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        組織工程血管移植在血液透析通路中的應(yīng)用

        2012-04-13 08:46:39綜述葉朝陽審校
        腎臟病與透析腎移植雜志 2012年1期
        關(guān)鍵詞:自體內(nèi)皮細(xì)胞內(nèi)膜

        張 攀 綜述 葉朝陽 審校

        目前維持性血液透析(HD)患者使用的血管通路主要是動靜脈內(nèi)瘺(AVF)、移植血管和帶滌綸套中心靜脈導(dǎo)管。主流觀點(diǎn)認(rèn)為AVF首選[1],移植血管其次[2],最后考慮靜脈導(dǎo)管[3]。K-DOQ指南認(rèn)為移植血管只用于自體AVF不能成熟、內(nèi)瘺閉塞或者血管解剖條件不適合做內(nèi)瘺的患者。移植血管的來源一般為患者自體血管、尸體血管、異種(動物)血管及人造血管。最好的移植血管是患者自體血管,一般是大隱靜脈[4]。脫細(xì)胞牛頸靜脈和人尸血管易發(fā)生血栓、動脈瘤及鈣化,在臨床上未廣泛接受[5-7]。聚四氟乙烯(PTFE)人造血管多用于口徑>6 mm的HD患者的移植血管通路。研究表明PTFE人造血管在一、二級通暢率,感染風(fēng)險及住院風(fēng)險上均次于自體AVF,但好于靜脈導(dǎo)管[2]。盡管PTFE人造血管使用廣泛,但相對于自體移植血管仍然存在明顯不足[8,9],易發(fā)生感染、血栓、內(nèi)膜增生、流出道或吻合口閉塞等[4,10],平均通暢時間僅10月左右。此外,人工材料生物兼容性較差,不利細(xì)胞的正常生物行為[11],也易造成移植性炎癥反應(yīng)[12]。

        組織工程是一種應(yīng)用細(xì)胞生物學(xué)和工程學(xué)原理,將人體某部分的組織細(xì)胞種植和吸附在一種生物材料的支架上進(jìn)行人工培養(yǎng)繁殖,擴(kuò)增,然后移植至人體內(nèi)所需要部位,從而達(dá)到器官修復(fù)或再造的治療目的的技術(shù)。隨著組織工程技術(shù)的進(jìn)步,組織工程血管(tissue-engineered blood vascular,TEBV)越來越多地應(yīng)用于臨床。Shin’oka等[13,14]率先應(yīng)用自體骨髓干細(xì)胞-高分子材料種植技術(shù)構(gòu)建組織血管,并成功用于壓力較低的兒童患者肺動脈流出道的修復(fù)。然而這種方法構(gòu)建的血管不具備足夠的機(jī)械強(qiáng)度,不能用于成人的動脈搭橋。其他用類似方法構(gòu)建的血管也未能獲得足夠應(yīng)用于臨床的抗壓強(qiáng)度[15,16]。要將TEBV用于制作透析血管通路,必須要使構(gòu)建的血管獲得足夠的機(jī)械強(qiáng)度與生物兼容性。為此,國外的專家已經(jīng)進(jìn)行了初步的嘗試并取得了令人鼓舞的成果。

        分層構(gòu)建法構(gòu)建的TEBV

        分層構(gòu)建法與簡化分層構(gòu)建法1998年出現(xiàn)的分層構(gòu)建法,可獲得具有足夠機(jī)械強(qiáng)度的TEBV。L’Heureux等[17]采用三種血管細(xì)胞預(yù)先培養(yǎng)再組合形成具板層結(jié)構(gòu)類天然血管的純生物材料。他們先分別培養(yǎng)人臍靜脈平滑肌細(xì)胞(smooth muscle cell,SMC)和人皮膚成纖維母細(xì)胞(fibroblast,F(xiàn)B)于培養(yǎng)瓶,用條件化培養(yǎng)液培育30d后,形成由細(xì)胞和細(xì)胞外基質(zhì)(extracellular matrix,ECM)構(gòu)成的膜片狀培養(yǎng)物。將FB膜片從瓶壁上剝離,包裹在惰性管軸外繼續(xù)培養(yǎng),在成熟期膜片相互緊密黏合,產(chǎn)生圓柱狀培養(yǎng)物。FB管膜經(jīng)脫水處理制成無細(xì)胞的內(nèi)膜。組裝時,(1)將內(nèi)膜套在PTFE多孔管軸外,軸外徑3 mm,再裹上SMC膜片,制作血管中膜,此時將構(gòu)建物置于生物反應(yīng)器,培養(yǎng)液同時通過管腔和管外回流,支持管壁細(xì)胞生長;(2)裹上FB膜作為外膜,待管壁細(xì)胞和ECM培育成熟;(3)脫去中心管軸,管內(nèi)接種內(nèi)皮細(xì)胞(endothelial cells,EC)總時程3月培育出了具有活性細(xì)胞的,并且類似機(jī)體血管板層結(jié)構(gòu)的TEBV。該血管壁SMC和EC都表現(xiàn)出分化狀態(tài),血液相容性好,能耐受2 000 mmHg的靜水壓,動物體內(nèi)短期移植(7d)顯示易于手術(shù)操作,縫合性良好。這種TEBV制成,是血管組織工程領(lǐng)域一大突破,顯示了通過細(xì)胞成分培養(yǎng)構(gòu)筑功能性血管的可能性。

        此后,Peck等[18]對上述分層構(gòu)建法進(jìn)行了簡化,以成纖維母細(xì)胞為種子,培養(yǎng)8周形成生物膜后,包繞在有PTFE涂層的不銹鋼軸上繼續(xù)培養(yǎng)10周,使其形成管狀膠原支架。此方法的特點(diǎn)是取消了中層的SMC,其優(yōu)勢在于減少血管培養(yǎng)所需的細(xì)胞類型,進(jìn)而減少培養(yǎng)細(xì)胞所需要的培養(yǎng)條件和附加質(zhì)量控制措施。雖然在自體血管中SMC層的收縮功能在血壓控制中發(fā)揮著重要的作用,但對移植血管的通暢性并無明顯影響。此外,血清培養(yǎng)的SMC細(xì)胞具有高增生性,取消中層的SMC也就避免了內(nèi)膜增生的風(fēng)險[19]。

        簡化分層構(gòu)建血管在動物模型上的研究2006年L’Heureux等[20]一系列成功的動物實(shí)驗(yàn)證明了這種簡化的TEBV的有效性,被命名為“LifelineTMgrafts”,構(gòu)建血管的細(xì)胞取自56~79歲的血管搭橋術(shù)患者,動物模型有犬、裸鼠及恒河猴。免疫抑制犬模型(4例)為14d短期評估,組織學(xué)顯示存在巨大免疫反應(yīng)。裸鼠模型實(shí)驗(yàn)分兩組,第一組(13例)使用的是單層的1.5 mm內(nèi)徑血管(無內(nèi)膜),被移植到動物的腹主動脈上,225d后總通暢率85%,但觀察到血管內(nèi)徑增加,提示血管強(qiáng)度需進(jìn)一步加強(qiáng)。第二組(14例)使用的是包含內(nèi)膜的雙層血管[9個片段,平均抗壓強(qiáng)度(3 688±1 865)mmHg],225d后總通暢率86%。與第一組不同的是血管口徑保持穩(wěn)定,顯示該血管有足夠的機(jī)械強(qiáng)度。鏡下顯示血管與周圍組織融合良好,組織學(xué)評估證實(shí)血管與自體組織完全融合。長期移植未出現(xiàn)血栓,說明在術(shù)后無抗血小板治療的情況下,此種血管具有良好的抗血栓能力。此外,第180天血管腔內(nèi)未見內(nèi)皮細(xì)胞定殖,從側(cè)面說明管腔內(nèi)未種植內(nèi)皮細(xì)胞的移植血管是可以保持通暢的。血管成熟性方面:第90天可見中層存在稀薄的α肌動蛋白陽性的SMC及內(nèi)膜有融合的內(nèi)皮細(xì)胞。Movat染色,“中層”含有清晰的彈性薄層及大量粘多糖。第180天,中層厚度無改變,彈性層密度增加,黏多糖不可見。這些變化提示血管達(dá)到成熟與重建過程的平衡。此過程中殘存的可溶性膠原支架在數(shù)周內(nèi)完全降解[21]。為了進(jìn)一步對該移植血管進(jìn)行臨床相關(guān)性及生化環(huán)境的評估,學(xué)者們采用了免疫抑制靈長目模型恒河猴3只[內(nèi)徑4.2 mm,5個片段,平均抗壓強(qiáng)度(3 468±500)mmHg],1例移植于髂動脈,2例移植于腹主動脈。盡管是異種血管移植,存在輕微的免疫反應(yīng),6~8周后所有移植血管被取出,所有血管通暢,未見血管瘤或管腔狹窄,內(nèi)膜未見內(nèi)皮細(xì)胞增生。組織學(xué)分析顯示血管重建比裸鼠模型要輕,也許是因?yàn)橐浦矔r間較短或者采用了免疫抑制,也可能是兩種模型本質(zhì)上的差別。

        LifelineTMTEBV作為HD通路的臨床研究2007年L’Heureux等[22]報道了6例首批接受LifelineTMTEBV移植的患者,參與患者均為終末期腎病,年齡29~89歲(68±17歲),每周透析3次。所有患者均為PTFE移植血管失敗,該研究應(yīng)用LifelineTM血管作為動靜脈搭橋HD通路。所構(gòu)建TEBV長20~40 cm,都用于上臂血管通路。早期(3月內(nèi))血管通暢,患者未見不良反應(yīng)。生物機(jī)械測試顯示LifelineTMgrafts平均強(qiáng)度3 490±892 mmHg(230個片段,25例患者),高于人大隱靜脈(1 599±877 mmHg,7個片段),并具有可重復(fù)性[(3 238±366)mmHg、6個片段vs(3 561±435)mmHg、25個片段][23]。2009年McAllister等[24]的一項(xiàng)隊列研究共納入10例患者,9例成功接受上臂血管移植,1例因?yàn)橄莱鲅顺觥?例移植后39d死于無關(guān)病因,死亡時移植血管通暢。1例患者移植后第3天出現(xiàn)急性免疫反應(yīng)并出現(xiàn)血管瘤,可能是因?yàn)榕囵B(yǎng)血管的新型牛血清中IgG水平較高所致,因?yàn)槭褂萌gG的牛血清培養(yǎng)的血管的患者未發(fā)生免疫反應(yīng)。有3例前90d失敗,低于AVF預(yù)期[25,26];余下5例保持通暢6~20月,總通暢時間為68個患者月;其中1例患者需要手術(shù)干預(yù)。總體初始通暢率(1月)78%(7/9),半年通暢率60%(5/8)。通路事件率為0.7/患者年,優(yōu)于PTFE移植血管[27]。盡管此項(xiàng)研究說明TEBV臨床應(yīng)用于透析血管通路在理論與實(shí)踐上是可行的,但仍存在局限性:(1)病例數(shù)較少,需要更大樣本與更長時間的觀察;(2)造價高昂[28],每根移植血管造價≥15 000美元,不太符合臨床移植血管的選擇標(biāo)準(zhǔn);(3)患者單獨(dú)培養(yǎng)血管需要耗時6~9個月,不適用于需要緊急干預(yù)者。

        脈動生物反應(yīng)器構(gòu)建TEBV

        脈動生物反應(yīng)器構(gòu)建TEBV的方法Niklason等[29]將SMC懸液注入生物可降解聚合物材料聚乙醇酸(PGA)制成管形支架中,細(xì)胞貼壁后,用近似大哺乳動物胎兒發(fā)育環(huán)境,產(chǎn)生脈動流和環(huán)流的生物模擬培養(yǎng)系統(tǒng)培育。培育8周中,SMC遷入PGA骨架內(nèi),其在PGA降解的同時,分泌膠原等ECM。當(dāng)ECM與細(xì)胞一起形成的腎小管結(jié)構(gòu)替代PGA支架時,管腔內(nèi)接種EC生物模擬培養(yǎng)系統(tǒng)使培養(yǎng)液在管腔中不斷流動(產(chǎn)生一定的剪切力),并通過脈沖泵的控制使流體產(chǎn)生有節(jié)律的脈動波以刺激細(xì)胞成熟。該實(shí)驗(yàn)顯示,脈動培養(yǎng)條件利于SMC遷移、分化表型表達(dá)(細(xì)胞內(nèi)肌球蛋白量增多,細(xì)胞保持收縮反應(yīng),細(xì)胞有絲分裂率無增大)及細(xì)胞分泌膠原/ECM。體外培養(yǎng)可達(dá)到近似體內(nèi)的細(xì)胞密度及膠原含量。在此種物理力學(xué)環(huán)境和優(yōu)化培養(yǎng)渣中培養(yǎng)出的血管,其機(jī)械力學(xué)性能優(yōu)于先前任何一種TEBV,抗脹裂強(qiáng)度/靜水壓大于2 000 mmHg,縫合固持強(qiáng)度達(dá)90g,膠原含量超過50%。管壁細(xì)胞具有良好的分化狀態(tài),更新率低。血管對藥物作用產(chǎn)生收縮反應(yīng)。動物自體移植4周,TEBV仍通暢,血液流動良好,異體移植通暢性大于無脈動培養(yǎng)。組織學(xué)檢查,血管無炎癥反應(yīng)。這一模式首創(chuàng)脈動培養(yǎng),革新了體外TEBV培育條件。

        生物反應(yīng)器構(gòu)建組織工程化血管的動物模型研究2011年,Dahl等[30]采用此構(gòu)建法,以人尸體來源SMC為種子細(xì)胞,構(gòu)建口徑3~6 mm的TEBV。得到的膠原纖維基質(zhì)無需內(nèi)皮細(xì)胞化,經(jīng)干燥滅活及去抗原性后在狒狒模型上作為動靜脈搭橋(內(nèi)徑6 mm 頸動脈-肱靜脈),共手術(shù)9例,1例因傷口感染退出,余下8例中有1例術(shù)后3月出現(xiàn)栓塞,考慮可能為技術(shù)失敗。觀察6月通暢率為88%(7/8),未見動脈瘤、血管鈣化及內(nèi)膜增生。異種移植未出現(xiàn)炎癥反應(yīng),具有良好的生物兼容性及免疫耐受性。檢測該血管伸展強(qiáng)度(178±11)g,最大抗靜水壓強(qiáng)度(3 337±343)mmHg,高于大隱靜脈。該血管還可存儲于PBS液中4℃可保存12月及以上。

        生物反應(yīng)器構(gòu)建的TEBV有希望應(yīng)用于HD通路的制作盡管生物反應(yīng)器構(gòu)建TEBV還未進(jìn)入臨床試驗(yàn),但其具有的某些特點(diǎn),有望成功用于制作HD通路:(1)有足夠的機(jī)械穩(wěn)定性,可事先確定管徑大小,且無分支,優(yōu)于尸體血管。(2)用于制作血管通路時,不必要在管腔內(nèi)種植內(nèi)皮細(xì)胞(內(nèi)皮化)。因?yàn)檠和肝鲅芡返目趶揭话?5 mm,血流量>500 ml/min,這種條件下省去內(nèi)皮化不會增加凝血的風(fēng)險,同時能有效降低成本,節(jié)省了寶貴的手術(shù)時間。如需要用于冠脈搭橋(口徑<3 mm),為減小血管狹窄的風(fēng)險,也可在已構(gòu)建好的血管基礎(chǔ)上再種植內(nèi)皮細(xì)胞[24,31],其來源為脂肪組織[32]或外周血[33,34],方便快速,患者只需等待數(shù)周乃至數(shù)天。(3)使用異體SMC構(gòu)建血管可不必對每例患者單獨(dú)進(jìn)行血管構(gòu)建,能大量生產(chǎn)進(jìn)而商業(yè)化,利于急診應(yīng)用。(4)這種血管的主要成分是滅活的脫細(xì)胞基質(zhì),因此可以長時間存儲,簡化運(yùn)輸條件及省去一些質(zhì)量控制手續(xù)。

        小結(jié):化學(xué)材料被組織工程材料取代是醫(yī)學(xué)發(fā)展的一個趨勢[35]。我國透析人群總數(shù)在逐年擴(kuò)大,高齡透析患者比例上升,透析時間的延長,對HD血管通路的建立和維護(hù)提出了巨大的挑戰(zhàn)。對于血管條件不好的患者,采用移植TEBV建立血管通路應(yīng)該是可行的,而且是必要的。組織工程作為一門新興的交叉學(xué)科,如何更好的服務(wù)于臨床,服務(wù)于患者,是轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)的基本要求,也是醫(yī)療臨床、基礎(chǔ)工作者共同努力的方向。

        1 Allon M.Fistula first:recent progress and ongoing challenges.Am J Kidney Dis,2011,57(1):3-6.

        2 Kim DS,Kim SW,Kim JC,et al.Clinical analysis of hemodialysis vascular access:comparision of autogenous arterioveonus fistula & arteriovenous prosthetic graft.Korean J Thorac Cardiovasc Surg,2011,44:25-31.

        3 Lacson E Jr,Wang W,Lazarus JM,et al.Change in vascular access and hospitalization risk in long-term hemodialysis patients.Clin J Am Soc Nephrol,2010,5(11):1996-2003.

        4 Collins AJ,Foley RN,Herzog C,et al.Excerpts from the US renal data system 2009 annual data report.Am J Kidney Dis,2010,55(1 suppl 1):S1-420,A6-7.

        5 Sharp MA,Phillips D,Roberts I,et al.A cautionary case:the SynerGraft vascular prosthesis.Eur J Vasc Endovasc Surg,2004,27(1):42-44.

        6 Dohmen P,Liu J,Lembcke A,et al.Reoperation in a Jehovah’s Witness:22 years after aortic allograft reconstruction of the right ventricular outflow tract.Texas Heart Inst J,2003,30(2):146-148.

        7 Madden RL,Lipkowitz GS,Browne BJ,et al.A comparison of cryopreserved vein allografts and prosthetic grafts for hemodialysis access.Ann Vasc Surg,2005,19:686-691.

        8 Huber TS,Buhler AG,Seeger JM.Evidence-based data for the hemodialysis access surgeon.Semin Dial,2004,17(3):217-223.

        9 Perera GB,Mueller MP,Kubaska SM,et al.Superiority of autogenous arteriovenous hemodialysis access:Maintenance of function with fewer secondary interventions.Ann vasc surg,2004,18(1):66-73.

        10 Schild A,Perez E,Gillaspie E,et al.Arteriovenous fistulae vs.arteriovenous grafts:a retrospective review of 1,700 consecutive vascular access cases.J Vasc Access,2008,9(4):231-235.

        11 Babensee JE.Interaction of dendritic cells with biomaterials.Semin Immunol,2008,20(2):101-108.

        12 Engelsman AF,van der Mei HC,Ploeg RJ,et al.The phenomenon of infection with abdominal wall reconstruction.Biomaterials,2007,28(14):2314-2327.

        13 Shin’oka T,Imai Y,Ikada Y.Transplantation of a tissue-engineered pulmonary artery.N Engl J Med,2001,344(7):532-533.

        14 Shin’oka T,Matsumura G,Hibino N,et al.Midterm clinical result of tissue-engineered vascular autografts seeded with autologous bone marrow cells.J Thorac cardiovasc surg,2005,129(6):1330-1338.

        15 McKee JA,Banik SS,Boyer MJ,et al.Human arteries engineered in vitro.EMBO Rep,2003,4(6):633-638.

        16 Poh M,Boyer M,Solan A,et al.Blood vessels engineered from human cells.Lancet,2005,365(9477):2122-2124.

        17 L’Heureux N,Pquet S,Labbé R,et al.A completely biological tissue-engineered human blood vessel.FASEB J,1998,12(1):47-56.

        18 Peck M,Dusserre N,McAllister TN,et al.Tissue engineering by self-assembly.Materials Today,2011,14:218-224.

        19 Pauly RR,Passaniti A,Bilato C,et al.Migration of cultured vascular smooth muscle cells through a basement membrane barrier requires type IV collagenase activity and is inhibited by cellular differentiation.Circ Res,1994,75(1):41-54.

        20 L’Heureux N,Dusserre N,Konig G,et al.Human tissue-engineered blood vessels for adult arterial revascularization.Nat Med,2006,12(3):361-365.

        21 Morimoto N,Saso Y,Tomihata K,et al.Viability and function of autologous and allogeneic fibroblasts seeded in dermal substitutes after implantation.J Surg Res,2005,125(1):56-67.

        22 L’Heureux N,McAllister TN,de la Fuente LM.Tissue-engineered blood vessel for adult arterial revascularization.N Engl J Med,2007,357(14):1451-1453.

        23 Konig G,McAllister TN,Dusserre N,et al.Mechanical properties of completely autologous human tissue engineered blood vessels compared to human saphenous vein and mammary artery.Biomaterials,2009,30(8):1542-1550.

        24 McAllister TN,Maruszewski M,Garrido SA,et al.Effectiveness of haemodialysis access with an autologous tissue-engineered vascular graft:a multicentre cohort study.Lancet,2009,373(9673):1440-1446.

        25 Dember LM,Beck GJ,Allon M,et al.Effect of clopidogrel on early failure of arteriovenous fistulas for hemodialysis:a randomized controlled trial.JAMA,2008,299(18):2164-2171.

        26 Gibson KD,Gillen DL,Caps MT,et al.Vascular access survival and incidence of revisions:a comparison of prosthetic grafts,simple autogenous fistulas,and venous transposition fistulas from the United States Renal Data System Dialysis Morbidity and Mortality Study.J Vasc Surg,2001,34(4):694-700.

        27 Perera GB,Mueller MP,Kubaska SM,et al.Superiority of autogenous arteriovenous hemodialysis access:maintenance of function with fewer secondary interventions.Ann Vasc Surg,2004,18(1):66-73.

        28 McAllister TN,Dusserre N,Maruszewski M,et al.Cell-based therapeutics from an economic perspective:primed for a commercial success or a research sinkhole?Regen Med,2008,3(6):925-937.

        29 Niklason LE,Gao J,Abbott WM,et al.Functional arteries grown in vitro.Science,1999,284:489-493.

        30 Dahl SL,Kypson AP,Lawson JH,et al.Readily Available Tissue-Engineered Vascular Grafts.Sci Transl Med,2011,3(68):68ra9.

        31 Deutsch M,Meinhart J,Zilla P,et al.Long-term experience in autologous in vitro endothelialization of infrainguinal ePTFE grafts.J Vasc Surg,2009,49(2):352-362.

        32 Arts CH,Heijnen-Snyder GJ,Joosten PP,et al.a novel method for isolating pure microvascular endothelial cells from subcutaneous fat tissue ideal for direct cell seeding.Lab Invest,2001,81(10):1461-1465.

        33 Kalka C,Masuda H,Takahashi T,et al.Transplantation of ex vivo expanded endothelial progenitor cells for therapeutic neovascularization.Proc Natl Acad Sci USA,2000,97(7):3422-3427.

        34 Hill JM,Zalos G,Halcox JP,et al.Circulating endothelial progenitor cells,vascular function,and cardiovascular risk.N Engl J Med,2003,348(7):593-600.

        35 Olson JL,Atala A,Yoo JJ.Tissue Engineering:Current Strategies and Future Directions.Chonnam Med J,2011,47(1):1-13.

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