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        亞低溫治療對(duì)急性呼吸窘迫綜合征(ARDS)患者血小板活化物CD62P、PAC-1水平的影響分析

        2012-04-03 03:21:34許國(guó)根
        醫(yī)學(xué)研究雜志 2012年10期
        關(guān)鍵詞:內(nèi)皮細(xì)胞活化低溫

        周 挺 許國(guó)根 王 弋

        近年來(lái)國(guó)內(nèi)外對(duì)急性呼吸窘迫綜合征(ARDS)的發(fā)病機(jī)制的研究取得了很大的進(jìn)步,有研究表明ARDS的實(shí)質(zhì)是全身炎癥反應(yīng)綜合征(SIRS)和多器官功能障礙綜合征(MODS)在肺部的表現(xiàn)[1]。然而目前臨床上針對(duì)參與SIRS的炎癥因子和炎癥介質(zhì)的治療均宣告失敗,新的治療手段正在探索中,其中亞低溫的研究已經(jīng)取得了一定的成果,顯示了可喜的前景[2]。本研究是對(duì)筆者醫(yī)院近兩年急診監(jiān)護(hù)室收治的ARDS患者進(jìn)行亞低溫治療后血小板活化物水平進(jìn)行監(jiān)測(cè)和評(píng)價(jià),并初步探討亞低溫治療對(duì)改善ARDS患者的預(yù)后的積極意義,現(xiàn)報(bào)道如下。

        資料與方法

        1.一般資料:本組46例均為筆者醫(yī)院于2009年1月~2011年1月收住的急性呼吸窘迫綜合征(ARDS)患者,其中男性26例,女性20例,年齡25~76歲。所有患者均符合以下入選標(biāo)準(zhǔn):①所有患者均在明確診斷ARDS后6h內(nèi)送入筆者醫(yī)院急診監(jiān)護(hù)室治療;②均符合ARDS診斷標(biāo)準(zhǔn):急性起病;氧合指數(shù)≤200mmHg;正位胸片可見(jiàn)雙側(cè)肺浸潤(rùn);肺動(dòng)脈楔壓≤18mmHg或無(wú)左房高壓的臨床跡象[3];③收住急診監(jiān)護(hù)室時(shí)患者尚未出現(xiàn)彌散性血管內(nèi)凝血和肺外重要器官(心、腦、肝、腎)的功能障礙。隨機(jī)將上述患者分為兩組,其中亞低溫治療組23例,常溫對(duì)照組23例。

        2.方法:(1)治療方法:兩組患者均采取的常規(guī)治療方案如下:①積極治療原發(fā)疾病,包括必要的外科手術(shù)干預(yù);②根據(jù)每個(gè)患者的個(gè)體差異,制定了適合患者的肺保護(hù)性通氣策略,對(duì)患者進(jìn)行人工機(jī)械通氣治療;③合理控制液體量和合理使用利尿劑,保持PAWP在8~12mmHg左右;④積極使用合適的抗生素控制感染環(huán)節(jié),防止膿血癥的發(fā)生;⑤合理的營(yíng)養(yǎng)代謝支持治療。亞低溫組在此基礎(chǔ)上行亞低溫治療,具體方法為人工冬眠法和冰毯治療相結(jié)合,將直腸溫度控制在33~34℃,持續(xù)治療5天開(kāi)始緩慢復(fù)溫。(2)標(biāo)本采集:兩組患者均在收住ICU第3~5天,每日在外周靜脈采集血液標(biāo)本,采取檸檬酸鈉抗凝全血標(biāo)本,通過(guò)流式細(xì)胞儀測(cè)定血小板活化物CD62P(P-選擇素)、PAC-1(血小板膜糖蛋白Ⅱb/Ⅲa)表達(dá)水平。(3)預(yù)后評(píng)定:兩組患者均于收住ICU第7天時(shí),對(duì)全身重要臟器功能進(jìn)行評(píng)定,采用的評(píng)定標(biāo)準(zhǔn)為修正的Fry-MODS診斷標(biāo)準(zhǔn),計(jì)算并記錄兩組患者的MODS發(fā)生率[4]。

        結(jié)果

        亞低溫組和對(duì)照組患者的血小板活化物表達(dá)水平、MODS發(fā)生率比較見(jiàn)表1和表2。

        表1 亞低溫組和對(duì)照組患者CD62P、PAC-1表達(dá)水平的比較(±s,%)

        表1 亞低溫組和對(duì)照組患者CD62P、PAC-1表達(dá)水平的比較(±s,%)

        CD62P PAC-1亞低溫組組別7.67±1.64 2.34±1.05對(duì)照組 15.76±2.33 7.17±1.88 t 13.62 10.76 P <0.01 <0.01

        表2 亞低溫組和對(duì)照組患者M(jìn)ODS發(fā)生率的比較

        討論

        CD62P(P-選擇素)和PAC-1(血小板膜糖蛋白Ⅱb/Ⅲa)目前是臨床上常用的血小板活化指標(biāo)。P-選擇素是一種細(xì)胞黏附分子,表達(dá)于巨核細(xì)胞、活化血小板和活化的內(nèi)皮細(xì)胞,參與活化血小板與吞噬細(xì)胞黏附,并參與吞噬細(xì)胞與炎癥刺激的血管內(nèi)皮細(xì)胞黏附。近來(lái)研究表明,循環(huán)中可溶性P-選擇素主要來(lái)源于血管內(nèi)皮細(xì)胞和血小板,在正常情況下為低水平表達(dá)或不表達(dá),受到炎癥、損傷等刺激后表達(dá)顯著增加,在炎癥細(xì)胞的趨集和血栓的形成過(guò)程中起到重要的介導(dǎo)作用[5]。血小板膜糖蛋白Ⅱb/Ⅲa隨機(jī)分布于血小板膜表面,是血小板上含量較多的膜糖蛋白,是纖維蛋白原的受體,在炎癥、損傷等刺激下,其表達(dá)水平顯著增加,促進(jìn)血小板的聚集。

        ARDS患者最明顯的臨床特征是頑固性低氧血癥,導(dǎo)致了全身組織細(xì)胞處于缺氧狀態(tài),首當(dāng)其沖的就是全身血管的內(nèi)皮細(xì)胞,再加上肺部的炎癥反應(yīng)導(dǎo)致細(xì)胞因子大量釋放,通過(guò)“扳機(jī)樣”作用觸發(fā)全身炎癥介質(zhì)的的瀑布級(jí)聯(lián)反應(yīng)。最終的結(jié)果是在大量的氧自由基、細(xì)胞因子(主要是TNF-α和IL-1β)的介導(dǎo)下,一方面以P-選擇素為代表的細(xì)胞黏附分子大量表達(dá),將活化的中性粒細(xì)胞黏附在血管內(nèi)皮表面,釋放氧自由基、蛋白溶解酶、花生四烯酸代謝產(chǎn)物,加重對(duì)全身血管內(nèi)皮細(xì)胞和組織細(xì)胞的損傷;另一方面通過(guò)炎癥介質(zhì)促進(jìn)了血小板活化物CD62P和PAC-1的表達(dá),加速了血小板的聚集和血栓形成,導(dǎo)致血管內(nèi)大量微栓子的形成,最終發(fā)展為彌散性血管內(nèi)凝血(DIC)[6]。上述病理生理過(guò)程就是導(dǎo)致最終發(fā)生MODS的原因,其中CD62P和PAC-1起到了非常關(guān)鍵的作用。Sakamaki等[7]的研究也證實(shí),CD62P和PAC-1的表達(dá)水平可以反映ARDS的嚴(yán)重程度,并對(duì)其預(yù)后評(píng)估有重要參考價(jià)值。因此,尋找到一種可使CD62P和PAC-1的表達(dá)水平下降的治療方法就可以使 ARDS患者盡可能不發(fā)展為MODS而改善預(yù)后。

        目前亞低溫治療在腦保護(hù)方面已經(jīng)進(jìn)行了廣泛而深入的研究,并取得了一致的肯定。近年來(lái),它的肺保護(hù)作用已經(jīng)受到部分學(xué)者的重視。從本項(xiàng)研究結(jié)果表明,對(duì)于ARDS患者進(jìn)行早期的亞低溫治療,能夠有效的降低CD62P和PAC-1的表達(dá)水平,從而降低MODS的發(fā)生率。經(jīng)過(guò)分析,考慮亞低溫治療有以下幾種機(jī)制對(duì)肺及肺外臟器起到保護(hù)作用:①亞低溫能阻斷細(xì)胞因子瀑布效應(yīng);②亞低溫可抑制黏附分子功能及其在中性粒細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞上的表達(dá),從而減少中性粒細(xì)胞的浸潤(rùn);③亞低溫能降低毛細(xì)血管通透性;④亞低溫可特異性抑制細(xì)胞凋亡;⑤亞低溫可直接抑制血小板活化,減少循環(huán)內(nèi)微血栓的形成;⑥亞低溫可改善氧供需平衡,減少氧債積累;⑦亞低溫治療實(shí)施的冬眠療法,有效減少了人機(jī)對(duì)抗,減少了鎮(zhèn)靜劑和肌松劑的用量,減少了呼吸機(jī)治療相關(guān)并發(fā)癥。上述保護(hù)機(jī)制國(guó)外已開(kāi)展了多項(xiàng)研究,并已經(jīng)取得了一定的成果[8~10]。

        從本項(xiàng)研究結(jié)果還可以看到,雖然亞低溫治療能非常顯著的降低CD62P和PAC-1的表達(dá)水平,但患者的MODS發(fā)生率下降的卻不如血小板活化物下降得那么顯著,這說(shuō)明尚有其他因素影響者ARDS患者病情的發(fā)展。這些因素有:①原發(fā)疾病的嚴(yán)重程度和是否得到有效的治療;②合并感染病原體的毒力和耐藥性;③患者各臟器功能的儲(chǔ)備和營(yíng)養(yǎng)狀況等。因此,在ARDS的治療過(guò)程中,我們可以使用亞低溫治療作為治療計(jì)劃的一部分,但更要強(qiáng)調(diào)綜合治療和綜合管理的重要性。

        1 Matthay MA,Zimmerman GA,Esmon C,et al.Future research direction in acute lung injury:summary of a National Heart,Lung,and Blood InstituteWorking roup[J].Am JRespir Crit Care Med,2003,167(7):1027-1035

        2 Lim CM,Kim EK,Koh Y,et al.Hypothermia inhibits cytokine release of alveolarmacrophage and activation of nuclear factorκB in endotoxemic lung[J].Intensive Care Med,2004,30(8):1638-1644

        3 Bernard GR,Artigas A,Bringham KL,et al.The American-European Consensus Conference on ARDS:efinitions,mechanisms,relevant outcomes and clincal trial coordinations[J].Am JRespir Crit Care Med,1994,149:818-824

        4 王超,蘇強(qiáng),張淑文.多器官功能障礙綜合征診斷標(biāo)準(zhǔn)的多中心臨床研究[J].中華外科雜志,2009,47(1):40-43

        5 Russwurm S,Viker SJ,Meier Hellmann A,etal.Plateletand leukocyte activation correlate with the severity of septic organ dysfunction[J].shock,2002,17(4):263-268

        6 Michael T,Ganter,Jérémie R,etal.Interleukin-1βcauses acute lung injury viaαvβ5 andαvβ6 integrin-dependentmechanisms[J].Circulation Research,2008,102(7):804-812

        7 Sakamaki F,Ishizaka A,Handa M,et al.Soluble form of P-selectin plasma is elevated in score lung injury[J].Am J Crit Care Med,1995,151:1821-1826

        8 Lim CM,Kim MS,Ahn JJ,et al.Hypothermia protects against endotoxin-induced acute lung injury in rats[J].Intensive Care Med,2003,29(3):453-459

        9 Westmann S,Vollmar B,Thorlacius H,et al.Surface cooling inhibits tumor necrosis factor-α-induced microvascular perfusion failure,leukocyte adhesion,and apoptosis in the striated muscle[J].Surgery,1999,126(5):881-889

        10 Kira S,Daa T,Kashima K,et al.Mild hypothermia reduces expression of intercellular adhesion molecule-1(ICAM-1)and the accumulation of neutrophils after acid-induced lung injury in the rat[J].Acta Anaesthesiol Scand,2005,49(3):351-359

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