張浩文,唐志東,譚勇俊,劉忠松
(湖南農(nóng)業(yè)大學農(nóng)學院,長沙410128)
提高油酸含量是油菜品質(zhì)育種的重要目標[1]。脂肪酸合成途徑目前已有較深入的研究[2,3],植物種子中脂肪酸合成途徑如圖1。在植物種子中油酸是脂肪酸合成途徑中的一個中間產(chǎn)物,其合成不僅涉及到脂肪酸生物合成途徑中一系列的酶促反應(yīng),還與ACP(酰基載體蛋白)的縮合反應(yīng)和ACP硫酯酶、ACS(?;o酶A合成酶)有關(guān)。種子中脂肪酸合成有關(guān)的主要場所有兩個:質(zhì)體和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)。
在質(zhì)體中,乙酰輔酶A經(jīng)過了一系列的羧化和縮合生成16:0ACP。該物質(zhì)在β-酮酯酰-ACP合成酶Ⅱ(KASⅡ)作用下生成18:0ACP。18:0ACP在硬脂酸脫氫酶(FAB2)作用下生成18:1Δ9 ACP。18:0ACP、18:1Δ9 ACP在更傾向不飽和 ACP的ACP硫酯酶A(FAT A)作用下水解成游離脂肪酸并通過ACS轉(zhuǎn)化成相應(yīng)的COA運到內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中;16:0ACP在更傾向于飽和ACP的ACP硫酯酶B(FAT B)作用下水解成游離脂肪酸并通過ACS轉(zhuǎn)化成16:0 COA運到內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中。在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中18:0COA可以一直延伸為24:0 COA;18:1ACP通過甘油二酯途徑生成油酰磷脂(18:1Δ9 ACP),此物質(zhì)為生成油酸的前體。有兩個酶促反應(yīng)都以此物質(zhì)為底物,其中由脂肪酸延長酶(FAE)控制生成芥酸的反應(yīng)更具競爭優(yōu)勢,在雙低油菜中該反應(yīng)被截斷;另一個反應(yīng)是在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)油酸脫氫酶(FAD2)控制下生成亞油酸,該反應(yīng)是影響雙低油菜油酸含量的最主要反應(yīng)。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中的COA和PC都能進入TAG(三酰甘油)途徑生成油脂。
從脂肪酸合成途徑看,影響種子中油酸合成的基因較多。在質(zhì)體中主要有 KASⅡ,F(xiàn)AB2,F(xiàn)AT,ACS;影響油酸積累的是FAD2和FAE1基因。
圖1 油菜種子內(nèi)油酸合成示意圖(改編自楊燕宇[4])
KASⅡ是編碼16:0 ACP到18:0 ACP的酰基蛋白合成基因,在擬南芥葉肉細胞中69%的16:0ACP轉(zhuǎn)化由KASⅡ控制[5]。在油菜中很早就有有關(guān)分離和克隆KAS基因家族CDNA的報道[6]。在E.coli中KAS酶的晶體結(jié)構(gòu)已經(jīng)測定[7],油菜中只確定了KASⅢ和 KASⅠ酶的晶體結(jié)構(gòu)[8]。擬南芥中,用基因干擾降低KASⅡ的表達水平,能使硬脂酸比例提高,油酸比例減少,通過RNA干擾KASⅡ,16:ACP的濃度是野生型的 7倍[9]。萼距花 (Cuphea wrightii)的KASⅡcDNA在擬南芥中表達,主要是增加了短碳鏈ACP(C10:0和C12:0)的量,而中碳鏈 ACP(C14:0 和 C16:0)的量減少[10]。KASⅡ原核表達的結(jié)果不盡相同,在棕櫚(Jessenia bataua)中獲得的KASⅡcDNA,通過融合蛋白的形式在擬南芥中表達,提高了花生烯酸和芥酸的含量,而且KASⅡ基因不能完成棕櫚酸到硬脂酸的生化過程,所以棕櫚的KASⅡ基因可能是脂肪酸延長途徑的一個候選基因。于此相反,Jha[11]利用在芥菜型油菜中表達巴西固氮螺菌的?;d體蛋白(KASⅡ),提高了種子中油酸的含量,并提高了油酸、亞油酸和亞麻酸之間的比值,降低了芥酸含量。通過蛋白定位發(fā)現(xiàn)棕櫚的KASⅡ作用位置可能在微粒體(推測為內(nèi)質(zhì)網(wǎng)),而不同于以往的質(zhì)體,可能是造成此差異的原因。Hakozaki[12]在擬南芥中利用T-DNA插入突變產(chǎn)生的AtKAS2(KASⅡ)基因突變體,RTPCR結(jié)果表明AtKAS2基因在許多器官中表達,在角果中有高表達,而GUS實驗表明,該基因的啟動子在大量器官中都表達;基因型和表現(xiàn)型的結(jié)果表明該基因在胚胎發(fā)育中是個必須基因,缺陷體純合子將在小球期到心型期死亡。
FAB2是編碼18:0 ACP至18:1Δ9 ACP的 Δ9脫氫酶的脫氫酶基因。在大豆中,通過抑制FAB2基因,可以增加硬脂酸的脂肪酸含量,而且FAB2基因也有一定的時空特異性[13]。Kachroo[14]對 FAB2的突變體做了研究,發(fā)現(xiàn)在擬南芥中還存在4個FAB2的等位基因,但這些基因在種子中的特異性表達不如FAB2,在突變體無法完全代償FAB2缺陷突變體功能,突變體油酸含量偏低;通過這4個等位基因的研究,證明油酸的水平是在轉(zhuǎn)錄和翻譯后水平調(diào)控的。
FAT是ACP轉(zhuǎn)變?yōu)橄鄳?yīng)的游離脂肪酸重要水解酶,F(xiàn)AT B主要負責水解飽和ACP,F(xiàn)AT A主要負責水解不飽和ACP。Li[15]通過連鎖和關(guān)聯(lián)分析相結(jié)合的方法,在玉米中解析了一個C16:0的QTL(數(shù)量性狀基因座),在QTL區(qū)域得到了一個候選基因fatb,該基因編碼ACP硫酯酶。該研究還發(fā)現(xiàn)通過該基因最后一個外顯子區(qū)域11 bp堿基的插入能降低脂肪酸中C16:0的含量,達到飽和脂肪酸和不飽和脂肪酸的最優(yōu)比例。Moreno - Pérez[16]發(fā)現(xiàn)擬南芥FAT A基因敲除的突變體的成熟種子油酸含量比正常體要低,干種子中三酰甘油的量有所降低。
ACS是編碼在內(nèi)質(zhì)體內(nèi)膜將游離脂肪酸轉(zhuǎn)化為?;鵆OA的基因。de Azevedo Souza[17]發(fā)現(xiàn)擬南芥中一個新的ACS合成基因,該基因突變體沒有花粉且自交不結(jié)實,推測該基因影響花粉小孢子的形成。通過反射性基因芯片檢測,該基因編碼合成的?;鞍讖?fù)合體在體外的活性,發(fā)現(xiàn)該蛋白的活性與油酸基質(zhì)密切相關(guān)。
FAD3是編碼亞油酸向亞麻酸轉(zhuǎn)化的基因。FAD3能控制亞油酸向亞麻酸轉(zhuǎn)化,低亞麻酸性狀可以整合到高油酸油菜中,但不可以增加油酸含量[18]。
綜上所述,上面的基因與脂肪酸的組成有一定的關(guān)系。其中,KASⅡ,F(xiàn)AB2,F(xiàn)AT與油酸的含量關(guān)系較為密切。抑制FAD3可以達到降低亞麻酸含量的目的,可以在高油酸育種中進行遺傳整合。而現(xiàn)階段為了提高油酸含量應(yīng)主要從FAD2和FAE兩個基因著手。
轉(zhuǎn)基因研究證明,通過抑制FAD2基因表達,能顯著提高種子內(nèi)油酸含量。Bao等[19]通過RNAi干擾FAD2基因獲得了6株轉(zhuǎn)基因油菜,在轉(zhuǎn)基因油菜的第三代RT-PCR檢測FAD2基因表達顯著下調(diào),油酸含量由40%上升為72.9%。Peng[20]等構(gòu)建了RNAis雙元干擾載體,同時沉默F(xiàn)AD2基因和FAE1基因得到了油酸85%以上,其他多元不飽和脂肪酸在10%以下,與遺傳背景差別大的GX品系雜交得到的子代的脂肪酸含量能穩(wěn)定遺傳。
FAD2基因的拷貝數(shù)和拷貝具體的位置在油菜中尚不明確,目前主要是通過定位同源基因所在BAC的位置的方法。Jung等[21]在白菜型油菜中通過全基因組掃描白菜EST數(shù)據(jù)庫獲得了兩個FAD2拷貝,BrFAD2-1和 BrFAD2-2,分別位于KBrB063G23和 KBrH113N10兩個 BAC。其中BrFAD2-2在白菜型油菜中產(chǎn)生了一個終止子的突變而造成在白菜型油菜中不表達,他通過實驗證實BrFAD2-1是一個有功能的拷貝。Scheffler等[22]利用Southern雜交發(fā)現(xiàn)在甘藍型油菜中FAD2基因有4~6個拷貝,其中4個拷貝被分別定位在同源的A1 和 C1、A5 和 C5 連鎖群。Smooker[23]用 DH 群體構(gòu)建遺傳圖譜,通過與脂肪酸合成相關(guān)的基因所在白菜BAC,設(shè)計與脂肪酸合成相關(guān)的擬南芥同源標記并將它們定位在連鎖圖上,其中3個FAD2候選基因分別定位于 A1、C1、A5、C5,其中 C1的 FAD2同源標記落在油酸QTL(數(shù)量性狀基因座)置信區(qū)間內(nèi),C5的 FAD2同源標記是根據(jù) BAC KBrB063G23設(shè)計。楊燕宇等[24]通過高油酸品系HOP和湘油15構(gòu)建F2無芥酸群體進行油酸QTL定位,在遺傳背景上排除了芥酸的干擾,用單株法和半粒法都發(fā)現(xiàn)了兩個跟油酸相關(guān)的QTL,分別在A5和C5上。A5上QTL與FAD2基因緊密連鎖(來源于白菜的 FAD2 BAC KBrB063G23),與 C5上 QTL區(qū)域緊密連鎖的標記 BRP06Y06-a(BAC KBrB087P06)在A5 QTL區(qū)域有同源標記,因此推測這兩個QTL分別對應(yīng)兩個相應(yīng)的FAD2。Hu等[25]通過擬南芥中的FAD2同源標記[26],在甘藍型油菜高油酸親本和低油酸親本中分別擴增得到FAD2基因克隆并測序設(shè)計特異基因標記。隨后將FAD2基因標記定位在了連鎖圖上,其中A5上的基因標記落在了油酸主效QTL的置信區(qū)間內(nèi),還在C1上定位了一個較小的QTL。Jagannath等[27]將基因特異標記 FAD2-1(設(shè)計自 B.rapa,定位 A基因組FAD2),F(xiàn)AD2-2(設(shè)計自B.nigra,定位B基因組FAD2)分別定位在芥菜型油菜遺傳圖譜中的A5和B1連鎖群,可惜油酸的QTL并未定位在FAD2基因標記所在連鎖群。FAD2拷貝能夠分為種子特異表達和在植物中多個組織表達兩種,而且可能存在假基因。肖鋼等[28]通過對甘藍型油菜FAD2 PCR克隆產(chǎn)物測序的方式,得到了11個不同的FAD2拷貝,6個拷貝在編碼區(qū)域出現(xiàn)終止密碼子,另外5個的同源性為90.6%~99.74%。11個拷貝通過同源性不同分為兩組,命名為FAD2Ⅰ和FAD2Ⅱ。RT-PCR結(jié)果表明在授粉后27 d的種子中FAD2Ⅰ表達,F(xiàn)AD2Ⅱ不表達。在葉片中兩者都表達。肖鋼等[29]將上述6個出現(xiàn)終止密碼子的FAD2拷貝進行了酵母表達實驗,證實這6個拷貝沒有改變酵母脂肪酸組成,推測這6個拷貝為假基因。
表1 不同作物的FAD2拷貝情況
根據(jù)上述文獻,筆者認為在芥酸合成途徑受阻的前提下,F(xiàn)AD2基因是影響油酸的關(guān)鍵基因,并且在3種油菜中的FAD2都存在多拷貝,并且在克隆FAD2中可能會遇到假基因。其中白菜型油菜證實存在1個FAD2拷貝指向A5,甘藍型油菜有4~6個FAD2拷貝,其中A5上確定有一個有功能的FAD2,而在C5、A1、C1上存在FAD2基因,可沒有相關(guān)功能的報道。在芥菜型油菜中A5、B1上也可能分別有一個FAD2拷貝。
油菜中FAD2的拷貝數(shù)和拷貝分布都不是很明確,這對提高油酸含量和進一步分析脂肪酸合成調(diào)控造成了困難。但模式植物擬南芥和其他油料作物的FAD2序列信息和功能研究為研究油菜的FAD2基因提供了良好的資料。而近期白菜的測序完成[30]和甘藍物理圖譜的構(gòu)建[31],為我們提供了更多的信息。在脂肪酸去飽和中研究較深入的有擬南芥、玉米、大豆、棉花、芝麻等作物。
如表1所示,可以看出FAD2拷貝的作用模式可能為1~2個在種子中特異表達的拷貝在油酸向亞油酸轉(zhuǎn)變的過程中起主要作用,其他拷貝在全部組織中低表達。不同拷貝可能受溫度影響大小不一。不同物種FAD2不一樣,例如紅花FAD2的熱穩(wěn)定性要比向日葵高[32]??截愰g差異主要集中在3'和5'非編碼區(qū)。相比這些作物,我們只知道在油菜中A5上有一個有確定功能的FAD2,即在種子中特異表達的拷貝。其他拷貝在油菜中的位置尚不太清楚,具體的拷貝數(shù)未確定,其他拷貝對油酸含量的影響效果和在不同環(huán)境下的表達效果都不甚清楚。因此,首先要確定FAD2基因各拷貝在染色體中的具體位置,然后分析這些拷貝的主要功能和結(jié)構(gòu)。FAD2基因的非編碼區(qū)、啟動子以及FAD2逆境表達是油菜今后研究的重點。
FAE1(芥酸合成酶)在非雙低油菜中是影響油酸的主要基因[4]。近十年來,F(xiàn)AE1基因在區(qū)分不同拷貝,和在序列水平上分析基因功能上取得了一定的進展。眾多的研究表明,在甘藍型油菜中芥酸的QTL 是定位在 A8 和 C3 上[43~45],分別對應(yīng)兩個FAE1的拷貝 FAE1.1和 FAE1.2。Gupta等[45]從芥菜型高芥酸油菜和低芥酸油菜中分離出兩個拷貝FAE1.1、FAE1.2,發(fā)現(xiàn)高芥酸和低芥酸品種之間存在4個SNP位點,F(xiàn)AE1.2存在3個SNP。中國發(fā)現(xiàn)了不同于以往ORO(德國低芥酸種質(zhì))的新雙低種質(zhì)資源中雙9號。Wu等[46]通過FAE1亞型(缺失4對堿基)酵母表達和轉(zhuǎn)基因油菜證實中雙9號是由于FAE1基因的4對堿基缺失導(dǎo)致移碼,翻譯提前終止造成的,這種現(xiàn)象主要出現(xiàn)在C基因組。徐愛遐等[47]利用同源序列法對6個芥菜型油菜品種(高芥酸、中芥酸、低芥酸)、2份白菜型油菜品種(高芥酸和低芥酸)和1份黑芥品種的FAE1基因進行克隆和測序,得到9個品種的FAE1基因編碼區(qū)全長均為1 522 bp,不含內(nèi)含子,均編碼507個氨基酸殘基。芥菜型油菜中有兩種FAE1基因序列(BjFAE1.1和BjFAE1.2),其親緣種白菜型油菜和黑芥各有一種FAE1基因序列(BrFAE1和BnFAE1),分別對應(yīng)芥菜中的 BjFAE1.1和BjFAE1.2 。Wang[48]用 Ecotilling 技術(shù)檢測白菜型油菜、甘藍、甘藍型油菜,找到了一個導(dǎo)致FAE1基因功能喪失的SNP位點,還發(fā)現(xiàn)編碼FAE1的編碼序列有18個SNP可以區(qū)分A、C基因組。比較不同芥酸含量油菜的 FAE1基因序列,BjFAE1.1和BjFAE1.2都存在兩個SNP。
脂肪酸含量是一個數(shù)量性狀,這使得它的研究具有一定的復(fù)雜性,但現(xiàn)代生物信息學的發(fā)展和分子生物學的進步對挖掘數(shù)量性狀下隱藏的基因,提供了條件。
電子克隆和電子定位通過利用大量的EST等數(shù)據(jù),縮小了實驗范圍,使得實驗的速度大大加快。在大豆中,Sharma[49]利用比較擬南芥、甘藍型油菜、蓖麻子、大豆中261個脂肪酸合成、油脂合成相關(guān)的基因得到了一張電子表達譜,該電子表達譜顯示一些脂肪酸代謝重要基因(如FAD2)有異常的分離。Chi[50]通過電子克隆的方法分離了大豆中29個減飽和基因,并將他們在染色體中的分布進行了預(yù)計。我國的玉米研究領(lǐng)域在脂肪酸[51]和株高[52]方面,也做了一些類似的研究,獲得了一些表達譜和候選基因。
利用EST序列拼接能發(fā)現(xiàn)新的基因。Schlueter[39]利用大豆的EST序列發(fā)現(xiàn)了兩個新的FAD2基因,并證實其中FAD2-c是控制低溫下亞油酸合成的FAD2基因。Jung等[21]通過掃描白菜型油菜EST序列庫分離出了BrFAD2-1基因。
另外,我們可以通過挖掘高密度圖譜下已定位的QTL,來獲得一些相關(guān)基因。方法有關(guān)聯(lián)分析結(jié)合連鎖分析[15]、功能標記解析[53,54],通過這些方法能夠?qū)?shù)量性狀和基因關(guān)聯(lián)起來,從而發(fā)現(xiàn)和克隆更多脂肪酸相關(guān)基因。研究QTL區(qū)域中的候選基因,利用近等基因系在不同環(huán)境下的表現(xiàn),采取blot hybidization(印跡雜交)結(jié)合 RT -PCR[55]或者基因芯片技術(shù)[56]能夠更深入了解QTL區(qū)域中各個基因的代謝調(diào)節(jié)以及基因與環(huán)境的互作。
在高油酸油菜的育種方面還應(yīng)注意利用大規(guī)模回交育種,構(gòu)建油菜高油酸的導(dǎo)入系群體,利用導(dǎo)入系能更為靈敏地發(fā)現(xiàn)一些微效QTL。黎志康[57]曾對水稻的分子育種體系的建立做了綜述,后來他在利用水稻回交導(dǎo)入系研究耐鹽[58]、抗旱[59]、抗紋枯?。?0]QTL等取得了一定進展。總之,如何利用現(xiàn)有的生物學信息數(shù)據(jù)庫,提高檢測QTL靈敏度,并進一步挖掘QTL中影響性狀的基因是研究像油酸含量這類性狀一個值得思考的問題。
提高油酸含量是油菜品質(zhì)育種的重要目標。通過抑制FAD2基因可以獲得油酸含量80%的油菜。油菜脂肪酸合成網(wǎng)絡(luò)很復(fù)雜,想通過抑制FAD2基因以獲得85% 以上油酸含量的油菜很困難。一方面,可能是FAD2基因在許多物種中為多拷貝,要想完全抑制FAD2有一定的難度。更重要的一方面,生物是一個系統(tǒng),就FAD2基因來說還有許多別的功能。Zhang[61]證實FAD2的功能在擬南芥的早期萌發(fā)和生長中是有作用的。因此一味的抑制FAD2表達可能不利于種子萌芽及植株的整體生長。另外,在特定環(huán)境下還可能有其他基因控制油酸含量。Song[62]在擬南芥中發(fā)現(xiàn)在低溫下,有一個控制生育酚相關(guān)的基因sve1是FAD2的等位基因,在一定的低溫條件下,通過抑制sve1,能顯著提高油酸含量。因此是否還有像這樣的基因調(diào)節(jié)油酸的生成是一個值得思考的問題。這說明考慮脂肪酸合成途徑還應(yīng)重視與其它生化反應(yīng)的關(guān)聯(lián)和調(diào)控,從而取得更加深入的進展。
[1]官春云.油菜高油酸遺傳育種研究進展[J].作物研究,2006,20(1):1-8.
[2]Nesi N,Delourme R,Bregeon M,et al.Genetic and molecular approaches to improve nutritional value of Brassica napus L.seed[J].CR Biol,2008,331(10):763 -771.
[3]Baud S,Lepiniec L.Physiological and developmental regulation of seed oil production[J].Progress in Lipid Research,2010,49(3):235-249.
[4]楊燕宇.甘藍型油菜 SSR分子標記圖譜構(gòu)建和油酸含量 QTL定位[D].長沙:湖南農(nóng)業(yè)大學,2011.
[5]Browse J,McCourt PJ,Somerville CR.Fatty acid composition of leaf lipids determined after combined digestion and fatty acid methyl ester formation from fresh tissue[J].Anal Biochem,1986,152(1):141-145.
[6]Carlsson AS,LaBrie ST,Kinney AJ,et al.A KAS2 cDNA complements the phenotypes of the Arabidopsis fab1 mutant that differs in a single residue bordering the substrate binding pocket[J].Plant J,2002,29(6):761 - 770.
[7]White SW,Zheng J,Zhang YM,et al.The structural biology of type II fatty acid biosynthesis[J].Annu Rev Biochem,2005,74:791-831.
[8]Fisher M,Kroon JT,Martindale W,et al.The X -ray structure of Brassica napus beta-keto acyl carrier protein reductase and its implications for substrate binding and catalysis[J].Structure,2000,8(4):339 -347.
[9]Pidkowich MS,Nguyen HT,Heilmann I,et al.Modulating seed beta-ketoacyl-acyl carrier protein synthase II level converts the composition of a temperate seed oil to that of a palm - like tropical oil[J].Proc Natl Acad Sci USA,2007,104(11):4742-4747.
[10]Leonard JM,Knapp SJ,Slabaugh MB.A Cupheaβ -ketoacyl-ACP synthase shifts the synthesis of fatty acids towards shorter chains in Arabidopsis seeds expressing Cuphea FatB thioesterases[J].The Plant Journal,1998,13(5):621-628.
[11]Jha JK,Sinha S,Maiti MK,et al.Functional expression of an acyl carrier protein(ACP)from Azospirillum brasilense alters fatty acid profiles in Escherichia coli and Brassica juncea[J].Plant Physiology and Biochemistry,2007,45(6-7):490-500.
[12]Hakozaki H,Park JI,Endo M,et al.Expression and developmental function of the 3-ketoacyl-ACP synthase2 gene in Arabidopsis thaliana[J].Genes& genetic systems,2008,83(2):143-152.
[13]Zhang P,Burton JW,Upchurch RG,et al.Mutations in a delta 9-Stearoyl-ACP-Desaturase gene are associated with enhanced stearic acid levels in soybean seeds[J].Crop Science,2008,48(6):2305 -2313.
[14]Kachroo A,Shanklin J,Whittle E,et al.The Arabidopsis stearoyl-acyl carrier protein-desaturase family and the contribution of leaf isoforms to oleic acid synthesis[J].Plant molecular biology,2007,63(2):257 -271.
[15]Li L,Li H,Li Q,et al.An 11-bp insertion in zea mays fatb reduces the palmitic acid content of fatty acids in maize grain[J].PLoS One,2011,6(9):e24699.
[16]Moreno-Pérez AJ,Venegas- Calerón M,Vaistij FE,et al. Reduced expression of FatA thioesterases in Arabidopsis affects the oil content and fatty acid composition of the seeds[J].Planta,2011:1 -11.
[17]de Azevedo Souza C,Kim SS,Koch S,et al.A novel fatty Acyl-CoA Synthetase is required for pollen development and sporopollenin biosynthesis in Arabidopsis[J].Plant Cell,2009,21(2):507 -525.
[18]Schierholt A,Becker H,Ecke W.Mapping a high oleic acid mutation in winter oilseed rape(Brassica napus L.)[J].TAG Theoretical and Applied Genetics,2000,101(5):897-901.
[19]Baoming T,Dandan S,Yuli L,et al.Analysis of the RNAi targeting FAD2 gene on oleic acid composition in transgenic plants of Brassica napus[J].African Journal of Microbiology Research,2011,5(7):817-822.
[20]Peng Q,Hu Y,Wei R,et al.Simultaneous silencing of FAD2 and FAE1 genes affects both oleic acid and erucic acid contents in Brassica napus seeds[J].Plant cell reports,2010,29(4):317-325.
[21]Jung JH,Kim H,Go YS,et al.Identification of functional BrFAD2-1 gene encoding microsomal delta-12 fatty acid desaturase from Brassica rapa and development of Brassica napus containing high oleic acid contents[J].Plant Cell Rep,2011,30(10):1881-1892.
[22]Scheffler J,Sharpe A,Schmidt H,et al.Desaturase multigene families of Brassica napus arose through genome duplication[J].TAG Theoretical and Applied Genetics,1997,94(5):583-591.
[23]Smooker A,Wells R,Morgan C,et al.The identification and mapping of candidate genes and QTL involved in the fatty acid desaturation pathway in Brassica napus[J].TAG Theoretical and Applied Genetics,2011,122(6):1075-1090.
[24]楊燕宇,楊盛強,陳哲紅,等.無芥酸甘藍型油菜十八碳不飽和脂肪酸含量的 QTL定位[J].作物學報,2011,37(8):1342-1350.
[25]Hu X,Sullivan-Gilbert M,Gupta M,et al.Mapping of the loci controlling oleic and linolenic acid contents and development of fad2 and fad3 allele-specific markers in canola(Brassica napus L.)[J].Theor Appl Genet,2006,113(3):497-507.
[26]Tanhuanp P,Vilkki J,Vihinen M.Mapping and cloning of FAD2 gene to develop allele-specific PCR for oleic acid in spring turnip rape(Brassica rapa ssp.oleifera)[J].Molecular Breeding,1998,4(6):543 -550.
[27]Jagannath A,Sodhi YS,Gupta V,et al.Eliminating expression of erucic acid-encoding loci allows the identification of“hidden”QTL contributing to oil quality fractions and oil content in Brassica juncea(Indian mustard)[J].Theor Appl Genet,2011,122(6):1091 -1103.
[28]肖 鋼,張宏軍,彭 琪,等.甘藍型油菜油酸脫氫酶基因(fad2)多個拷貝的發(fā)現(xiàn)及分析[J].作物學報,2008,34(9):1563-1568.
[29]肖 鋼,張振乾,鄔賢夢,等.六個甘藍型油菜油酸脫氫酶(FAD2)假基因的克隆和分析[J].作物學報,2010,36(3):435-441.
[30]Wang X,Wang H,Wang J,et al.The genome of the mesopolyploid crop species Brassica rapa[J].Nat Genet,2011,43(10):1035-1039.
[31]Wang X,Torres M,Pierce G,et al.A physical map of Brassica oleracea shows complexity of chromosomal changes following recursive paleopolyploidizations[J].BMC Genomics,2011,12(1):470.
[32]Rolletschek H,Borisjuk L,Sanchez-Garcia A,et al.Temperature-dependent endogenous oxygen concentration regulates microsomal oleate desaturase in developing sunflower seeds[J].J Exp Bot,2007,58(12):3171 - 3181.
[33]Martínez- Rivas JM,Sperling P,Lühs W,et al.Spatial and temporal regulation of three different microsomal oleate desaturase genes(FAD2)from normal-type and high-oleic varieties of sunflower(Helianthus annuus L.)[J].Molecular Breeding,2001,8(2):159 -168.
[34]Garcia-Diaz MT,Martinez-Rivas JM,Mancha M.Temperature and oxygen regulation of oleate desaturation in developing sunflower(Helianthus annuus)seeds[J].Physiol Plant,2002,114(1):13 -20.
[35]Hernandez ML,Padilla MN,Mancha M,et al.Expression analysis identifies FAD2-2 as the olive oleate desaturase gene mainly responsible for the linoleic acid content in virgin olive oil[J].J Agric Food Chem,2009,57(14):6199-6206.
[36]Ruuska SA,Girke T,Benning C,et al.Contrapuntal networks of gene expression during Arabidopsis seed filling[J].Plant Cell,2002,14(6):1191 -1206.
[37]Zhang D,Pirtle IL,Park SJ,et al.Identification and expression of a new delta-12 fatty acid desaturase(FAD2-4)gene in upland cotton and its functional expression in yeast and Arabidopsis thaliana plants[J].Plant Physiol Biochem,2009,47(6):462-471.
[38]Patel M,Jung S,Moore K,et al.High-oleate peanut mutants result from a MITE insertion into the FAD2 gene[J].TAG Theoretical and Applied Genetics,2004,108(8):1492-1502.
[39]Schlueter JA,Deshpande IF,Yi S,et al.The FAD2 gene family of soybean[J].Crop Science,2007,47(S1):S-14.
[40]Pham AT,Lee JD,Shannon JG,et al.A novel FAD2-1 A allele in a soybean plant introduction offers an alternate means to produce soybean seed oil with 85%oleic acid content[J].TAG Theoretical and Applied Genetics,2011:1-10.
[41]Mikkilineni V,Rocheford T.Sequence variation and genomic organization of fatty acid desaturase-2(fad2)and fatty acid desaturase-6(fad6)cDNAs in maize[J].TAG Theoretical and Applied Genetics,2003,106(7):1326-1332.
[42]Kim MJ,Kim H,Shin JS,et al.Seed-specific expression of sesame microsomal oleic acid desaturase is controlled by combinatorial properties between negative cisregulatory elements in the SeFAD2 promoter and enhancers in the 5'- UTR intron[J].Molecular Genetics and Genomics,2006,276(4):351-368.
[43]Smooker A,Wells R,Morgan C,et al.The identification and mapping of candidate genes and QTL involved in the fatty acid desaturation pathway in Brassica napus[J].TAG Theoretical and Applied Genetics,2010:1-16.
[44]Yan XY,Li JN,Wang R,et al.Mapping of QTLs controlling content of fatty acid composition in rapeseed(Brassica napus)[J].Genes & Genomics,2011,33(4):365-371.
[45]Gupta V,Mukhopadhyay A,Arumugam N,et al.Molecular tagging of erucic acid trait in oilseed mustard(Brassica juncea)by QTL mapping and single nucleotide polymorphisms in FAE1 gene[J].Theor Appl Genet,2004,108(4):743-749.
[46]Wu G,Wu Y,Xiao L,et al.Zero erucic acid trait of rapeseed(Brassica napus L.)results from a deletion of four base pairs in the fatty acid elongase 1 gene[J].Theoretical and Applied Genetics,2007,116(4):491-499.
[47]徐愛遐,黃 鎮(zhèn),馬朝芝,等.芥菜型油菜FAE1基因序列特征及其與芥酸含量關(guān)系的初步分析[J].作物學報,2010,36(5):794-800.
[48]Wang N,Shi L,Tian F,et al.Assessment of FAE1 polymorphisms in three Brassica species using EcoTILLING and their association with differences in seed erucic acid contents[J].BMC Plant Biol,2010,10:137.
[49]Sharma A,Chauhan RS.In silico identification and comparative genomics of candidate genes involved in biosynthesis and accumulation of seed oil in plants[J].Comp Funct Genomics,2012,2012:914843.
[50]Chi X,Yang Q,Lu Y,et al.Genome-wide analysis of fatty acid desaturases in soybean(Glycine max)[J].Plant Molecular Biology Reporter,2011:1 -15.
[51]李 林,李 慧,李驥英,等.玉米油脂代謝相關(guān)基因的全基因組挖掘,表達譜及與籽粒油份QTL共定位分析[J].中國科學:C 輯,2009,(12):1162-1174.
[52]王 毅,姚 驥,張征鋒,等.基于玉米綜合 QTL圖譜的比較分析及株高 QTL的綜合分析[J].科學通報,2006,51(10):1776-1786.
[53]李媛媛.利用功能分子標記分析甘藍型油菜產(chǎn)量相關(guān)性狀QTLs及其雜種優(yōu)勢遺傳基礎(chǔ)[D].武漢:華中農(nóng)業(yè)大學,2006.
[54]Zhao J,Huang J,Chen F,et al.Molecular mapping of Arabidopsis thaliana lipid-related orthologous genes in Brassica napus[J].Theor Appl Genet,2011.
[55]Li RJ,Wang HZ,Mao H,et al.Identification of differentially expressed genes in seeds of two near-isogenic Brassica napus lines with different oil content[J].Planta,2006,224(4):952-962.
[56]Zhu Y,Cao Z,Xu F,et al.Analysis of gene expression profiles of two near-isogenic lines differing at a QTL region affecting oil content at high temperatures during seed maturation in oilseed rape(Brassica napus L.)[J].TAG Theoretical and Applied Genetics,2011:1-17.
[57]黎志康.我國水稻分子育種計劃的策略[J].分子植物育種,2005,(3):603-608.
[58]錢益亮,王 輝,陳滿元,等.利用 BC2F3產(chǎn)量選擇導(dǎo)入系定位水稻耐鹽 QTL[J].分子植物育種,2009,7(2):224-232.
[59]王 英,李 宏,崔彥茹,等.從回交導(dǎo)入群體中篩選耐鹽和抗旱水稻植株[J].分子植物育種,2010,8(6):1133-1141.
[60]高曉清,謝學文,許美容,等.水稻抗紋枯病導(dǎo)入系的構(gòu)建及抗病位點的初步定位[J].作物學報,2011,37(9):1559-1568.
[61]Zhang J,Liu H,Sun J,et al.Arabidopsis fatty acid desaturase FAD2 is required for salt tolerance during seed germination and early seedling growth[J].PLoS One,2012,7(1):e30355.
[62]Song W,Maeda H,Della PD.Mutations of the ER to plastid lipid transporters TGD1,2,3 and 4 and the ER oleate desaturase FAD2 suppress the low temperature-induced phenotype of Arabidopsis tocopherol-deficient mutant vte2[J].The Plant Journal,2010,62(6):1004 -1018.