高睿 邵玶 閆偉軍 安晶濤 張苗苗
[摘要]目的:研究正畸復發(fā)過程中大鼠磨牙齦溝液中IL-6水平的變化。方法:將20只Wistar雄性大鼠上頜右側(cè)第一磨牙建立正畸牙齒移動模型,裝置安裝10天后去除,分別收集安裝裝置前及裝置去除后第4天、第8天、第12天的右上頜第一磨牙齦溝液,ELISA法檢測各時間段齦溝液中IL-6的含量,并將所測結(jié)果進行統(tǒng)計學分析。結(jié)果:去除裝置后第4天大鼠磨牙齦溝液中IL-6水平高于其余3組,P都小于0.05;去除裝置后第8天與第12天IL-6水平相差不多,且P>0.05;而這兩組IL-6水平分別高于未安裝裝置前的水平,P都小于0.05。 結(jié)論:正畸復發(fā)對大鼠磨牙齦溝液中IL-6水平有影響。
[關鍵詞]正畸復發(fā);白介素-6;齦溝液;正畸牙齒移動模型
[中圖分類號]R332R783.5[文獻標識碼]A[文章編號]1008-6455(2012)06-0945-02
正畸治療后復發(fā)是臨床上較為棘手的問題,正畸復發(fā)不僅給患者心理帶來影響,而且對牙周組織也存在一定危害。齦溝液中炎癥介質(zhì)的成分及水平的改變是牙周組織損害的早期變化之一,白細胞介素6(IL-6)在牙周炎癥的發(fā)生發(fā)展過程中起重要作用。本實驗將通過檢測正畸牙齒移動大鼠模型齦溝液中IL-6水平的變化,為進一步研究正畸復發(fā)對牙周組織的影響奠定基礎。
1材料和方法
1.1 實驗動物:20只Wistar健康雄性大鼠(體重220+10g,哈醫(yī)大一院實驗動物中心提供),在12h光/暗節(jié)律的實驗環(huán)境中習慣性喂養(yǎng),自由飲水,攝食,一周后開始進行實驗。
1.2動物模型的建立:根據(jù)King等[1]提出的方法建立正畸牙齒移動模型,經(jīng)2%水合氯醛腹腔注射麻醉,麻藥用量3mg/kg。加力裝置包括NiTi螺旋拉簧(直徑0.12mm),結(jié)扎絲(直徑0.025mm),樹脂(3M公司),將大鼠右上第一磨牙近牙頸部和上頜切牙頰舌側(cè)牙冠近牙頸部分別磨一深約0.5mm的溝,結(jié)扎絲繞過磨牙牙頸部后在其近中形成一個小圈,將兩個上頜中切牙,用結(jié)扎絲將其“8”字扎在一起,并在右側(cè)切牙的遠中頸部也形成一結(jié)扎絲小圈,再用樹脂粘結(jié)劑在備好的槽溝內(nèi)加固結(jié)扎絲,并將粘結(jié)劑表面打磨拋光,以減少對軟組織的刺激,將NiTi螺旋拉簧用結(jié)扎絲結(jié)扎于預留的小圈上,加力時使彈簧拉伸,力值為50g,在力的作用下,右側(cè)上頜第一磨牙向近中移動,左側(cè)未經(jīng)處理,大鼠正常飲食水,10天后去除正畸加力裝置。
1.3 齦溝液的采集:裝置去除后第4天、第8天、第12天分別收集大鼠右側(cè)上頜第一磨牙的齦溝液。根據(jù)Lamster[2]方法:大鼠在全麻下用棉球?qū)⒂疑系谝荒パ辣砻娓魸癫⒋蹈?,采?5號根管吸潮紙尖,置于近中頰側(cè)齦溝中30s,重復測量3次,每次用5根吸潮紙尖,若紙尖有血污染則棄之重取,將收集后的紙尖立即放入裝有樣品稀釋液的微離心管等中并置于-70℃冰箱保存待用,檢測時室溫放置1h再離心10min(3000r/min)后,吸取液體。
1.4 IL-6含量的測定:采用雙抗體夾心ELISA法對GCF中的IL-6進行檢測,ELISA試劑盒由欣博盛生物科技有限公司生產(chǎn),實驗嚴格按照試劑盒所附說明書進行操作。
1.5 統(tǒng)計學分析:統(tǒng)計分析應用SPSS16.0統(tǒng)計軟件,對不同時間大鼠GCF中IL-6含量采用單因素方差分析和t檢驗進行統(tǒng)計學分析。
2結(jié)果
安裝正畸牙齒移動裝置前大鼠右上頜第一磨牙齦溝液IL-6水平為(15.461±1.732)ng/L,裝置去除后第4天、第8天和第12天大鼠右上頜第一磨牙齦溝液IL-6水平分別(28.523±1.597)ng/L、(20.798±0.615)ng/L和(19.312±1.026)ng/L。
其中去除裝置后第4天大鼠磨牙齦溝液中IL-6水平高于其余各組,且有顯著差異(P<0.05)。去除裝置后第8天和第12天比較,IL-6的水平相差不多,且P>0.05,然而這兩組分別與未安裝裝置前比較,P都<0.05。
3討論
3.1 正畸治療后復發(fā)是一個復雜的問題,存在著許多可能的因素,有研究表明正畸治療后的穩(wěn)定與復發(fā)是不可預見的,至少治療后10年還存在33%~90%的復發(fā)率[3-4]正畸治療后復發(fā),不僅是浪費時間和財力,而且對患者生理上和心理上造成不小的影響,尤其是對牙周組織的損害是不可忽視的[5]。目前許多研究報道了正畸牙齒移動過程中對牙周組織的影響,但從正畸復發(fā)對齦溝液中炎癥介質(zhì)水平影響的研究,幾乎沒有報道。
3.2 齦溝液(Gingival Crevicular Fluid, GCF)是通過牙齦溝內(nèi)上皮和結(jié)合上皮,從牙齦結(jié)締組織及滲入到齦溝內(nèi)的液體Davidovitch[6]提出,正畸牙齒移動早期是個急性炎癥過程,其特征是牙周血管擴張和白細胞從毛細血管中游移出來,機械力作用于牙周靶細胞產(chǎn)生一系列細胞因子,組織降解性酶,酸性產(chǎn)物等,促進牙槽骨的吸收與沉積。上述發(fā)生于深部牙周組織的改變會導致齦溝液的流量和成分的改變,因此檢測齦溝液可以幫助確定牙移動過程中牙周組織的改建狀態(tài),為正畸提供有用的參考。由于齦溝液具有易獲得,無損傷,能重復取樣,患者易接受及靈敏反應等優(yōu)點,在臨床早期診斷中具有重要的研究價值和臨床前景[7]。
3.3 研究表明,牙周炎的發(fā)生和發(fā)展與細胞因子網(wǎng)絡有密切關系[8]。IL-6由成纖維細胞,上皮細胞,單核巨噬細胞,成骨細胞等細胞合成分泌,具有多種生物學活性,其在機體防御,免疫反應和造血反應等過程中均起到重要作用。近年來,它在炎癥反應中的地位倍受關注:它能夠調(diào)節(jié)急性期蛋白質(zhì)產(chǎn)生;促進炎癥細胞的聚集,活化和炎癥介質(zhì)的釋放;加重炎癥癥狀[9-10]。大量研究表明IL-6在牙周炎的發(fā)生發(fā)展過程中起著重要作用Johnson等[11-12]運用免疫學方法測知,牙周炎患者炎癥部位IL-6分泌量明顯增多。
3.4 本研究建立了正畸牙齒移動模型,用ELISA法分別檢測大鼠磨牙移動前,齦溝液中的IL-6水平及去除牙齒移動裝置后第4天,第8天,第12天齦溝液中IL-6的水平,并將四組之間數(shù)值進行了比較,發(fā)現(xiàn)去除裝置后第4天大鼠齦溝液中的IL-6的水平要明顯高于其他三組(P<0.05)。由此可推測正畸裝置去除后,伴隨著磨牙逐漸回復的原來的位置的過程中,磨牙牙周組織炎癥程度增加,將導致牙周組織破壞的加重。裝置去除后第8天和第12天的齦溝液中的IL-6水平相差無幾(P>0.05),可能由于此時磨牙已基本回復到未移動前的位置,牙周組織狀態(tài)已趨于穩(wěn)定,以致其炎癥介質(zhì)的釋放水平趨于穩(wěn)定,而且由于牙周組織不再受水平向的牽拉力[13-14],使得炎癥程度減輕以致炎癥介質(zhì)IL-6的水平降低。然而去除裝置后的第8天和第12天IL-6的水平都高于未放置正畸裝置前,可能是正畸裝置本身就作為一種刺激物的存在,導致大鼠口腔的自潔作用降低,食物殘渣刺激牙周組織,致使炎癥介質(zhì)IL-6的分泌水平增高,而且可能要經(jīng)歷更長的一段時間IL-6分泌水平才能接近未安放正畸裝置前。由此可以說明,正畸治療后復發(fā)對大鼠齦溝液中炎癥介質(zhì)IL-6的水平產(chǎn)生影響,可能加速大鼠牙周炎的發(fā)病過程,使牙周組織損害更加嚴重。本文僅從大鼠活體的體液水平探討了正畸治療后復發(fā)對牙周組織的影響,但其具體機制及正畸復發(fā)對IL-6基因水平的影響還有待于進一步研究。
[參考文獻]
[1]King GJ,Keeling SD,McCoy EA. Measuring dental drift and orthodontic tooth movement in response to various initial forces in adult rats[J].Am J Orthond Dentofac Orthop,1991,99(5):456-465.
[2]Lannster IB,Oshrain RL,Fiorello LA,et al.A companion of 4 methods of data presentation for Lysosomal enzyme activity in gingival crevicular fluid[J].J Clin Periordental,1988,15:347-352.
[3]Little Run,Riedel RA,Artun J.An evaluation of changes in mandibular cmtonior adignment from 10 to 20 years postreteution[J].Am J Orthond Dentofac Orthop,1988,93:423-428.
[4]Olive RJ,Basford KE.A Longitude study of orthodontic stabibity and relapse[J].Austral Orthod J,2003,19:47-55.
[5]Knishnan V,Danidovitah Z.On a path to in folding the biological mechanisms of orthodontic teeth movement[J].J Dent Res,2009,88:597-608.
[6]Danidonich I,Hicday CF, Ngan PW,et al.Heinotrasmitters,cytokines,and the control of alveclar bone remodeling in orthodontics[J].Dent clin Notth An,1988,3299(3):422-435.
[7]宋楠,靳淑梅,馬纓衛(wèi),等.大鼠正畸牙移動前后齦溝液量變化的研究[J].臨床口腔醫(yī)學雜志,2009, 25(4):209-211.
[8]王磊.白細胞介素6與牙周炎的關系[J].牙體牙髓牙周病學雜志,2003,13(1):53-56.
[9]蒲玉梅.IL-6在牙周炎中的作用及其調(diào)控因素[J].牙體牙髓牙周病學雜志,2005,15(3):176-180.
[10]唐林,趙紅艷,安晶濤,等.正畸牙齒移動過程中骨保護素(OPG)的表達變化[J].中國美容醫(yī)學,2011,20(9):1406-1408.
[11]Johanson RB,Serio FG,Daix.Vascular erdothelial growth factors and progression of periodontal diseases[J].Poniadontal,1999,70(8):848.
[12]Johamnsen A,Rylander G,soder B,et al. Dental plaque .gingival in flammration, and elevated levels of interleukin-6 and certisol in gingival creicular fluid from women with stress-related depression and exhaustion[J].Periodontal,2006,77(8):1403-1409.
[13]King Gj,Latta L,Ruteubeng J,et al. Alveolar bone turnover and tooth movement in molar rats offer removial of orthondontic appliances[J].Am J Orthod Dentofac Orthop,1997,111:266-275.
[收稿日期]2012-02-22[修回日期]2012-04-17
編輯/張惠娟