

        2 Unterholzner L,Keating S E,Baran M et al.IFI16 is an innate immune sensor for intracellular DNA [J].Nat Immunol,2010;11(11):997-1004.

        3 Zhang Z,Yuan B,Bao M et al.The helicase DDX41 senses intracellular DNA mediated by the adaptor STING in dendritic cells[J].Nat Immunol,2011;12(10):959-965.

        4 Zhang X,Brann T W,Zhou M et al.Cutting edge:Ku70 is a novel cytosolic DNA sensor that induces typeⅢ rather than type I IFN[J].J Immunol,2011;186(8):4541-4515.

        5 Pichlmair A,Lassnig C,Eberle CA et al.IFIT1 is an antiviral protein that recognizes 5'-triphosphate RNA[J].Nat Immunol,2011;12(7):624-630.

        6 Hornung V,Ellegast J,Kim S et al.5'-Triphosphate RNA is the ligand for RIG-I[J].Science,2006;314(5801):994-997.

        7 Ablasser A,Hornung V.Where,in antiviral defense,does IFIT1 fit?[J].Nat Immunol,2011;12(7):588-590.

        8 Zhang Z,Kim T,Bao M et al.DDX1,DDX21,and DHX36 helicases form a complex with the adaptor molecule TRIF to sense dsRNA in dendritic cells[J].Immunity,2011;34(6):866-878.

        9 Zhang Z,Yuan B,Lu N et al.DHX9 pairs with IPS-1 to sense doublestranded RNA in myeloid dendritic cells[J].J Immunol,2011;187(9):4501-4508.

        10 Minton K.Antiviral immunity:rapid response team [J].Nat Rev Immunol,2011;11(8):504-504.

        11 Jiang F,Ramanathan A,Miller M T et al.Structural basis of RNA recognition and activation by innate immune receptor RIG-I[J].Nature,2011;479(7373):423-427.

        12 Kowalinski E,Lunardi T,McCarthy A A et al.Structural basis for the activation of innateimmune pattern-recognition receptor RIG-Iby viral RNA [J].Cell,2011;147(2):423-435.

        13 Luo D,Ding SC,Vela A et al.Structural insights into rnarecognition by RIG-Ⅰ[J].Cell,2011;147(2):409-422.

        14 Daffis S,Szretter K J,Schriewer J et al.2'-O methylation of the viral mRNA cap evades host restriction by IFIT family members[J].Nature,2010;468(7322):452-456.

        15 Züst R,Cervantes-Barragan L,Habjan M et al.Ribose2'-O-methylation provides a molecular signature for the distinction of self and non-self mRNA dependent on the RNA sensor MDA5 [J].Nat Immunol,2011;12(2):137-143.

        16 García-Sastre A.2 methylate or not 2 methylate:viral evasion of the type I interferon response [J].Nat Immunol,2011;12(2):114-115.

        17 Liu X,Zhan Z,Li D et al.Intracellular MHCclassⅡ molecules promote TLR-triggered innate immune responses by maintaining activation of the kinase Btk [J].Nat Immunol,2011;12(5):416-424.

        18 Hassan G S,Mourad W.An unexpected role for MHC classⅡ[J].Nat Immunol,2011;12(5):375-376.

        19 Yang M,Wang C,Zhu X et al.E3 ubiquitin ligase CHIP facilitates Toll-like receptor signaling by recruiting and polyubiquitinating Src and atypical PKC{zeta}[J].J Exp Med,2011;208(10):2099-2112.

        20 Tun-Kyi A,F(xiàn)inn G,Greenwood A et al.Essential role for the prolyl isomerase Pin1 in Toll-like receptor signaling and type I interferonmediated immunity[J].Nat Immunol,2011;12(8):733-741.

        21 Saitoh T,Satoh T,Yamamoto N et al.Antiviral protein Viperin promotes Toll-like receptor 7-and Toll-like receptor 9-mediated type I interferon production in plasmacytoid dendritic cells[J].Immunity,2011;34(3):352-363.

        22 Zhang Y,Hagedorn C H,Wang L.Role of nuclear receptor SHP in metabolism and cancer[J].Biochim Biophys Acta,2011;1812(8):893-908.

        23 Yuk JM,Shin D M,Lee H M et al.Theorphan nuclear receptor SHP acts as a negative regulator in inflammatory signaling triggered by Toll-like receptors[J].Nat Immunol,2011;12(8):742-751.

        24 Beyaert R.SHP works a double shift to control TLR signaling[J].Nat Immunol,2011;12(8):725-727.

        25 Kufer T A,Sansonetti P J.NLR functions beyond pathogen recognition[J].Nat Immunol,2011;12(2):121-128.

        26 Xia X,Cui J,Wang H Y et al.NLRX1 negatively regulates TLR-induced NF-κB signaling by targeting TRAF6 and IKK [J].Immunity,2011;34(6):843-853.

        27 Allen I C,Moore C B,Schneider M et al.NLRX1 protein attenuates inflammatory responses to infection by interfering with the RIG-IMAVS and TRAF6-NF-κB signaling pathways [J].Immunity,2011;34(6):854-865.

        28 Chevrier N,Mertins P,Artyomov M N et al.Systematic discovery of TLR signaling components delineates viral-sensing circuits[J].Cell,2011;147(4):853-867.

        29 Loo Y M,Gale M Jr.Immune signaling by RIG-I-like receptors[J].Immunity,2011;34(5):680-692.

        30 Hayakawa S,Shiratori S,Yamato H et al.ZAPSis a potent stimulator of signaling mediated by the RNA helicase RIG-Iduring antiviral responses[J].Nat Immunol,2011;12(1):37-44.

        31 Hou F,Sun L,Zheng H et al.MAVSforms functional prion-like aggregates to activate and propagate antiviral innate immune response[J].Cell,2011;146(3):448-461.

        32 Chen H,Sun H,You F et al.Activation of STAT6 by STING is critical for antiviral innate immunity[J].Cell,2011;147(2):436-446.

        33 Spits H,Di Santo J P.The expanding family of innate lymphoid cells:regulators and effectors of immunity and tissue remodeling[J].Nat Immunol,2011;12(1):21-27.

        34 Possot C,Schmutz S,Chea S et al.Notch signaling is necessary for adult,but not fetal,development of RORγt(+)innate lymphoid cells[J].Nat Immunol,2011;12(10):949-958.

        35 Trifari S,Kaplan CD,Tran E H et al.Identification of a human helper T cell population that has abundant production of interleukin 22 and is distinct from T(H)-17,T(H)1 and T(H)2 cells[J].Nat Immunol,2009;10(8):864-871.

        36 Kiss E A,Vonarbourg C,Kopfmann S et al.Natural Aryl Hydrocarbon Receptor Ligands Control Organogenesis of Intestinal Lymphoid Follicles[J].Science,2011;334:1561-1565

        37 Lee J S,Cella M,McDonald K G et al.AHR drives the development of gut ILC22 cells and postnatal lymphoid tissues via pathways dependent on and independent of Notch [J].Nat Immunol,2011;doi:10.1038/ni.2187.

        38 Li Y,Innocentin S,Withers D R et al.Exogenous stimuli maintain intraepithelial lymphocytes via aryl hydrocarbon receptor activation[J].Cell,2011;147(3):629-640.

        39 Sawa S,Lochner M,Satoh-Takayama N et al.RORγt+innate lymphoid cells regulate intestinal homeostasis by integrating negative signals from the symbiotic microbiota[J].Nat Immunol,2011;12(4):320-326.

        40 Chang Y J,Kim H Y,Albacker L A et al.Innate lymphoid cells mediate influenza-induced airway hyper-reactivity independently of adaptive immunity[J].Nat Immunol,2011;12(7):631-638.

        41 Bordon Y.Asthma and allergy:influenza virus and an innate form of asthma[J].Nat Rev Immunol,2011;11(7):443-443.

        42 Cormier SA,Kolls JK.Innate IL-13 in virus-induced asthma?[J].Nat Immunol,2011;12(7):587-588.

        43 Monticelli L A,Sonnenberg G F,Abt M C et al.Innate lymphoid cells promote lung-tissue homeostasis after infection with influenza virus[J].Nat Immunol,2011;12(11):1045-1054.

        44 Mj?sberg JM,Trifari S,Crellin N K et al.Human IL-25-and IL-33-responsive type 2 innate lymphoid cells are defined by expression of CRTH2 and CD161 [J].Nat Immunol,2011;12(11):1055-1062.

        45 Wills-Karp M,F(xiàn)inkelman F D.Innate lymphoid cells wield a doubleedged sword [J].Nat Immunol,2011;12(11):1025-1027.

        46 Yamashita M,Ukai-Tadenuma M,Miyamoto T et al.Essential role of GATA3 for the maintenance of type2 helper T(Th2)cytokine production and chromatin remodeling at the Th2 cytokine gene loci[J].J Biol Chem,2004;279(26):26983-26990.

        47 Tanaka S,Motomura Y,Suzuki Y et al.The enhancer HS2 critically regulates GATA-3-mediated Il4 transcription in T(H)2 cells[J].Nat Immunol,2011;12(1):77-85.

        48 Van Stry M,Bix M.Explaining discordant coordination[J].Nat Immunol,2011;12(1):16-17.

        49 Leavy O.T cells:shaping Il4 gene expression [J].Nat Rev Immunol,2011;11(1):3-3.

        50 Kool M,Willart M A,van Nimwegen M et al.An unexpected role for uric acid as an inducer of T helper 2 cell immunity to inhaled antigens and inflammatory mediator of allergic asthma[J].Immunity,2011;34(4):527-540.

        51 Kuroda E,Ishii K J,Uematsu S et al.Silica crystals and aluminum salts regulate the production of prostaglandin in macrophages via NALP3 inflammasome-independent mechanisms[J].Immunity,2011;34(4):514-526.

        52 Eisenbarth SC,Colegio O R,O'Connor W et al.Crucial role for the Nalp3 inflammasome in the immunostimulatory properties of aluminium adjuvants[J].Nature,2008;453(7198):1122-1126.

        53 Pelka K,Latz E.Getting closer to the dirty little secret[J].Immunity,2011;34(4):455-458.

        54 Bordon Y.Allergy:crystal clear culprit[J].Nat Rev Immunol,2011;11(5):304-304.

        55 Li Z,Zhang Y,Liu Z et al.ECM1 controls T(H)2 cell egress from lymph nodes through re-expression of S1P(1)[J].Nat Immunol,2011;12(2):178-185.

        56 Bordon Y.Lymphocyte migration:Travel agents for two[J].Nat Rev Immunol,2011;11(2):77-77.

        57 Dong C.TH17 cells in development:an updated view of their molecular identity and genetic programming[J].Nat Rev Immunol,2008;8(5):337-348.

        58 Song X,Zhu S,Shi P et al.IL-17RE is the functional receptor for IL-17C and mediates mucosal immunity to infection with intestinal pathogens[J].Nat Immunol,2011;12(12):1151-1158.

        59 Ramirez-Carrozzi V,Sambandam A,Luis E et al.IL-17C regulates the innate immune function of epithelial cells in an autocrine manner[J].Nat Immunol,2011;12(12):1159-1166.

        60 Swamy M,Hayday A.Provocative exhibits at the Seventeen Gallery[J].Nat Immunol,2011;12(12):1131-1133.

        61 Chang S H,Reynolds J M,Pappu B P et al.Interleukin-17C promotes Th17 cell responses and autoimmune disease via Interleukin-17 receptor E [J].Immunity,2011;35(4):611-621.

        62 Codarri L,Gyülvészi G,Tosevski V et al.RORγt drives production of the cytokine GM-CSF in helper T cells,which is essential for the effector phase of autoimmune neuroinflammation [J].Nat Immunol,2011;12(6):560-567.

        63 El-Behi M,Ciric B,Dai H et al.The encephalitogenicity of T(H)17 cells is dependent on IL-1-and IL-23-induced production of the cytokine GM-CSF.[J]Nat Immunol,2011;12(6):568-575.

        64 McGeachy M J.GM-CSF:the secret weapon in the T(H)17 arsenal[J].Nat Immunol,2011;12(6):521-522.

        65 Cao W,Yang Y,Wang Z et al.Leukemia inhibitory factor inhibits T helper 17 cell differentiation and confers treatment effects of neural progenitor cell therapy in autoimmune disease[J].Immunity,2011;35(2):273-284.

        66 Awasthi A,Kuchroo V K.Value added:neural progenitor cells suppress inflammation and autoimmunity[J].Immunity,2011;35(2):156-157.

        67 Lazarevic V,Chen X,Shim JH et al.T-bet represses T(H)17 differentiation by preventing Runx1-mediated activation of the gene encoding RORγt[J].Nat Immunol,2011;12(1):96-104.

        68 Yang X P,Ghoreschi K,Steward-Tharp S M et al.Opposing regulation of the locus encoding IL-17 through direct,reciprocal actions of STAT3 and STAT5 [J].Nat Immunol,2011;12(3):247-254.

        69 Ichiyama K,Sekiya T,Inoue N et al.Transcription factor Smad-independent T helper 17 cell induction by transforming-growth factor-β is mediated by suppression of eomesodermin [J].Immunity,2011;34(5):741-754.

        70 Dang E V,Barbi J,Yang H Y et al.Control of T(H)17/T(reg)balance by hypoxia-inducible factor 1 [J].Cell,2011;146(5):772-784.

        71 Nutsch K,Hsieh C.When T cells run out of breath:the HIF-1α story[J].Cell,2011;146(5):673-674.

        72 Cretney E,Xin A,Shi W et al.The transcription factors Blimp-1 and IRF4 jointly control the differentiation and function of effector regulatory T cells[J].Nat Immunol,2011;12(4):304-311.

        73 Ohkura N,Sakaguchi S.Maturation of effector regulatory T cells[J].Nat Immunol,2011;12(4):283-284.

        74 Maruyama T,Li J,Vaque J P et al.Control of the differentiation of regulatory T cells and T(H)17 cells by the DNA-binding inhibitor Id3 [J].Nat Immunol,2011;12(1):86-95.

        75 Tone M,Greene M I.Cooperative regulatory events and Foxp3 expression[J].Nat Immunol,2011;12(1):14-16.

        76 Wang Y,Su M A,Wan Y Y.An essential role of the transcription factor GATA-3 for the function of regulatory T cells[J].Immunity,2011;35(3):337-348.

        77 O'Shea J J,Paul W E.Mechanisms underlying lineage commitment and plasticity of helper CD4+T cells[J].Science,2010;327(5969):1098-1102.

        78 Beyer M,Thabet Y,Müller R U et al.Repression of the genome organizer SATB1 in regulatory T cells is required for suppressive function and inhibition of effector differentiation [J].Nat Immunol,2011;12(9):898-907.

        79 Campbell D J.Regulatory T cells GATA have it[J].Immunity,2011;35(3):313-315.

        80 Powell JD,Delgoffe GM.The mammalian target of rapamycin:linking T cell differentiation,function,and metabolism [J].Immunity,2010;33(3):301-311.

        81 Delgoffe G M,Pollizzi K N,Waickman A T et al.The kinase mTOR regulates the differentiation of helper T cells through the selective activation of signaling by mTORC1 and mTORC2 [J].Nat Immunol,2011;12(4):295-303.

        82 Li Q,Rao R R,Araki K et al.A central role for mTOR kinase in homeostatic proliferation induced CD8+T cell memory and tumor immunity[J].Immunity,2011;34(4):541-553.

        83 Leavy O.Immune regulation:(micro)Control of IFNγ[J].Nat Rev Immunol,2011;11(9):573.

        84 Ma F,Xu S,Liu X et al.The microRNA miR-29 controls innate and adaptive immune responses to intracellular bacterial infection by targeting interferon-γ[J].Nat Immunol,2011;12(9):861-869.

        85 Steiner D F,Thomas M F,Hu J K et al.MicroRNA-29 regulates T-box transcription factors and interferon-γproduction in helper T cells[J].Immunity,2011;35(2):169-181.

        86 Rossi R L,Rossetti G,Wenandy L et al.Distinct microRNA signatures in human lymphocyte subsets and enforcement of the naive state in CD4+T cells by the microRNA miR-125b[J].Nat Immunol,2011;12(8):796-803.

        87 Oertli M,Engler D B,Kohler E et al.MicroRNA-155 is essential for the T cell-mediated control of helicobacter pylori infection and for the induction of chronic Gastritis and Colitis[J].JImmunol,2011;187(7):3578-3586.

        88 Blüml S,Bonelli M,Niederreiter B et al.Essential role of microRNA-155 in the pathogenesis of autoimmune arthritis in mice[J].Arthritis Rheum,2011;63(5):1281-1288.

        89 King C.New insights into the differentiation and function of T follicular helper cells[J].Nat Rev Immunol,2009;9(11):757-766.

        90 Koch M A,Tucker-Heard G,Perdue N R et al.The transcription factor T-bet controls regulatory T cell homeostasis and function during type 1 inflammation [J].Nat Immunol,2009;10(6):595-602.

        91 Zheng Y,Chaudhry A,Kas A et al.Regulatory T-cell suppressor program co-opts transcription factor IRF4 to control T(H)2 responses[J].Nature,2009;458(7236):351-356.

        92 Chaudhry A,Rudra D,Treuting P et al.CD4+regulatory T cells control TH17 responses in a Stat3-dependent manner[J].Science,2009;326(5955):986-991.

        93 Chung Y,Tanaka S,Chu F et al.Follicular regulatory T cells expressing Foxp3 and Bcl-6 suppress germinal center reactions[J].Nat Med,2011;17(8):983-988.

        94 Linterman M A,Pierson W,Lee SK et al.Foxp3+follicular regulatory T cells control the germinal center response[J].Nat Med,2011;17(8):975-982.

        95 Wollenberg I,Agua-Doce A,Hernández A et al.Regulation of the germinal center reaction by foxp3+follicular regulatory T cells[J].J Immunol,2011;187(9):4553-4560.

        96 Papatriantafyllou M.Regulatory T cells:Pursuing a germinal centre career[J].Nat Rev Immunol,2011;11(9):572-572.

        97 Campbell D J,Koch M A.Treg cells:patrolling a dangerous neighborhood[J].Nat Med,2011;17(8):929-930.

        98 Nutt S L,Kee B L.The transcriptional regulation of B cell lineage commitment[J].Immunity,2007;26(6):715-725.

        99 Yabas M,Teh C E,F(xiàn)rankenreiter S et al.ATP11C is critical for the internalization of phosphatidylserine and differentiation of B lymphocytes[J].Nat Immunol,2011;12(5):441-449.

        100 Siggs O M,Arnold C N,Huber C et al.The P4-type ATPase ATP11C is essential for B lymphopoiesis in adult bone marrow[J].Nat Immunol,2011;12(5):434-440.

        101 Leventis P A,Grinstein S.The distribution and function of phosphatidylserine in cellular membranes[J].Annu Rev Biophys,2010;39:407-427.

        102 Clark M R.Flippin'lipids[J].Nat Immunol,2011;12(5):373-375.

        103 Pang SH,Nutt SL.B cells need their flip-flops[J].Immunol Cell Biol,2011;89(7):751-752.

        104 Wang Q,Rozelle A L,Lepus CM et al.Identification of a central role for complement in osteoarthritis[J].Nat Med,2011;17:1674-1679.

        105 Cai Y,Shen X,Ding C et al.Pivotal Role of Dermal IL-17-Producing γδ T Cells in Skin Inflammation[J].Immunity,2011;35(4):596-610.

        106 Hou J,Lin L,Zhou W et al.Identification of miRNomes in human liver and hepatocellular carcinoma reveals miR-199a/b-3p as therapeutic target for hepatocellular carcinoma[J].Cancer Cell,2011;19(2):232-243.

        107 Zhang Z,Zhang S,Zou Z et al.Hypercytolytic activity of hepatic natural killer cells correlates with liver injury in chronic hepatitis B patients[J].Hepatology,2011;53(1):73-85.

        108 Solt LA,Kumar N,Nuhant P et al.Suppression of TH17 differentiation and autoimmunity by a synthetic ROR ligand [J].Nature,2011;472(7344):491-494.

        109 Jetten A M.Immunology:a helping hand against autoimmunity[J].Nature,2011;472(7344):421-422.

        猜你喜歡
        胞漿活化分化
        無Sn-Pd活化法制備PANI/Cu導(dǎo)電織物
        兩次中美貨幣政策分化的比較及啟示
        分化型甲狀腺癌切除術(shù)后多發(fā)骨轉(zhuǎn)移一例
        小學(xué)生活化寫作教學(xué)思考
        高齡老年抗中性粒細(xì)胞胞漿抗體相關(guān)性血管炎性腎衰竭患者1例報(bào)道
        胞漿小滴、過量殘留胞漿與男性生育之間的關(guān)系
        肺組織胞漿菌病一例
        2013年全國175家臨床實(shí)驗(yàn)室檢測抗中性粒細(xì)胞胞漿抗體的比對分析
        Cofilin與分化的研究進(jìn)展
        基于B-H鍵的活化對含B-C、B-Cl、B-P鍵的碳硼烷硼端衍生物的合成與表征
        浪货趴办公桌~h揉秘书电影| 精品国产麻豆一区二区三区| 毛片在线视频成人亚洲| 亚洲熟女精品中文字幕| 军人粗大的内捧猛烈进出视频| 日韩AV有码无码一区二区三区| 激情一区二区三区视频| 国产天堂av在线一二三四| 国产乱人激情h在线观看| 免费人成又黄又爽的视频在线 | 特级做a爰片毛片免费看无码| 国产精品一区二区韩国AV | 激情综合丁香五月| 欧美精品区| 中文字幕亚洲精品第一页| 亚洲视频免费一区二区| 国产亚洲欧美精品久久久| 国产女人18一级毛片视频| 中文字幕精品乱码一二三区| 高级会所技师自拍视频在线| 国产亚洲午夜高清国产拍精品| 久久99精品久久久久久齐齐百度 | 久久综合九色综合97欧美| 国产91网址| 精品在线亚洲一区二区三区| 亚洲av成人片色在线观看| 最新国产乱人伦偷精品免费网站| 2021亚洲色中文字幕| 91九色播放在线观看| av成人综合在线资源站| 摸丰满大乳奶水www免费| 午夜福利电影| 放荡人妻一区二区三区| 亚洲av无一区二区三区久久蜜桃| 天天综合网天天综合色| 国产成人精品日本亚洲专区6| 白色白在线观看免费2| 乱中年女人伦av三区| 国产亚洲亚洲精品777| 国产一区二区一级黄色片| 高潮毛片无遮挡高清视频播放|